吳 楠 劉 侃 王曉梅
1.深圳市南山區(qū)疾病預防控制中心疾病預防科,廣東深圳 518054;2.深圳大學醫(yī)學部腫瘤研究所,廣東深圳 518000
肝癌是全球高發(fā)的腫瘤之一,惡性程度高,預后生存期短,致死率高[1]。抑癌基因失活是肝癌發(fā)生發(fā)展機制中重要的遺傳學基礎[2]。2008年科學家應用特異性高的RNAi 篩選方法[3],得到了12個新的抑癌基因,XPO4 就是其中一種。XPO4是細胞核轉運因子家族成員,可調節(jié)Smad3[轉化生長因子-β(TGF-β)信號傳導中的組分]和Eif5a(兩個密切相關的翻譯起始因子)[4-6]。XPO4 在細胞中的去除會引起細胞癌變的概率增加[7-8]。有研究表明,肝癌中XPO4 的表達降低與腫瘤大小及病理分級相關,XPO4 的缺失提示預后差,且可以作為一個獨立的危險因子[9-10],目前利用XPO4基因開展腫瘤治療研究的報道較少。本研究構建表達XPO4基因的載體,研究XPO4基因對腫瘤細胞的抑制作用,現(xiàn)報道如下。
真核表達質粒pcDNA3.1 購自Invitrogen公司;攜XPO4基因質粒pCR4-TOPO-XPO4 購自Invitrogen公司;人肝癌細胞株SK-Hep1(XPO4基因完全缺失)由香港中文大學胡寶光博士惠贈;大腸埃希菌菌株DH5a 由深圳大學醫(yī)學部腫瘤研究所保存。
1.2.1 pcDNA3.1-XPO4 載體的構建 XPO4基因上游引物:5′-GGGGGTACCATGGTCAATAATGAACAA-3′;下游引物:5′-GGGGATATCTTATTTTACACAAAGGAG-3′。以pCR4-TOPO-XPO4 為模板,PCR 擴增XPO4基因。酶切pcDNA3.1 質粒和目的基因XPO4,16℃連接過夜(試劑盒購自Takara公司)。轉化大腸埃希菌DH5a,無內毒素質粒提?。ㄔ噭┖匈徸設MEGA公司)。
1.2.2 細胞體外轉染 將SK-Hep1 細胞接種至6 孔板,每孔2 mL,細胞密度為2×105個/mL,12 h后進行質粒轉染,pcDNA3.1-XPO4 質粒轉染SK-Hep1 細胞,按 照Lipofectamine3000 轉染試劑(Invitrogen公司)的說明書進行。
1.2.3 蛋白表達檢測 按照Western Blot 實驗方法,主要試劑XPO4 一抗(Thermo公司);β-actin 一抗(北京博奧森公司);羊抗兔二抗(武漢博士德公司)。
1.2.4 XPO4基因體外抑瘤實驗 以SK-Hep1 細胞接種于96 孔培養(yǎng)板中,每孔100 μL,細胞密度為2×104個/mL。12 h后進行質粒轉染,采用CCK-8 檢測細胞存活率。將SK-Hep1 細胞接種至6 孔板,每孔2 mL,細胞密度為2×105個/mL,12 h后進行質粒轉染,采用Annexin V-FITC/PI 檢測細胞凋亡。
采用SPSS 19.0 統(tǒng)計學軟件進行數(shù)據(jù)分析,計量資料用均數(shù)±標準差(±s)表示,兩組間比較采用T檢驗,多組間比較采用單因素方差分析;計數(shù)資料用率表示,兩組間比較采用χ2檢驗,以P<0.05 為差異有統(tǒng)計學意義。
用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測XPO4 的PCR 產物,在3000~4000 bp 有一條帶,大小與預期相符(圖1)。
用KpnⅠ和EcorⅤ雙酶切pcDNA3.1-XPO4,對照質粒為pcDNA3.1,XPO4基因正確插入pcDNA3.1載體中(圖2)。
圖1 XPO4 的PCR 擴增圖
圖2 pcDNA3.1-XPO4 質粒酶切圖
在重組質粒pcDNA3.1-XPO4 轉染組中,有XPO4蛋白表達,在SK-Hep1 細胞對照組和pcDNA3.1 空質粒轉染組中,沒有XPO4 蛋白表達(圖3)。
圖3 Western BloT檢測XPO4 蛋白表達
重組質粒pcDNA3.1-XPO4 轉染組的細胞存活率低于SK-Hep1 細胞對照組和pcDNA3.1 空質粒轉染組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.001)。SK-Hep1 細胞對照組的細胞存活率與pcDNA3.1 空質粒轉染組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)(圖4)。2.5 pcDNA3.1-XPO4 體外對腫瘤細胞凋亡的作用
圖4 CCK-8 檢測SK-Hep1 細胞增殖
重組質粒pcDNA3.1-XPO4 轉染組細胞的早期凋亡率[(13.89±1.62)%]高于SK-Hep1 細胞對照組[(5.14±1.13)%]和pcDNA3.1 空質粒轉染組[(5.79±2.11)%],差異有統(tǒng)計學意義(P<0.001)。SK-Hep1 細胞對照組細胞的早期凋亡率與pcDNA3.1 空質粒轉染組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)(圖5)。
圖5 Annexin V-FITC/PI 檢測XPO4 表達對SK-Hep1 細胞凋亡的影響
肝癌發(fā)病機制復雜,常與相關基因的突變或積累有關?;蛑委熞殉蔀榘┌Y治療的重要研究領域,因此,尋找高效的抑癌基因是腫瘤治療進一步發(fā)展的重要方向。近年來研究發(fā)現(xiàn),真核細胞的細胞核與細胞質之間存在物質交換,細胞核向細胞質輸出許多種類的大分子。出核轉運通過核孔復合物(NPC)通道和選擇性轉運蛋白,同時也依賴核輸出信號結合受體,如XPO4[4]。XPO4 也稱為Exportin 4,可能是一種重要的抑癌基因。本研究探討XPO4 在人肝癌細胞株SKHep1 中的表達對該腫瘤細胞生長增值的影響,結果顯示,pcDNA3.1-XPO4 質粒轉染至SK-Hep1 肝癌細胞中,XPO4 在SK-Hep1 中表達。表達的XPO4可以抑制SK-Hep1 細胞的生長增殖和誘導凋亡。XPO4 抑制腫瘤的機制可能是通過調節(jié)Eif5a 和Smad3 蛋白水平來進行[11]。細胞中XPO4 缺失,影響Smad3 出核,而Smad3 蛋白是TGF-β 的配體,細胞核Smad3 的增加,伴隨TGF-β基因上調,這種影響很好地解釋了當XPO4基因缺失導致TGF-β信號通路的紊亂,使細胞逃逸TGF-β 介導的生長抑制效應,導致多種腫瘤發(fā)生[5,12-13]。近年來的研究發(fā)現(xiàn),Eif5a 在人癌細胞中總體上來說是過度表達的,腫瘤的惡性程度尤其是腫瘤的惡性增值能力、轉移能力與腫瘤細胞內表達的Eif5a密切相關,如果細胞內缺乏XPO4 則有助于Eif5a 的出核,通過XPO4-Eif5a 這一信號通路刺激腫瘤細胞增殖[14-16]。
為了揭示XPO4 對腫瘤細胞的影響,本研究制備了攜帶表達XPO4基因的pcDNA3.1-XPO4 質粒載體,選擇肝癌細胞SK-Hep1 進行實驗。SK-Hep1 細胞系中缺失XPO4基因,通過轉染SK-Hep1,引起XPO4在細胞中表達。CCK-8 檢測細胞增殖顯示,重組質粒pcDNA3.1-XPO4 轉染組的細胞存活率低于SK-Hep1細胞對照組和pcDNA3.1 空質粒轉染組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.001),提示XPO4基因表達能抑制腫瘤細胞生長。重組質粒pcDNA3.1-XPO4 轉染組細胞的早期凋亡率高于SK-Hep1 細胞對照組和pcDNA3.1空質粒轉染組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.001),提示XPO4基因表達對腫瘤細胞有殺傷作用。SK-Hep1 細胞對照組的細胞存活率和早期凋亡率和pcDNA3.1空質粒轉染組比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),提示XPO4基因可能參與并發(fā)揮重要的抑制腫瘤進程的作用。
Liang 等[10]通過對臨床肝癌手術患者的病理檢測,發(fā)現(xiàn)XPO4 在癌旁組織中的表達,高于腫瘤組織,且腫瘤越大表達量越低,提示XPO4可能參與腫瘤進程。Zender 等[11]將肝癌易感小鼠模型和RNAi 技術結合,在小鼠模型中將XPO4 沉默后可引起腫瘤,因此也進一步獲得XPO4 作為抑癌基因的證據(jù)。
綜上所述,肝癌細胞系SK-Hep1 模型不表達XPO4,而通過構建的重組質粒載體轉染,可以在肝癌細胞成功表達XPO4基因,有效抑制腫瘤細胞的增殖和誘導凋亡。因此XPO4基因作為抑癌基因對腫瘤治療具有極大的潛力,增強XPO4基因的表達可以為臨床治療肝癌提供參考依據(jù)。同時仍需深入研究肝癌的發(fā)生機制[17-18],更好地了解XPO4基因抑癌的原因,為疾病的診斷與治療提供新的方向。