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    FIZZ1通過NOTCH信號通路促進(jìn)肺成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)分化

    2020-12-03 09:08:38徐芳王愛利黃鶯
    臨床肺科雜志 2020年12期
    關(guān)鍵詞:血清信號實(shí)驗(yàn)

    徐芳 王愛利 黃鶯

    特發(fā)性肺纖維化( idiopathic pulmonary fibrosis,IPF)主要病理特征是成纖維細(xì)胞(fibroblast,Fb)過度增殖和細(xì)胞外基質(zhì)( extracellularmatrix,ECM) 的大量沉積[1],其中FB的激活及轉(zhuǎn)化為特異性表達(dá)平滑肌a-肌動(dòng)蛋白(a-smooth muscle actin,a-SMA)的肌成纖維細(xì)胞(myofibroblast,MFb)是重要的病理機(jī)制[2],這種表型轉(zhuǎn)化受多種細(xì)胞因子和信號通路調(diào)控。本課題組前期研究顯示發(fā)現(xiàn)于炎癥區(qū)域分子1(Found in inflammatory zone 1, FIZZ1)在肺纖維化中有高表達(dá)[3]。NOTCH信號通路(NOTCH signaling pathway)能夠調(diào)控細(xì)胞分化、增殖及凋亡,參與器官纖維化,在肺纖維化中表達(dá)增高[4]。兩者是否互相影響相互促進(jìn)尚不清楚。本課題研究用NOTCH通路抑制劑即γ-分泌酶抑制劑(N-[N-(3,5-difluorophenacetyl)-L-alanyl]-S-phenylglycine t-butyl ester, DAPT)干預(yù)此表型轉(zhuǎn)化過程,觀察FIZZ1、NOTCH1對a-SMA的表達(dá)的影響,探討肺間質(zhì)纖維化的分子機(jī)制。

    資料與方法

    一、實(shí)驗(yàn)細(xì)胞及儀器試劑

    人胚肺成纖維細(xì)HELF株(中科院上海生命科學(xué)研究院細(xì)胞資源中心 )。DAPT(美國Sigma公司),F(xiàn)IZZ1重組蛋白(美國Santa crue公司)、鼠a-平滑肌肌動(dòng)蛋白抗體(美國Santa crue公司)、NOTCH1抗體(美國Santa crue公司),CCK8 試劑盒(日本同仁公司),Quantscript RT Kit逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(大連TaKaRa公司),SYBRGreen/Floursecein試劑盒(立陶宛Fermentas公司)。RT-PCR反應(yīng)體系中的引物設(shè)計(jì)(武漢巴菲爾生物技術(shù)服務(wù)有限公司)。

    二、肺成纖維細(xì)胞的培養(yǎng)與傳代

    常規(guī)復(fù)蘇HELF細(xì)胞后,在含10%胎牛血清( fetal bovine serum,F(xiàn)BS)的DMEM高糖培養(yǎng)基,37℃、50mL/L CO2的條件下培養(yǎng)。當(dāng)培養(yǎng)瓶內(nèi)細(xì)胞生長達(dá)90%匯合度時(shí),吸棄培養(yǎng)基用PBS緩沖液潤洗一次,加入1%胰蛋白酶消化,置于細(xì)胞培養(yǎng)箱3min,至細(xì)胞變圓脫落,加入等量DMEM培養(yǎng)基終止胰酶消化。利用膠頭滴管反復(fù)、緩慢、輕柔吹打,制成細(xì)胞懸液,1 000r/min,離心5 min后棄除上清。加入培養(yǎng)液,將所得HELF制成細(xì)胞懸液,分瓶傳代,取對數(shù)生長狀態(tài)良好的細(xì)胞用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

    三、CCK8實(shí)驗(yàn)檢測FIZZ1刺激后細(xì)胞增殖活性

    將呈對數(shù)生長的細(xì)胞取出,制成單細(xì)胞懸液接種于96 孔板內(nèi),每孔100ul(細(xì)胞濃度約每毫升含1×105~2×105個(gè)細(xì)胞),然后加入100ul培養(yǎng)液,37℃、50mL/L CO2繼續(xù)孵育,貼壁4小時(shí)。棄掉舊的培養(yǎng)液,根據(jù)加入FIZZ1濃度分組:分別加入不同濃度的FIZZ1(0.25ug/mL,0.5 ug/mL,1ug/mL,2ug/mL),空白組(無血清DMEM),處理24小時(shí)后,吸棄孔中培養(yǎng)基,用無血清培養(yǎng)基洗滌2次,每孔分別加入10% CCK8試劑培養(yǎng)基,混勻,放入 CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)4h,測定波長490nm處各組吸光度值(OD值),計(jì)算增值率。細(xì)胞增值率=實(shí)驗(yàn)組OD值/空白組OD值×100%。根據(jù)細(xì)胞形態(tài)及增殖率確定FIZZ1最佳實(shí)驗(yàn)濃度做以下實(shí)驗(yàn)。

    四、觀察DAPT對FIZZ1誘導(dǎo)HELF細(xì)胞增殖的抑制作用

    將細(xì)胞重新分組:空白組、FIZZ1組、DAPT干預(yù)組。DAPT干預(yù)組分別加入不同濃度的DAPT(0.25umol/L,0.5umol/L)預(yù)處理4小時(shí),空白組及FIZZ1組用無血清DMEM代替。除空白組外余下各組再加入最佳濃度的FIZZ1處理24小時(shí),計(jì)算OD值,并確定DAPT的最佳實(shí)驗(yàn)濃度做以下實(shí)驗(yàn)。

    五、實(shí)時(shí)熒光定量PCR測定肺成纖維細(xì)胞a-SMA、NOTCH的表達(dá)

    將細(xì)胞分成3組,分別按上述實(shí)驗(yàn)結(jié)果加入相應(yīng)濃度含不同因子的培養(yǎng)基:對照組(無血清培養(yǎng)基4h+2%PBS 處理24h)、模型組(無血清培養(yǎng)基4h +最佳濃度FIZZ1處理24h)、DAPT組(最佳濃度DAPT的無血清培養(yǎng)基4h +最佳濃度FIZZ1處理24h)。96孔板每組各5個(gè)復(fù)孔。將細(xì)胞消化后離心收集細(xì)胞團(tuán),用Trizol方法提取細(xì)胞總RNA。各樣本取相同質(zhì)量的RNA進(jìn)行DNA逆轉(zhuǎn)錄,RT-PCR方法檢測a-SMA、NOTCH的表達(dá)。GAPDH基因作為檢測基因表達(dá)的內(nèi)參對照。反應(yīng)體系中的引物設(shè)計(jì)如下:NOTCH上游序列: 5'-GGGTGGTCAGGAAAATCATGTCA-3',下游序列: 5'-AGTTCACAGTGGGGACCAGTAT-3',擴(kuò)增長度257bp;a-SMA上游序列: 5′-GACCCAGATTATGTTTGAGACC-3',下游序列: 5'-TCCAGAGTCCAGCACAATACCA-3',擴(kuò)增長度112bp;GAPDH上游序列:5'-CACGATGGAGGGGCCGGACTCATC-3',下游序列:5'-TAAAGACCTCTATGCCAACACAGT-3' ,擴(kuò)增長度240bp。循環(huán)參數(shù):預(yù)變性95℃ 3min,變性95℃ 30s,退火60℃ 30s,延伸72℃ 60s,40個(gè)循環(huán)。

    六、統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

    結(jié) 果

    一、FIZZ1誘導(dǎo)HELF細(xì)胞向肌成纖維細(xì)胞增殖

    用不同濃度FIZZ1刺激HELF后,與對照組相比,見細(xì)胞間隙減小,細(xì)胞核質(zhì)比縮小,形態(tài)由寬大梭形變成長梭形,細(xì)胞數(shù)量增多(圖1B)。CKK8實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示1ug/mLFIZZ1組OD值最高,較空白組明顯增高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=20.54,P=0.025(表1),作為最佳實(shí)驗(yàn)濃度。實(shí)時(shí)熒光定量PCR顯示模型組(1ug/mL FIZZ1)a-SMA表達(dá)較對照組顯著增高(t=23.42,P=0.031﹚(圖2),以上結(jié)果均提示FIZZ1刺激能促進(jìn)HELF向肌成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)化。

    二、FIZZ1刺激HELF細(xì)胞轉(zhuǎn)化中激活NOTCH信號通路

    RT-PCR實(shí)驗(yàn)顯示,用1ug/mLFIZZ1刺激HELF細(xì)胞后,與對照組相比,NOTCH1的表達(dá)顯著增高(t=19.21,P=0.023﹚(圖2),說明 FIZZ1 誘導(dǎo)HELF向肌成纖維細(xì)胞轉(zhuǎn)化過程中激活NOTCH信號通路。用不同濃度DAPT干預(yù)以阻斷NOTCH信號通路,與FIZZ1組相比,細(xì)胞增殖數(shù)量變少(圖1C),OD值顯著降低(表2),a-SMA表達(dá)明顯下降(圖2),說明NOTCH信號通路抑制劑DAPT能抑制FIZZ1介導(dǎo)HELF細(xì)胞增殖。

    圖1 FIZZ1及DAPT對HEFL增殖的影響(×200)

    表1 不同濃度FIZZ1對肌成纖維細(xì)胞的增殖影響

    表2 不同濃度DAPT對FIZZ1誘導(dǎo)HEFL增殖的影響

    圖2 各組HELF細(xì)胞a-SMA、NOTCH mRNA的表達(dá)

    討 論

    肌成纖維細(xì)胞(MFb)被認(rèn)為是纖維化疾病的“靶細(xì)胞”,在正常肺間質(zhì)中以非活化形式少量存在。大量MFb主要來源是上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)和原位成纖維細(xì)胞(Fb)的激活與轉(zhuǎn)化兩種方式。正常肺組織中存在大量原位Fb,在促纖維化因素作用下,F(xiàn)b被持續(xù)激活,大量增殖并產(chǎn)生纖維連接蛋白和膠原,與此同時(shí),F(xiàn)b獲得MFb表型[5],特征性表達(dá)a-SMA,參與組織損傷修復(fù),逐漸形成纖維灶。a-SMA表達(dá)受到許多轉(zhuǎn)錄因子的調(diào)控,也受表觀遺傳學(xué)調(diào)控[6]。

    FIZZ1作為缺氧誘導(dǎo)的有絲分裂因子,在正常肺內(nèi)特異性表達(dá),但量很少,其兼具炎癥因子和生長因子的特性,而在病理情況下,其具有刺激肺動(dòng)脈平滑肌細(xì)胞增殖和血管收縮、促進(jìn)肌成纖維細(xì)胞分化及激活產(chǎn)生細(xì)胞外基質(zhì)等功能[7]。本課題組前期研究已證實(shí)在間質(zhì)性肺纖維化動(dòng)物模型的肺組織中FIZZ1有高表達(dá)[3,8],提示FIZZ1參與肺間質(zhì)纖維化的形成過程。此次研究為了進(jìn)一步探討FIZZ1介導(dǎo)的分子通道對靶細(xì)胞的作用機(jī)制,我們用不同濃度的FIZZ1刺激HELF細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞增殖率較對照組增高,在1.0ug/mL濃度時(shí)最為明顯,且細(xì)胞外形變大,核更大更圓,具有MFb的外形特點(diǎn)。另外,本研究中RT-PCR結(jié)果顯示,選用最佳濃度1.0ug/mL FIZZ1刺激后,作為MFb最主要的標(biāo)志a-SMA mRNA水平明顯增高,以上均說明FIZZ1參與成纖維細(xì)胞(Fb)向肌成纖維細(xì)胞(MFb)的轉(zhuǎn)化過程。

    FIZZ1作為新發(fā)現(xiàn)的炎癥介質(zhì)可能參與MFb的形成,但是通過何種信號通路發(fā)揮作用呢?NOTCH信號通路參與調(diào)節(jié)細(xì)胞的増殖、分化和凋亡等生命活動(dòng),影響著動(dòng)物的生長和發(fā)育[9],與肺部疾病密切相關(guān)[10]。NOTCH信號通路異常激活可致使成纖維細(xì)胞異常增殖,并分化為MFb和細(xì)胞外基質(zhì)[11]。經(jīng)典NOTCH信號通路主要是通過相鄰細(xì)胞間的跨膜受體(NOTCH1-4)與膜系配體[Delta-like(Dll1,3-4)和Jagged(Jag)1-2]結(jié)合而啟動(dòng),NOTCH受體的胞外段被基質(zhì)金屬蛋白酶(MMP)切割,胞內(nèi)段(NICD)被γ-分泌酶裂解并釋放轉(zhuǎn)移到細(xì)胞核內(nèi),與下游效應(yīng)蛋白CSL結(jié)合,激活NOTCH靶基因的轉(zhuǎn)錄[12],調(diào)控細(xì)胞增殖、分化[13]。研究表明,NOTCH信號的激活主要取決于γ-分泌酶的活性,γ-分泌酶特異性抑制劑(DAPT)能夠阻斷NOTCH受體活化的中心環(huán)節(jié),使NOTCH受體分子無法進(jìn)一步轉(zhuǎn)變?yōu)橛行У幕钚云?,進(jìn)而完全阻斷NOTCH信號通路的激活[14]。本研究結(jié)果,用FIZZ1刺激HELF細(xì)胞后NOTCH的mRNA較對照組增高,用DAPT提前處理后NOTCH的mRNA含量較模型組明顯降低,提示FIZZ1刺激HELF表型轉(zhuǎn)化過程中激活NOTCH信號通路,用DAPT阻斷NOTCH信號通路可以抑制細(xì)胞轉(zhuǎn)化及增殖。

    綜合上述,F(xiàn)IZZ1可能通過NOTCH信號通路的激活促進(jìn)成纖維細(xì)胞向肌成纖維細(xì)胞的轉(zhuǎn)化增殖,導(dǎo)致a-SMA分泌增多,加重肺間質(zhì)纖維化的發(fā)生發(fā)展。如果能尋找合適的靶點(diǎn)阻斷該通路,可能會(huì)減輕肺間質(zhì)纖維化的進(jìn)程。

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