薛鮮麗,劉博雅,高紫君,王德培,*
(1.工業(yè)發(fā)酵微生物教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,天津300457;2.天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津300457)
絲狀真菌的次級(jí)代謝是一個(gè)復(fù)雜且多層次的調(diào)控過程,其中涉及到真菌細(xì)胞感受外界環(huán)境(溫度、pH值、滲透壓、光照等)變化的適應(yīng)、調(diào)控基因的表達(dá)、基因簇的轉(zhuǎn)錄激活和翻譯修飾等過程。以上過程不僅受到途徑特異性調(diào)控因子(如碳代謝調(diào)控因子CreA)調(diào)控,同時(shí)也被全局轉(zhuǎn)錄因子(如LaeA、VeA、McrA等)進(jìn)行多重調(diào)控[1]。這些全局性轉(zhuǎn)錄因子的基因不以基因簇的形式存在,卻可以調(diào)控一系列基因的表達(dá)[2]。絲狀真菌在生長過程中很大程度上受外界環(huán)境條件的影響,當(dāng)受到外界環(huán)境(如:強(qiáng)光照、高溫、高滲透壓、氧化脅迫等)刺激時(shí),菌體通過基因調(diào)控表達(dá)相關(guān)基因來改變自身代謝方式,從而減少環(huán)境對(duì)微生物生長的不利影響,最終適應(yīng)環(huán)境變化。研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)菌株處于不利生長環(huán)境時(shí),由全局轉(zhuǎn)錄因子參與的基因調(diào)控途徑發(fā)揮著不可或缺的作用,這為提高菌株耐受性以應(yīng)對(duì)不良環(huán)境提供了新的研究方向。針對(duì)絲狀真菌而言,全局性調(diào)控因子通過調(diào)控相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄激活影響多種次級(jí)代謝物的產(chǎn)生,包括有益次級(jí)代謝產(chǎn)物(如:某些抗生素、降血脂藥物洛伐他汀等)和有害次級(jí)代謝產(chǎn)物(如:黃曲霉毒、赭曲霉毒素等)[3-4]。目前,全局轉(zhuǎn)錄因子功能研究已經(jīng)被應(yīng)用于提高菌株耐受性、定向改造次級(jí)代謝物的產(chǎn)生、提高有益代謝物以及去除有害次級(jí)代謝物產(chǎn)生等。本文就全局性調(diào)控因子LaeA、VeA、McrA和LaeB對(duì)菌株耐受性提高、菌株生長形態(tài)改變及對(duì)次級(jí)代謝物產(chǎn)生影響等方面展開論述。
Bok等從構(gòu)巢曲霉(Aspergillus nidulans)中分離鑒定到了laeA基因[5],隨后的研究中發(fā)現(xiàn)laeA基因還廣泛存在于其他絲狀真菌中,如煙曲霉(Aspergillus fumigatus)、黃曲霉(Aspergillus flavus)、產(chǎn)黃青霉(Penicillium chrysogenum)、橘青霉(Penicillium citrinum)、米曲霉(Aspergillus oryzae)、黑曲霉(Aspergillus niger)等。由構(gòu)巢曲霉laeA基因序列分析發(fā)現(xiàn),該基因的啟動(dòng)子和編碼區(qū)域分別有一個(gè)真菌毒素合成途徑中的特異性調(diào)控蛋白AflR(黃曲霉毒素調(diào)控基因aflR)的結(jié)合基序,另外編碼區(qū)的中游含有一個(gè)S-腺苷甲硫氨酸(S-adenosylmethionine,SAM)結(jié)合的保守的結(jié)構(gòu)域,這個(gè)保守區(qū)域與其他曲霉中的laeA基因有較高同源性,如圖1[1]。
圖1 laeA基因結(jié)構(gòu)示意圖Fig.1 Structure diagram of laeA gene
研究發(fā)現(xiàn),缺失SAM結(jié)合區(qū)域和缺失laeA全基因的菌株表型相同,由此推測laeA主要功能為一種甲基轉(zhuǎn)移酶,其可以改變組蛋白甲基化水平。利用染色質(zhì)免疫共沉淀方法鑒定出構(gòu)巢曲霉中l(wèi)aeA會(huì)甲基化修飾組蛋白H3K9,進(jìn)而使次級(jí)代謝產(chǎn)物柄曲霉素(sterigmatocystin,ST)的合成受到影響[6-8]。另外通過對(duì)序列的分析得出,laeA基因中AflR結(jié)合區(qū)域會(huì)影響次級(jí)代謝物的生成,基本機(jī)制是由于AflR對(duì)laeA具有負(fù)調(diào)控作用,并從轉(zhuǎn)錄水平得到驗(yàn)證,即通過轉(zhuǎn)錄水平分析發(fā)現(xiàn)AflR的過表達(dá)反而會(huì)下調(diào)laeA表達(dá)水平。眾所周知,參與次級(jí)代謝和營養(yǎng)利用途徑的基因均以基因簇的形式存在于真菌中。laeA則是黑曲霉次級(jí)代謝產(chǎn)物基因簇基因轉(zhuǎn)錄所必需的調(diào)控因子,但并不調(diào)控營養(yǎng)利用途徑和spoC1孢子形成基因簇[8]。研究發(fā)現(xiàn),△laeA突變株中,次級(jí)代謝產(chǎn)物柄曲霉素(ST)合成受阻,但在ST基因簇的外部額外拷貝一個(gè)aflR基因可以回補(bǔ)laeA缺失,使其調(diào)控的柄曲霉素(ST)的表達(dá)恢復(fù)。此外,將不受到laeA調(diào)控的argB基因(編碼尿素合成過程中關(guān)鍵酶鳥氨酸氨甲?;D(zhuǎn)移酶)整合到ST基因簇中,則會(huì)受到laeA的調(diào)控,進(jìn)一步說明laeA調(diào)控下游基因簇與基因所在位置相關(guān),而與具體基因功能關(guān)系不大[8]。近期研究表明,laeA對(duì)次級(jí)代謝物的調(diào)控具有位置偏好性,被其調(diào)控的基因簇多發(fā)生在染色體亞端粒區(qū)域[9]。除此之外,研究發(fā)現(xiàn)敲除LaeA導(dǎo)致曲酸的合成顯著下降[10],其中kojR基因是曲酸合成基因簇中的關(guān)鍵基因[11],因此推測LaeA可能調(diào)控kojR基因的轉(zhuǎn)錄進(jìn)而影響曲酸的產(chǎn)生,但這還需要進(jìn)一步的研究確定。目前對(duì)LaeA調(diào)控機(jī)制已有大量研究,但是其調(diào)節(jié)機(jī)制細(xì)節(jié)還不是很透徹清楚。
LaeA作為全局性調(diào)控因子,對(duì)多種絲狀真菌生長進(jìn)程和菌落形態(tài)有明顯影響。Kale等的研究證明,LaeA影響菌核的形成,在A.flavus菌株中敲除或過表達(dá)laeA基因會(huì)相應(yīng)導(dǎo)致無法產(chǎn)生菌核或者菌核的數(shù)量增加[12]。同樣,Katarina等研究產(chǎn)黃青霉菌,敲除laeA會(huì)減少其孢子的形成[13];在A.fumigatus菌株中Bok等研究敲除或回補(bǔ)laeA基因?qū)︽咦佑绊懪c產(chǎn)黃青霉菌一致[14]。上述結(jié)果充分證明LaeA對(duì)絲狀真菌生長和孢子形成存在不同影響。laeA缺失對(duì)絲狀真菌生長形態(tài)及分生孢子的影響見圖2。
如圖2A和圖2C所示,LaeA可影響紅曲霉和橘青霉的菌落直徑、孢子萌發(fā)和分生孢子形成,紅曲霉△laeA的突變株(編號(hào)2)出現(xiàn)菌落異常(如圖2A),比野生菌相同時(shí)間菌絲生長快、菌落直徑大,而且未發(fā)現(xiàn)子囊孢子,分生孢子數(shù)量則是野生型的3倍(如圖2B)。另外laeA基因缺失突變株分生孢子萌發(fā)率高于野生型[15],說明失去LaeA調(diào)控后,促進(jìn)了紅曲霉無性分生孢子的生成,同時(shí)失去有性繁殖子囊孢子的產(chǎn)生。周峰研究發(fā)現(xiàn)在橘青霉中過表達(dá)laeA基因,導(dǎo)致橘青霉在黑暗條件下的分生孢子產(chǎn)量較野生型降低9.9%(如圖2D)[16]。但在構(gòu)巢曲霉中缺失laeA基因不影響分生孢子的形成,可能機(jī)理是LaeA會(huì)調(diào)控Hülle細(xì)胞形成,該細(xì)胞功能為輔助分生孢子發(fā)育,laeA缺失突變株由于缺失該細(xì)胞會(huì)使得閉囊殼發(fā)育異常,與野生型相比較其所含的子囊孢子形狀小且數(shù)量少僅為野生型的五分之一,但是其生育能力不受影響[17]。綜上說明,LaeA對(duì)于不同絲狀真菌中有性/無性繁殖孢子形成存在一定差異的影響,基于現(xiàn)有文獻(xiàn)得到初步結(jié)論,LaeA對(duì)絲狀真菌抑制無性分生孢子的產(chǎn)生,有助于有性生殖或子囊孢子的形成,但推測LaeA在參與調(diào)控有性/無性孢子形成時(shí)可能會(huì)存在不同調(diào)控機(jī)制,其相關(guān)參與的蛋白還有待于深入挖掘。
圖2 laeA缺失對(duì)絲狀真菌生長形態(tài)及分生孢子的影響Fig.2 Effection of ΔlaeA in filamentous fungi on morphology and conidiospores
LaeA的全局性調(diào)控功能對(duì)次級(jí)代謝產(chǎn)物的影響在很多絲狀真菌中得到證實(shí)。目前由絲狀真菌產(chǎn)生的具有生物活性的次級(jí)代謝物,被廣泛研究,既包括對(duì)人類有益的如各種抗生素、降脂藥物前體洛伐他汀等,也包括對(duì)人類有害的毒性或致癌性的次級(jí)代謝物,如:黃曲霉毒素、赭曲霉毒素等。研究人員發(fā)現(xiàn)增加laeA基因拷貝數(shù)可以激活沉默的次級(jí)代謝產(chǎn)物相關(guān)基因簇,進(jìn)而使有益于人類的次級(jí)代謝物得到高產(chǎn),例如在橘青霉中過表達(dá)laeA基因可使其次級(jí)代謝物美伐他汀的產(chǎn)量較對(duì)照提高5.42倍[16];在煙束曲霉(Aspergillus fumisynnematus)中l(wèi)aeA基因拷貝數(shù)的增加會(huì)提高環(huán)匹阿尼酸(cyclopiazonic acid,CPA)積累[18]。此外,運(yùn)用敲除技術(shù)也可調(diào)控相關(guān)基因簇的表達(dá)進(jìn)而抑制次級(jí)代謝物生成,在不同的絲狀真菌中都有相關(guān)報(bào)道:Bok等研究發(fā)現(xiàn)在構(gòu)巢曲霉中l(wèi)aeA基因的缺失,導(dǎo)致其不產(chǎn)生次級(jí)代謝產(chǎn)物柄曲霉素ST,如圖3所示。
圖3 LaeA參與次級(jí)代謝的調(diào)控Fig.3 Depicts of LaeA involvement in secondary metabolite regulation
黃曲霉毒素(aflatoxin,AF)是由黃曲霉或寄生曲霉產(chǎn)生的一類具有毒性和致癌性的次級(jí)代謝產(chǎn)物,在黃曲霉中敲除或過表達(dá)laeA基因會(huì)相應(yīng)地抑制或促進(jìn)真菌毒素AF的合成。其調(diào)控機(jī)制是,AF的合成是通過受控于G蛋白的信號(hào)通路,細(xì)胞外的刺激信號(hào)(如:氮源、碳源等)反饋于細(xì)胞核內(nèi),在核內(nèi)受到全局性轉(zhuǎn)錄因子LaeA調(diào)控,經(jīng)過AflR專一途徑使其特異結(jié)合到AF基因簇的啟動(dòng)子區(qū)域,從而激活A(yù)F基因簇的表達(dá)和合成(如圖3)[19]。同時(shí)相關(guān)研究表示,敲除laeA會(huì)影響細(xì)胞壁的疏水性,破壞了AF合成時(shí)所需要的細(xì)胞穩(wěn)定性。綜上所述,LaeA是通過影響了AflR蛋白表達(dá)進(jìn)而影響AF合成啟動(dòng),最終影響到AF的合成。研究表明在煙曲霉中l(wèi)aeA基因的缺失會(huì)減少其毒性次級(jí)代謝物膠囊毒素的產(chǎn)量[20];在產(chǎn)赭曲霉毒素的黑曲霉中敲除laeA也會(huì)減少赭曲霉毒素A(ochratoxinA,OTA)生產(chǎn),尤其是在生長7 d后發(fā)生大幅度降低,在光照和黑暗條件下分別減少92%和99%左右,說明LaeA在OTA生產(chǎn)中起到了關(guān)鍵作用[21]。綜合研究現(xiàn)狀說明,在不同絲狀真菌中敲除或過表達(dá)laeA能夠顯著影響不同的次級(jí)代謝產(chǎn)物(洛伐他汀等)的合成,而且都與AflR蛋白表達(dá)調(diào)節(jié)有關(guān),但在不同的絲狀真菌中可能存在的作用機(jī)制不盡相同,這還需要進(jìn)一步地去挖掘影響次級(jí)代謝物的基因和條件。1
圖4 H2O2對(duì)野生型和ΔlaeA突變菌株生長影響Fig.4 The effect of the H2O2on the growth of wild strain and ΔlaeA mutant strain
菌體在生長過程中往往會(huì)受到外界環(huán)境改變而帶來的不利影響,如:溫度、pH值、滲透壓、光照及氧化脅迫等,環(huán)境改變會(huì)影響菌株的自身代謝過程進(jìn)而導(dǎo)致其活性降低以及次級(jí)代謝物的生產(chǎn)力。目前,研究表明當(dāng)菌體受到環(huán)境因素刺激,LaeA會(huì)參與環(huán)境脅迫時(shí)產(chǎn)生的應(yīng)激反應(yīng),從而提高菌體的耐受性。例如,在黑曲霉的laeA敲除突變株,添加H2O2以構(gòu)成氧化脅迫環(huán)境,其濃度依次為0、5、10 mmol/L,隨著濃度的增加發(fā)現(xiàn)對(duì)環(huán)境的敏感性增加,如圖4所示。
在0 mmol/L和5 mmol/L的濃度下,敲除株和野生型(WT)的生長狀態(tài)較為相似,但是相同濃度條件下敲除株較對(duì)照生長明顯受到抑制,且相比之下菌落直徑也變小,而在10 mmol/L的濃度下敲除株的生長則完全受到抑制,而野生型僅表現(xiàn)為生長延遲;由于10 mmol/L的H2O2濃度下完全抑制敲除株,所以通過對(duì)5 mmol/L濃度下的缺失突變株和野生型的胞內(nèi)活性氧自由基(reactive oxygen species,ROS)和抗氧化酶含量變化測定,進(jìn)一步分析面對(duì)脅迫環(huán)境時(shí)胞內(nèi)發(fā)生的防御機(jī)制,試驗(yàn)人員發(fā)現(xiàn)H2O2的添加使得野生株胞內(nèi)ROS增加,抗氧化酶含量也相應(yīng)增加,而相同條件下laeA缺失株的抗氧化酶含量較對(duì)照降低,說明laeA的缺失可能會(huì)影響抗氧化酶的活性使其在受到氧化脅迫時(shí)無法平衡過多活性氧帶來的毒害,造成對(duì)脅迫環(huán)境敏感性的增加[21]。
K?fer等在構(gòu)巢曲霉中首次發(fā)現(xiàn)全局性調(diào)控因子VeA[22]。構(gòu)巢曲霉中的VeA蛋白由573個(gè)氨基酸組成,VeA蛋白N端包括一個(gè)核定位信號(hào)和核輸出信號(hào)。研究表明,不同來源VeA同源蛋白的N端相對(duì)保守,C端具有種屬特異性變化。經(jīng)研究證實(shí),VeA蛋白是一種光敏蛋白,它是Velvet蛋白家族的核心成員,其具有真菌特異性的高度保守的velvet結(jié)構(gòu)域[23-25]。
HeeSeo Kim等對(duì)構(gòu)巢曲霉的veA基因研究發(fā)現(xiàn),其對(duì)有性繁殖正向調(diào)控,對(duì)無性繁殖進(jìn)行反向調(diào)控[23]。這一發(fā)現(xiàn)為之后VeA對(duì)菌種生長發(fā)育和形態(tài)變化方面提供了不同研究方向。研究發(fā)現(xiàn),不同來源veA基因?qū)ζ渖L形態(tài)的影響不盡相同,例如,Ana M.Calvo等試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)在寄生曲霉(Aspergillus parasiticus)中菌核的形成僅發(fā)生在黑暗條件下,并且veA基因的缺失會(huì)導(dǎo)致無法形成菌核[26]。除此之外,還有對(duì)菌落形態(tài)、分生孢子產(chǎn)生及數(shù)量的影響,如在Aspergillus cristatus中敲除veA基因,較野生型僅進(jìn)行有性繁殖相比,ΔveA突變株只生成灰綠色無性孢子,且無性孢子的數(shù)量是野生型的6倍多,如圖5所示[27]。
圖5 野生型和ΔveA突變菌株在MYA(+1 mol/L NaCl)的平板上生長48 h生長形態(tài)及孢子的區(qū)別Fig.5 The differece of phenotypes and conidiation or cleistothecium production of wild strain and ΔveA mutant strain grown in MYA(+1 mol/L NaCl)for up to 48 h
橘青霉過表達(dá)veA基因會(huì)影響菌落形態(tài),較野生型菌落褶皺增多且顏色變淡,在相同時(shí)間菌落直徑與野生株沒有區(qū)別,分生孢子數(shù)比野生株減少60%左右[28],表明veA基因的過表達(dá)抑制分生孢子形成,這與在構(gòu)巢曲霉中過表達(dá)veA基因的試驗(yàn)結(jié)果相似。另外,在黃曲霉的研究中利用DNA微陣列分析以及實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(quantitative real-time polymerase chain reaction,qRT-PCR)等技術(shù)分析,得到缺失突變株和野生型之間有136個(gè)基因存在表達(dá)差異,并且有27個(gè)基因簇隨時(shí)間變化表達(dá)差異顯著,通過對(duì)基因簇的同源性和功能性分析,以及對(duì)可能依賴VeA的基因簇進(jìn)行定量分析,發(fā)現(xiàn)VeA參與黃曲霉多個(gè)生長代謝的調(diào)控(如鞘脂類代謝),且敲除veA會(huì)提高無性產(chǎn)孢能力[29]。綜上研究說明,VeA對(duì)不同絲狀真菌的有性或無性繁殖的調(diào)控有一定的相似性,即抑制無性分生孢子的產(chǎn)生,有助于有性生殖或子囊孢子的形成,這一調(diào)控功能與LaeA功能正好一致。
VeA作為全局性轉(zhuǎn)錄因子,在有益/有害次級(jí)代謝產(chǎn)物合成過程都有一定的影響。比如在橘青霉菌中,過表達(dá)可激活洛伐他汀合成基因簇中調(diào)控的基因mlcR和途徑特異性調(diào)控基因mlcB,促進(jìn)次級(jí)代謝物洛伐他汀的生成,通過轉(zhuǎn)錄組分析,mlcR和mlcB的表達(dá)量都明顯高于對(duì)照;同時(shí)發(fā)現(xiàn)veA基因敲除會(huì)降低洛伐他汀的產(chǎn)量[28]。VeA可以抑制絲狀真菌生長過程中有毒次級(jí)代謝物的產(chǎn)生,如在合成黃曲霉毒素的過程中aflR基因和aflJ基因轉(zhuǎn)錄表達(dá)是必不可少的,Ana M.Calvo等研究veA缺失黃曲霉突變株發(fā)現(xiàn),aflR基因和aflJ基因都無法轉(zhuǎn)錄,推測VeA可能對(duì)aflR基因和aflJ基因轉(zhuǎn)錄有開關(guān)作用,進(jìn)而影響AF的合成[29];此外,通過RT-PCR分析,發(fā)現(xiàn)黑曲霉veA敲除株赭曲霉素OTA合成關(guān)鍵基因pks表達(dá)水平降低,導(dǎo)致該突變株無法合成OTA[21]。
VeA在調(diào)控絲狀真菌次級(jí)代謝產(chǎn)物合成的同時(shí),也參與菌株對(duì)環(huán)境脅迫的適應(yīng)性響應(yīng),主要是通過改變相應(yīng)基因表達(dá)和改變代謝途徑提高菌株對(duì)環(huán)境脅迫的耐受性。例如在黑曲霉中敲除veA基因會(huì)增加對(duì)氧化脅迫的敏感性,在添加過氧化氫構(gòu)成氧化脅迫環(huán)境條件下,△veA黑曲霉突變株隨著過氧化氫濃度的增加生長逐漸受到抑制,在10 mmol/L過氧化氫濃度下菌株生長被完全抑制,而對(duì)照組僅表現(xiàn)出隨著過氧化氫濃度的增加生長遲緩,在相同條件下可以生長形成菌落[21]。另外,與構(gòu)巢曲霉親緣性很近的海洋灰綠曲霉(A.glaucus)中也存在全局轉(zhuǎn)錄因子VeA。海洋生物往往易受到鹽濃度滲透壓脅迫,相關(guān)研究表明,VeA在海洋灰綠曲霉中可響應(yīng)鹽度信號(hào)調(diào)控菌體生長和發(fā)育,無論是敲除突變株還是野生型,其菌落大小都會(huì)隨著鹽度的降低而變小,但是在相同的鹽度條件下缺失株和野生型的菌落大小也存在差異。在發(fā)育過程中,處于人工海水和等滲溶液條件下,敲除株與對(duì)照株的菌落和生長速率較為相似,分生孢子的數(shù)量隨鹽度變化趨勢也相似;但在去離子水的脅迫條件下,敲除突變株在生長發(fā)育的后期較野生型菌落邊緣出現(xiàn)更多不規(guī)則的細(xì)小菌絲,且分生孢子數(shù)量較野生型增加。分生孢子的增加說明菌株傾向于無性繁殖。還有研究發(fā)現(xiàn)灰綠曲霉的無性繁殖可以促進(jìn)次級(jí)代謝物抗腫瘤灰綠曲霉A的產(chǎn)生,這也為利用VeA全局調(diào)控A.glaucus在鹽度變化的條件下高產(chǎn)灰綠曲霉A提供參考[30-31]。綜上研究說明,利用全局轉(zhuǎn)錄因子VeA提高菌株在發(fā)酵過程中對(duì)不良生長環(huán)境的耐受性,對(duì)今后的生產(chǎn)實(shí)踐具有重要意義和應(yīng)用前景。
Bayram等在構(gòu)巢曲霉中發(fā)現(xiàn)VeA作為橋梁連接LaeA和VelB(the velvet like B,屬于Velvet蛋白家族),使其成為異源三聚體,命名為Velvet復(fù)合物,調(diào)控絲狀真菌的形態(tài)發(fā)育和次級(jí)代謝,其調(diào)控機(jī)制如圖6所示。
在光照條件下,VeA多保留在細(xì)胞質(zhì)中,導(dǎo)致VeA無法作為橋梁連接LaeA和VelB形成Velvet復(fù)合物,游離VelB可促進(jìn)無性孢子形成,此時(shí)LaeA表現(xiàn)出低活性且無法形成異源三聚體,從而抑制有性繁殖;當(dāng)處于黑暗環(huán)境時(shí),在α輸入蛋白KapA和VeA的核定位信號(hào)相互作用下,使進(jìn)入細(xì)胞核的VeA量增加,此外,VelB也隨著VeA進(jìn)入核內(nèi)并增多,從而形成影響次級(jí)代謝物基因簇表達(dá)的Velvet復(fù)合物,進(jìn)而促進(jìn)有性繁殖和次級(jí)代謝產(chǎn)物的生成[32-33]。Velvet復(fù)合物在不同真菌中既有保守性又有一定的特異性,而復(fù)合物形成在調(diào)控代謝過程和生長發(fā)育方面的相互調(diào)節(jié)和協(xié)同作用還需要進(jìn)一步的深入研究。
圖6 Velvet復(fù)合體中全局轉(zhuǎn)錄因子之間的協(xié)同作用Fig.6 Synergy between global transcription factors in the velvet complex
McrA是近期在構(gòu)巢曲霉中發(fā)現(xiàn)的一類可能屬于鋅指結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)錄因子的全局調(diào)控因子[34]。對(duì)于全局性調(diào)控mcrA基因的結(jié)構(gòu)特征不如laeA基因的研究深入全面,目前只在構(gòu)巢曲霉、黃曲霉[33]、青曲霉(Penicillium)和土曲霉(Aspergillus terreus)中有相關(guān)報(bào)道。在近期的研究中發(fā)現(xiàn),黑曲霉中存在與構(gòu)巢曲霉中McrA同源性極高的基因,在黑曲霉CBS513.88中,mcrA的缺失會(huì)對(duì)菌株的生長形態(tài)產(chǎn)生一定影響,例如敲除mcrA菌株在MEPA培養(yǎng)基中的表型由野生株所呈現(xiàn)的黑色菌落變?yōu)辄S色菌落,并且菌落直徑較野生型變小,在其他培養(yǎng)條件下(4種真菌培養(yǎng)基PDA、YG、CYA、YMEG),敲除株比野生株的菌落直徑都有不同程度的減小,孢子顏色都發(fā)生改變而且顏色變化差異較大,證明敲除突變株的生長速率要低于野生型[35]。同時(shí)推測外界不同的環(huán)境刺激信號(hào)可能使McrA在調(diào)控同一個(gè)真菌時(shí)能產(chǎn)生不同的調(diào)控機(jī)制,作用于不同的基因?qū)е骆咦宇伾痛笮〉牟町悺?/p>
mcrA基因不僅對(duì)菌株形態(tài)變化有影響,還具有調(diào)節(jié)次級(jí)代謝產(chǎn)物的功能。全局性調(diào)控因子McrA在構(gòu)巢曲霉中被鑒定為是一種負(fù)調(diào)控因子,由轉(zhuǎn)錄組分析結(jié)果得到敲除mcrA顯著改變了1 352個(gè)基因的轉(zhuǎn)錄,其中623個(gè)基因上調(diào)了5倍,且試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)mcrA基因缺失突變株至少上調(diào)了6個(gè)與次級(jí)代謝產(chǎn)物相關(guān)的轉(zhuǎn)錄因子,如上調(diào)AN7819轉(zhuǎn)錄因子,推測其為ST基因簇的一個(gè)調(diào)控基因,過表達(dá)則會(huì)抑制次級(jí)代謝物的產(chǎn)生,在青霉菌和土曲霉的相應(yīng)研究中也得到一致的結(jié)果[33,35]。在對(duì)黑曲霉mcrA基因研究發(fā)現(xiàn),敲除mcrA突變株產(chǎn)生的次級(jí)代謝物通過與對(duì)照組差異分析,比對(duì)得到衣康酸(hexylitaconic acid)的衍生物(3S,8R)-8-hydroxy-3-carboxy-2-methylenenonanoic acid和(3S)-9-hydroxy-3-carboxy-2-methylenenonanoate,以及具有抗菌活性的衣康酸衍生物曲衣康酸A-C(asperitaconic acid A-C),并且通過定量分析發(fā)現(xiàn),McrA正調(diào)控前兩種化合物,負(fù)調(diào)控后者,但是具體的調(diào)控機(jī)制還有待研究。在對(duì)抗環(huán)境脅迫方面,mcrA基因也起到一定的調(diào)控作用。黑曲霉mcrA基因缺失突變株的研究中發(fā)現(xiàn),在高鹽高滲的脅迫條件下,敲除突變株對(duì)Zn2+、Li+離子環(huán)境與野生對(duì)照組相比敏感性降低,對(duì)Na+環(huán)境敏感性升高。說明不同的脅迫環(huán)境可能在影響McrA調(diào)控黑曲霉時(shí)存在差異,其具體作用機(jī)理還有待于進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)[36]。
前期的研究報(bào)道中發(fā)現(xiàn),在植物內(nèi)生菌無花果擬盤多毛孢存在一類全新的全局調(diào)控性因子RsdA[37],且在模式菌株構(gòu)巢曲霉中也發(fā)現(xiàn)其同源基因laeB。該基因是由其表型(loss of aflR express)而命名,預(yù)測其包含同源性較低的兩個(gè)區(qū)域:G-蛋白通路抑制因子和轉(zhuǎn)錄起始因子ⅡA結(jié)構(gòu)域[38]。經(jīng)過試驗(yàn)證明,LaeB調(diào)控構(gòu)巢曲霉的次級(jí)代謝,缺失laeB基因會(huì)間接影響雜色曲霉素的合成。laeB對(duì)黃曲霉在不同培養(yǎng)基上菌體生長及分生孢子的影響見圖7。
圖7 laeB對(duì)黃曲霉在不同培養(yǎng)基上菌體生長及分生孢子的影響Fig.7 The effect of phenotypes and conidiation production of wild strain and ΔlaeB mutant strain grown in different culture
在黃曲霉中,laeB基因缺失突變株較野生型發(fā)生明顯變化(如圖7A),如在PDA培養(yǎng)基上培養(yǎng)的兩個(gè)菌株的對(duì)比,△laeB突變株的分生孢子產(chǎn)量要明顯多于對(duì)照(如圖7B)。通過熒光定量PCR分析分生孢子發(fā)現(xiàn)突變株brlA基因的表達(dá)量上調(diào),brlA則是分生孢子形成的關(guān)鍵基因,推測LaeB通過brlA調(diào)控基因進(jìn)而影響菌落形態(tài);而在GMM培養(yǎng)基的條件下,△laeB突變株的菌落顯著變小,生長受到抑制。同時(shí)代謝產(chǎn)物中無法檢測到黃曲霉毒素B1。熒光定量PCR分析表明,laeB基因缺失菌株影響黃曲霉毒素B1相關(guān)合成aflQ基因以及調(diào)控aflR基因等表達(dá),這些基因的表達(dá)下調(diào)可能導(dǎo)致減少合成黃曲霉毒素B1[39-40]。目前l(fā)aeB基因只在構(gòu)巢曲霉和黃曲霉中有相關(guān)研究,在其它絲狀真菌菌株中未見報(bào)道,因此對(duì)其具體調(diào)控機(jī)制以及對(duì)菌株形態(tài)變化的影響還需要進(jìn)一步的研究。
絲狀真菌是一類重要的微生物,其代謝產(chǎn)生的物質(zhì)眾多,目前已知微生物次級(jí)代謝產(chǎn)物占總數(shù)的一半左右,并應(yīng)用于生物醫(yī)藥和食品發(fā)酵等領(lǐng)域,產(chǎn)生著巨大的實(shí)際應(yīng)用價(jià)值,因此近年來絲狀真菌及其代謝工程研究成為熱點(diǎn)。目前,通過對(duì)絲狀真菌大量的基礎(chǔ)研究發(fā)現(xiàn),其次級(jí)代謝途徑是一個(gè)復(fù)雜且多層次的高精度調(diào)控網(wǎng)絡(luò),包含轉(zhuǎn)錄、翻譯及表型遺傳水平等多層次調(diào)節(jié),其中每一層次都有多種蛋白質(zhì)參與。隨之直接或間接地調(diào)控這些蛋白質(zhì)表達(dá)的全局轉(zhuǎn)錄因子被發(fā)現(xiàn)并得以應(yīng)用。通過對(duì)全局轉(zhuǎn)錄因子的基因鑒定、結(jié)構(gòu)分析以及為闡明其調(diào)控機(jī)制的研究,可以定向改造絲狀真菌調(diào)控次級(jí)代謝物產(chǎn)生相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄表達(dá)。通常采用敲除或過表達(dá)基因的方法,激活絲狀真菌中調(diào)控對(duì)人類有益的次級(jí)代謝物(如抗生素類藥物、降血脂藥物等)產(chǎn)生相關(guān)基因;抑制調(diào)控對(duì)人類有害的具有毒性和致癌性次級(jí)代謝物(如黃曲霉毒素、赭曲霉毒素等)產(chǎn)生的基因。這些次級(jí)代謝產(chǎn)物的研究及其在農(nóng)業(yè)、食品工業(yè)以及醫(yī)療衛(wèi)生等方面的應(yīng)用具有重要價(jià)值。此外真菌在生長或發(fā)酵過程中往往會(huì)受到不同程度及條件的環(huán)境脅迫,而其生長發(fā)育的改變又會(huì)影響到次級(jí)代謝物的合成和產(chǎn)量。在工業(yè)生產(chǎn)中為避免不良環(huán)境影響菌株生長,常規(guī)是人為改變外界壞境條件,例如采取冷卻水循環(huán)系統(tǒng)降低由夏季高溫引起的不利影響,但是這同時(shí)也對(duì)生態(tài)壞境資源造成一定的浪費(fèi),增加了生產(chǎn)成本。因此利用全局轉(zhuǎn)錄因子改善菌株的耐受性以平衡由環(huán)境改變帶來的不利影響以及減少對(duì)生態(tài)環(huán)境的危害也已逐漸成為領(lǐng)域內(nèi)所關(guān)注的焦點(diǎn)。
根據(jù)上述的研究總結(jié),不難發(fā)現(xiàn)對(duì)于全局轉(zhuǎn)錄因子間的相互調(diào)節(jié)和協(xié)同作用的研究還不夠深入。因此laeA、veA基因和Velvet復(fù)合物等其具體的作用機(jī)制和調(diào)控代謝網(wǎng)絡(luò)需要更加系統(tǒng)深入的研究,同時(shí)尋找和挖掘更多的新型全局轉(zhuǎn)錄因子(如LaeA的相似功能基因等),為絲狀真菌在各領(lǐng)域更廣泛地發(fā)展提供更多的可能。這就需要在今后的研究中采取更加全面、更加精確的技術(shù)來研究和完善全局轉(zhuǎn)錄因子的理論基礎(chǔ),如采用代謝組學(xué)、轉(zhuǎn)錄組學(xué)等方法以及結(jié)合生物信息學(xué),對(duì)目的基因或基因簇進(jìn)行檢測分析和編輯,更加系統(tǒng)地設(shè)計(jì)改造基因,為調(diào)控次級(jí)代謝途徑及次級(jí)代謝產(chǎn)物的產(chǎn)生提供新方法新思路,也為今后工業(yè)生產(chǎn)發(fā)酵提供新的理論基礎(chǔ)和技術(shù)支持。