孫華樂,翟曉巧,曹喜兵,鄧敏捷,趙振利,范國強
(1.河南農(nóng)業(yè)大學泡桐研究所,河南 鄭州 450002;2.河南省林業(yè)科學研究院,河南 鄭州 450008)
通過基因組加倍、多倍化在物種形成及植物進化中都起著十分重要的作用。多倍體通常表現(xiàn)出諸多優(yōu)良性狀,如生物量增加、抗逆性增強、對病蟲害抗性增強等,這些優(yōu)良性狀在植物育種中具有重要意義[1]。白花泡桐[Paulowniafortunei(Seem.) Hemsl.]為泡桐科泡桐屬植物,原產(chǎn)于中國,是重要的庭院綠化、速生用材以及防護樹種,具有重要的生態(tài)意義和經(jīng)濟價值,在世界范圍內(nèi)廣泛種植[2]。范國強等[3]用二倍體白花泡桐葉片,利用秋水仙素成功誘導出其同源四倍體,擴大了泡桐的種質(zhì)資源。與二倍體相比,白花泡桐四倍體具有更優(yōu)良的光合特性和更強的抗逆性[4-5]。然而,目前四倍體優(yōu)良性狀在蛋白質(zhì)水平的分子機制尚不清楚,有關白花泡桐二四倍體間的蛋白質(zhì)組變化仍有待探討。
文中利用同位素標記相對定量和絕對定量(isobaric tags for relative and absolute quantitation, iTRAQ)技術對白花泡桐二四倍體的蛋白質(zhì)組進行定量研究,分析兩者之間蛋白質(zhì)表達水平的差異,并對差異表達蛋白質(zhì)進行功能注釋,結(jié)合轉(zhuǎn)錄組分析篩選與四倍體形成特異蛋白質(zhì),為進一步了解四倍體泡桐優(yōu)良特性提供參考。
試驗材料來源于河南農(nóng)業(yè)大學泡桐研究所培養(yǎng)的二倍體及其同源四倍體白花泡桐,培養(yǎng)溫度為(25±2)℃,光照強度為130 μmol·m-2·s-1,光照時間為16 h·d-1。分別剪取上述兩種培養(yǎng)30 d,長約1.5 cm,長勢一致的組培苗頂芽,用液氮冷凍后迅速置于-80℃冰箱內(nèi)。樣品標記為:二倍體白花泡桐(B2、B2_1);四倍體白花泡桐(B4、B4_1)。每個樣品各兩個生物學重復。
使用丙酮沉淀法提取蛋白質(zhì),分別從B2和B4兩種樣品中提取100 μg蛋白質(zhì)并用iTRAQ試劑標記獲得肽段,根據(jù)QIAOetal[6]使用的方法將蛋白質(zhì)消化并用iTRAQ技術標記,將標記后的各組肽段依次進行混合、分離、除鹽和抽干。具體操作步驟詳見文獻[7]。
將抽干得到的組分用緩沖液A(5%乙腈,0.1%甲酸)重懸,用液相色譜儀(型號LC-20 AD,日本京都島津)和分離柱對樣品進行分離,分離后傳輸至AB SCIEX Triple TOF 5600 質(zhì)譜系統(tǒng)(美國),動態(tài)參數(shù)設置詳見文獻[8]。
使用Mascot 2.3.02軟件進行蛋白質(zhì)的鑒定,數(shù)據(jù)庫來源于白花泡桐轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),相關測序數(shù)據(jù)已上傳到美國國家生物技術信息中心(National Center of Biotechnology Information, NCBI)的序列片段歸檔數(shù)據(jù)庫(https:∥www.ncbi.nlm.nih.gov/sra, SRA),登錄號為SRP032166[9]。對鑒定到的蛋白質(zhì)在基因本體論(gene ontology,GO)、京都基因與基因組百科全書(Kyoto encyclopedia of genes and genomes,KEGG)數(shù)據(jù)庫中進行功能注釋。蛋白質(zhì)的差異標準為差異倍數(shù)>1.2或<0.83,且P<0.05。
采用植物總RNA提取試劑盒提取B2和B4中的總RNA。隨機挑選8個差異表達的蛋白質(zhì),用Taq SYBRGreen qPCR Premix試劑進行實時熒光定量聚合酶鏈式反應(quantitative real-time-polymerase chain reaction,qRT-PCR),在美國伯樂公司的CFX96TM Real-TimeSystem熒光定量聚合酶鏈式反應檢測系統(tǒng)上完成。參照DONGetal[10]方法進行PCR擴增,每個樣品3次重復。使用18 S rRNA作為內(nèi)參,數(shù)據(jù)統(tǒng)計采用2-△△Ct法。引物序列見表1。
表1 qRT-PCR分析所用的引物
為了解白花泡桐二四倍體蛋白質(zhì)組的整體信息,對提取的蛋白質(zhì)進行質(zhì)量檢測。兩個樣品蛋白質(zhì)含量符合試驗要求(表2)。共鑒定到458 154個圖譜,Mascot搜庫后,匹配到6 757個圖譜,6 424個特有圖譜,肽段和特有肽段分別為1 229個和1 199個,最終鑒定到696個蛋白質(zhì)[(圖1(a)],這些蛋白質(zhì)的相對分子質(zhì)量主要集中在10~60 ku,其中占較大比例的范圍為10~20 ku[(圖1(b)],肽段長度主要集中在7~15個氨基酸[(圖1(c)],肽段序列覆蓋度在5%~10%的蛋白質(zhì)占比最多[(圖1(d)]。
表2 白花泡桐蛋白質(zhì)信息
注:圖1(d)中括號內(nèi)的數(shù)字代表肽段序列覆蓋在每個區(qū)間中蛋白質(zhì)的數(shù)量。Note:the numbers in brackets in figure 1 (d) represent the number of proteins in each interval covered by the peptide sequence.
為進一步了解四倍體優(yōu)良特性相關的特異蛋白質(zhì),對B2和B4兩樣本鑒定到的總蛋白質(zhì)進行差異分析。結(jié)果共鑒定到75個差異表達的蛋白質(zhì),其中,39個上調(diào),36個下調(diào)。GO富集分析結(jié)果顯示,顯著性富集的GO條目有40個:細胞組分主要條目有胞漿、液泡、核糖體[圖2(a)];生物進程主要條目有非生物刺激響應、前體代謝物和能量的產(chǎn)生、滲透脅迫響應[圖2(b)];分子功能主要條目有銅離子結(jié)合、果糖二磷酸醛縮酶活性、醛裂合酶活性[圖2(c)]。KEGG通路富集分析參與了35條代謝通路,主要包括代謝途徑(29,48.33%)、糖酵解/糖異生(7,11.67%)、次生代謝產(chǎn)物的生物合成(17,28.33%)、光合生物的碳固定(8,13.33%)和氧化磷酸化(5,8.33%)等(表3)。
圖2 差異表達蛋白質(zhì)的基因本體論功能注釋分類
表3 差異表達蛋白質(zhì)的KEGG代謝通路分析
為了篩選與倍性相關的差異蛋白質(zhì),把上述得到的蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)與白花泡桐轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)進行關聯(lián)分析。結(jié)果顯示,總蛋白質(zhì)關聯(lián)到18 984個基因,其中75個差異蛋白質(zhì)關聯(lián)到1 158個基因,在75個差異蛋白質(zhì)中,有65個對應的基因在轉(zhuǎn)錄水平上變化不明顯;有37個不差異的蛋白質(zhì),但其對應的基因在轉(zhuǎn)錄水平差異表達。在關聯(lián)到的9個差異蛋白質(zhì)中,有7個蛋白質(zhì)變化趨勢與其對應基因的變化趨勢一致,這7個蛋白質(zhì)中有4個注釋到KEGG數(shù)據(jù)庫中,分別是鎂螯合酶H亞基(m.55631)、V型H+轉(zhuǎn)運ATPase亞基A(m.33869)、細胞色素C氧化酶亞基5b(m.12004)和果糖二磷酸醛縮酶(m.24953);有兩個差異表達蛋白質(zhì)豐度變化趨勢和其對應基因的變化趨勢相反,蛋白質(zhì)豐度減少,但其對應的基因均上調(diào),這兩個蛋白質(zhì)只有玉米黃素環(huán)氧化酶(m.32969)注釋到KEGG數(shù)據(jù)庫中。
為了驗證測序結(jié)果的可靠性,在B2和B4文庫中隨機挑選m.13192(谷胱甘肽S-轉(zhuǎn)移酶)、m.29938(L-抗壞血酸氧化酶)、m.24953(果糖二磷酸醛縮酶)、m.40032(銅氧化酶)、m.32969(玉米黃質(zhì)環(huán)氧酶)、m.39316(蛋白二硫鍵異構(gòu)酶A1)、m.9824(2-磷酸乙醇酸磷酸酶1)、m.16063(羧亞甲基丁烯酸酶)等8個差異蛋白質(zhì)進行qRT-PCR驗證(圖3)。B2表達量歸一化為1,18 S rRNA作為內(nèi)參。結(jié)果顯示:4個基因在蛋白質(zhì)水平和轉(zhuǎn)錄水平均上調(diào),4個基因在蛋白質(zhì)水平上調(diào)而在轉(zhuǎn)錄水平下調(diào),這種結(jié)果可能是由于基因轉(zhuǎn)錄、蛋白質(zhì)翻譯后加工和修飾,或者mRNA和蛋白質(zhì)的降解等因素造成的。
注:**表示B2和B4之間差異達0.01顯著水平;*** 表示B2和B4之間差異達0.001顯著水平。Note: ** represents significant differences between B2 and B4(P<0.01),and *** represents significant differences between B2 and B4(P<0.001).
植物在受到生物脅迫(如植原體、病毒、真菌等)和非生物脅迫(如高低溫、干旱、鹽漬等)時啟動信號轉(zhuǎn)導通路,進而產(chǎn)生抗性[11]。相對于同源二倍體,多倍體植物的抗逆性更強,比如冷調(diào)節(jié)的穩(wěn)定性[12]和光保護[13],多倍化有助于競爭能力的進化[14]。多倍化植物在形態(tài)和生理上有一定程度的變化,如器官增大、抗逆性增強等,另外,植物內(nèi)部代謝物的產(chǎn)量、營養(yǎng)成分、內(nèi)源激素以及次生代謝物質(zhì)等的變化也對抗逆性有所增強。文中利用iTRAQ技術對二倍體及其同源四倍體白花泡桐的蛋白質(zhì)組進行了研究,從蛋白質(zhì)層面上了解二四倍體植物之間生理生化指標的差異。前人研究結(jié)果表明,泡桐同源四倍體中與脅迫響應相關的基因相對于二倍體顯著上調(diào)[15-18]。此外,泡桐同源四倍體響應干旱脅迫和鹽脅迫的microRNA對應的靶基因與二倍體親本相比上調(diào),增加了其對環(huán)境的適應性[19-21]。
與二倍體親本相比,白花泡桐四倍體參與應對生物脅迫和非生物脅迫的蛋白質(zhì)差異表達。例如,在泡桐發(fā)育和脅迫耐受性中起重要作用的果糖二磷酸醛縮酶(m.24953)和L-抗壞血酸氧化酶(m.29938)。結(jié)果表明,對同源四倍體蛋白質(zhì)豐度的調(diào)節(jié)可能導致了其對環(huán)境適應性的增強。因此,與二倍體親本相比,脅迫相關蛋白質(zhì)和光合作用相關蛋白質(zhì)在四倍體白花泡桐中的豐度均較高,為四倍體泡桐生長抗逆性強和生長速度快的優(yōu)良特性提供了解釋。
在植物中抗壞血酸氧化酶(ascorbate oxidase,AAO)屬于多銅氧化酶家族,定位于植物細胞壁[22]。AAO具有重要的意義,與植物生長發(fā)育、逆境和衰老等有關[23]。AAO在四倍體白花泡桐中表達量明顯高于二倍體,對同源四倍體蛋白質(zhì)豐度的調(diào)節(jié)可能導致了其對環(huán)境適應性的增強。
鎂螯合酶主要由H、I和D三個亞基組成[24-25],通過催化原卟啉IX和Mg2+螯合形成鎂原卟啉IX,它是葉綠素合成過程中的關鍵酶。其中,鎂螯合酶H亞基為該復合體主體,在反應中起到關鍵性作用,其它亞基,如I和D亞基可能通過H亞基參與調(diào)控[26],其表達均能影響葉綠素合成[27]。通過這3種主要亞基的協(xié)調(diào)以及配合,并在ATP驅(qū)動下,Mg2+與原卟啉IX螯合,最后推動葉綠素合成。鎂螯合酶H亞基在四倍體泡桐中表達量明顯高于二倍體,這說明四倍體在葉綠素合成、抑制黃化等方面明顯增強。
從文中的蛋白質(zhì)組學和轉(zhuǎn)錄組學數(shù)據(jù)得出了不同的豐度/表達結(jié)果,這可能是因為轉(zhuǎn)錄后調(diào)控或翻譯后修飾未將基因表達差異轉(zhuǎn)化為蛋白質(zhì)豐度差異,或者是因為蛋白質(zhì)組學水平低估了同源四倍體與二倍體親本之間的差異,基于iTRAQ的分析,確定了差異表達蛋白質(zhì)的數(shù)量估計不同樣品的倍數(shù)變化。據(jù)報道,基于iTRAQ的方法可能存在準確性低的問題,因為它們可能會系統(tǒng)地低估比率,尤其是當比率變化較大時[28]。蛋白質(zhì)豐度和mRNA表達水平之間一致性較缺乏,主要是由以下幾個因素造成:轉(zhuǎn)錄調(diào)控和翻譯后修飾可以使蛋白質(zhì)豐度和mRNA表達水平間有差異的存在,例如,調(diào)節(jié)其靶基因表達的small RNA(包括micro RNA)在許多生物學過程中(如抗病抗旱等)發(fā)揮重要作用[29];不同試驗技術的局限性也可能導致此問題;由于基因表達有一定時空特異性,因此,不同生長階段、生長部位的組織可能會導致試驗結(jié)果不同。對整個組織的蛋白質(zhì)組學進行研究可能會得出更全面的信息,而對特定細胞器的研究可能會更準確地顯示差異??傊M管相關性不是很高,但轉(zhuǎn)錄組和蛋白質(zhì)組數(shù)據(jù)的各自及關聯(lián)分析對于深刻了解多倍體至關重要。
本研究利用iTRAQ及液相串聯(lián)質(zhì)譜技術,對白花泡桐二倍體及其同源四倍體的蛋白質(zhì)組進行定量,尋找與四倍體形成相關的蛋白質(zhì)和基因。在研究中獲得了二倍體和四倍體白花泡桐蛋白質(zhì)圖譜,鑒定到了與抗逆和光合作用等相關的差異表達蛋白質(zhì),預測銅氧化酶、L-抗壞血酸氧化酶、鎂螯合酶與白花泡桐多倍化相關,指出了二倍體及其同源四倍體在蛋白質(zhì)水平上的差異,為培育新的泡桐品種和擴大現(xiàn)有種質(zhì)資源提供理論依據(jù)。