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    磷酸二酯酶抑制劑對糖尿病大鼠抗氧化作用的實驗研究

    2013-08-27 03:25:08于海英焦金菊
    解放軍醫(yī)學院學報 2013年4期
    關(guān)鍵詞:米力農(nóng)茶堿氧化應激

    于海英,焦金菊

    遼寧醫(yī)學院 生理學教研室,遼寧錦州 121000

    糖尿病晚期患者多數(shù)伴有多器官并發(fā)癥,成為致死的主要因素。研究表明氧化應激在糖尿病及其并發(fā)癥的發(fā)生和發(fā)展中起到重要作用,臨床和實驗研究證實氧化應激及抗氧化能力減弱是糖尿病并發(fā)癥的主要病因[1]。應用抗氧化治療可逆轉(zhuǎn)氧化應激對組織的損傷,從而阻止或延緩糖尿病及其并發(fā)癥的發(fā)生、發(fā)展。磷酸二酯酶抑制劑(phosphodiesterase inhibitors,PDEIs)臨床主要用于治療呼吸道痙攣、舒張血管平滑肌、增強心肌收縮力等[2]。最近有報道稱PDEIs具有抗氧化作用[3]。本實驗應用米力農(nóng),昔多芬,茶堿3種PDEIs治療由鏈脲佐菌素誘導的大鼠糖尿病模型,探討3種PDEIs對糖尿病大鼠氧化應激的影響及保護作用,為糖尿病及其并發(fā)癥的藥物治療提供新的思路。

    材料和方法

    1 實驗動物與試劑 健康成年SD(sprague dawley)雄性大鼠30只,體質(zhì)量180~220 g,遼寧醫(yī)學院動物中心提供。鏈脲佐菌素(streptozotocin,STZ)為Sigma公司產(chǎn)品;米力農(nóng)為山東新時代藥業(yè)有限公司產(chǎn)品;茶堿為湖北武漢藥業(yè)有限公司產(chǎn)品;昔多芬為嘉興宜博生物醫(yī)藥科技有限公司出品;丙二醛、總抗氧化能力檢測試劑盒為南京建成生物工程研究所產(chǎn)品。血糖檢測儀為美國強生公司onetouch。

    2 糖尿病大鼠模型建立 將實驗大鼠適應性喂養(yǎng)1周,給予12 h -12 h光照-黑暗周期(6:00 ~18:00)。造模組腹腔注射鏈脲佐菌素40 mg/kg,(STZ溶于0.1 mol/L枸櫞酸緩沖液中,pH值為4.4),對照組腹腔注射等量0.1 mol/L枸櫞酸緩沖液,36 h后由尾靜脈取血測空腹血糖,血糖>16.7 mmol/L且穩(wěn)定即可確認糖尿病。造模過程中約有20%的死亡率,死亡的動物由新動物造模補充。

    3 實驗分組 實驗分5組,即非糖尿病對照組(未注射STZ),將已成模的糖尿病大鼠隨機再分成4組,每組6只:糖尿病對照組;PIDEs組分別為米力農(nóng)組給予米力農(nóng)3.17 mg/(kg·d),茶堿組給予茶堿 100 mg/(kg·d),昔多芬組給予昔多芬 1 mg/(kg·d)。兩個對照組給予相同量的0.9%氯化鈉注射液,連續(xù)15 d灌胃給藥。15 d后所有大鼠先取血液樣本,然后被處死。

    4 血糖、體重測定 大鼠在治療前及治療后5 d、10 d和15 d稱體重,并尾靜脈抽取靜脈血滴在試紙上,采用血糖儀(onetouch)自動讀取數(shù)值,記錄。

    5 丙二醛檢測 將采集的血液樣本用肝素鈉抗凝,1 000 r/min離心10 min。收集上層血漿采用丙二醛(malondualdenyde,MDA)試劑盒進行檢測。過氧化脂質(zhì)降解產(chǎn)物中的MDA與硫代巴比妥酸結(jié)合,形成紅色產(chǎn)物,測在532 nm處最大吸收峰值。

    6 總抗氧化能力測定 TAOC測定采用TAOC試劑盒用鐵還原法進行測定[3]。

    結(jié) 果

    1 血糖、體重檢測 造模后大鼠活動減少,精神萎靡。非糖尿病對照組血漿葡萄糖(5.1~5.4) mmol/L,實驗大鼠經(jīng)STZ誘導后血糖可達(21.8±0.8) mmol/L,表明糖尿病大鼠模型制備成功。三種PDEIs治療組血糖水平與糖尿病對照組治療前后比較血糖水平無明顯變化(表1),說明PDEIs對于血糖無影響。而從體重方面看,非糖尿病組體重隨時間推移逐漸增加,其他組動物體重隨著時間推移逐漸下降,各治療組動物體重下降情況與糖尿病模型組并無統(tǒng)計學差異(表1),因而PDEIs也無調(diào)節(jié)體重作用。

    2 體內(nèi)氧化應激水平 非糖尿病對照組大鼠的TAOC和MDA與糖尿病對照組大鼠比較有統(tǒng)計學意義(P<0.01,表2)。三種磷酸二酯酶抑制劑都顯著降低了血漿MDA水平,同時提高了TAOC水平(P<0.01),且對于TAOC的水平提高能力為米力農(nóng)>昔多芬>茶堿,表2。

    表1 各組動物體質(zhì)量,血糖值(n=6,

    表1 各組動物體質(zhì)量,血糖值(n=6,

    aP<0.01,與NDM組比較,bP<0.05

    ?

    表2 血漿MDA, TAOC測量值(n=6,μmol/L)

    表2 血漿MDA, TAOC測量值(n=6,μmol/L)

    P<0.01,與DM組比較

    ?

    討 論

    糖尿病發(fā)病機制復雜,主要表現(xiàn)為糖代謝紊亂,后期常常出現(xiàn)多個器官的并發(fā)癥而給患者帶來嚴重后果。目前糖尿病并發(fā)癥的致病原因中,體內(nèi)氧化應激水平升高是公認的損傷機制。一些報道認為抗氧化酶活性的減少導致了TAOC降低,如超氧化物歧化酶,過氧化氫酶和谷胱甘肽過氧化物酶[4]。臨床上抗氧化應激的藥物有多種,如天然抗氧化劑維生素C,E等,但是研究報道這些藥物并不能減少糖尿病并發(fā)癥的發(fā)生率[5]。以往PDEIs主要作為強心、血管舒張、平滑肌舒張、抗哮喘、抗抑郁等藥應用[6]。PDEIs的藥理作用主要是增加細胞內(nèi)環(huán)磷酸腺苷(cydic adenosine monophosphate,cAMP)和環(huán)磷酸鳥苷(cyclic guanosine monophosphate,cGMP)水平并促進組織釋放NO[7]。最近研究報道PDEIs有提高機體抗氧化的能力,本實驗分別選取米力農(nóng)(3型PDEIs)、茶堿(4型PDEIs)、昔多芬(5型PDEIs)治療糖尿病大鼠,在一定程度上降低了血漿MDA水平同時提高了總抗氧化能力。米力農(nóng)的抗氧化能力要比昔多芬和茶堿強,能顯著引起總抗氧化能力的提高并減少氧化應激。這表明PDEIs由于抗氧化應激效應而對糖尿病具有保護性作用。研究表明氧化應激引起的生物學反應與脂質(zhì)過氧化物產(chǎn)物有關(guān),能誘發(fā)包括G蛋白、cAMP、cGMP、蛋白激酶C、MAP級聯(lián)等多種致病的細胞內(nèi)信號發(fā)生,最終導致細胞功能障礙[8]。而我們發(fā)現(xiàn)PDEIs在抗氧化應激方面發(fā)揮著重要作用,可以對抗并逆轉(zhuǎn)由STZ誘導的糖尿病大鼠血漿氧化應激水平。

    實驗中發(fā)現(xiàn)PDEIs對于動物的血糖和體重無調(diào)節(jié)作用,這說明其對糖尿病大鼠的保護作用不是通過降低葡萄糖濃度實現(xiàn)的。Bhatia等[9]報道NO在血管內(nèi)皮細胞通過cGMP和cAMP協(xié)同作用發(fā)揮抗氧化作用。他們認為cAMP介導的NO保護內(nèi)皮細胞損傷的機制是通過cGMP依賴抑制cAMP分解實現(xiàn)的。此外還有報道NO能保護肺成纖維細胞、血管內(nèi)皮細胞、人神經(jīng)母細胞瘤細胞和腮腺免受氧化應激引起的細胞損傷[10]。因此應用PDEIs增加了環(huán)化核苷酸能夠?qū)寡趸瘧ひ鸬募毎δ苷系K和細胞凋亡。關(guān)于cAMP和cGMP磷酸二酯酶保護作用的確切機制還需要進一步研究[11]。

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