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    果膠酶研究進(jìn)展及應(yīng)用

    2020-10-30 05:24:54傅海趙佳李偉孫科王希信
    生物化工 2020年5期
    關(guān)鍵詞:剛果紅醛酸果膠酶

    傅海,趙佳,李偉,孫科,王希信

    (1.山東建筑大學(xué)市政與環(huán)境工程學(xué)院,山東濟(jì)南 250101;2.濟(jì)南市錦繡川水庫管理處,山東濟(jì)南 250112)

    果膠裂解酶(Pectinases)是指能協(xié)同分解果膠質(zhì)的一組酶的總稱,是一種復(fù)合酶,是由D-半乳糖醛酸以α-1,4糖苷鍵連接形成的直鏈狀聚合物,主要用于果蔬汁的澄清、咖啡和茶的發(fā)酵生產(chǎn)、榨油、紙漿漂白、棉織物處理、含果膠污水處理、木材防腐、洗滌劑和家禽飼料加工等領(lǐng)域。果膠酶通過切斷果膠C-4位置,并且從C-5處消去一個(gè)H原子,產(chǎn)生一個(gè)不飽和產(chǎn)物裂解果膠。目前果膠酶被廣泛的應(yīng)用于食品、紡織、造紙領(lǐng)域中,但目前果膠酶價(jià)格仍然頗高,亟需開發(fā)新的高產(chǎn)果膠酶菌株。本文以果膠酶高產(chǎn)菌株的篩選為起點(diǎn),介紹了果膠酶高產(chǎn)菌株研究的最新進(jìn)展及應(yīng)用。

    1 果膠酶分類

    果膠酶是指能協(xié)同分解果膠質(zhì)的一組酶的總稱,具體可分為原果膠酶(Protopectinases)、聚半乳糖醛酸酶(Polygalacturonases)、果膠裂解酶(Pectin lyases,PL)和果膠酯酶等(Pectinesterase,PE)[1]。

    目前果膠酶的研究主要有以下三個(gè)方面:從野外分離篩選高產(chǎn)菌株;基因重組構(gòu)建重組菌;生產(chǎn)工藝條件的優(yōu)化。

    1.1 原果膠酶

    原果膠是一種通過α-1,4糖苷鍵連接D-半乳糖醛酸殘基,主鏈中常有阿拉伯聚糖殘基、半乳聚糖殘基、α-L-吡喃鼠李糖殘基等形成側(cè)鏈將纖維素、半纖維素與蛋白質(zhì)連接組成的不溶性多糖聚合物[2]。

    原果膠酶根據(jù)作用的位置不同又可分為A型原果膠酶和B型原果膠酶。A型原果膠酶主要通過水解原果膠內(nèi)部的多聚半乳糖醛酸,促使原果膠水解。B型原果膠酶對(duì)底物有很強(qiáng)的專一性,作用于連接半乳糖醛酸鏈與細(xì)胞壁之間的多糖鏈[3]。

    1.2 聚半乳糖醛酸酶

    聚半乳糖醛酸酶是廣泛分布于真菌與細(xì)菌中的一種果膠酶。在有水參與的條件下,聚半乳糖醛酸酶斷裂非酯化半乳糖醛酸間的α-1,4糖苷鍵。根據(jù)水解的機(jī)理不同,可分為內(nèi)切聚半乳糖醛羧酶(E.C.3.2.1.15)與外切聚半乳糖醛酸酶(E.C.3.2.1.67),內(nèi)切聚半乳糖醛縮酶隨機(jī)地從分子內(nèi)部切斷α-1,4糖苷鍵[4]。反應(yīng)催化如式1所示。外切聚半乳糖醛縮酶從分子的末端開始,逐一切下產(chǎn)生半乳糖醛酸。反應(yīng)催化如式2所示。

    1.3 果膠裂解酶

    果膠裂解酶是通過反式消去作用裂解果膠聚合體的一種果膠酶。果膠裂解酶通過切斷果膠C-4位置,并從C-5處消去一個(gè)H原子,產(chǎn)生一個(gè)不飽和產(chǎn)物裂解果膠。根據(jù)作用機(jī)理與底物的不同,可分為內(nèi)切聚半乳糖醛酸裂解酶(EndoPGL,E.C.4.2.2.2)、外切聚半乳糖醛酸裂解酶(ExoPGL,E.C.4.2.2.9)、內(nèi)切聚甲基半乳糖醛酸裂解酶(EndoPMGL,E.C.4.2.2.10)和外切聚甲基半乳糖醛酸裂解酶(ExoP-MGL)。

    1.4 果膠酯酶

    果膠酯酶(E.C.3.1.1.11)能促進(jìn)脫脂化作用,可脫去半乳糖醛酸主鏈上的甲基,釋放出果膠酸酯與甲醇。反應(yīng)催化如式3所示。

    2 果膠酶的研究進(jìn)展

    目前,果膠酶的研究主要從產(chǎn)果膠酶菌株的篩選、產(chǎn)果膠酶菌株的育種、生產(chǎn)工藝條件優(yōu)化以及果膠酶固定化4個(gè)方面進(jìn)行。

    2.1 產(chǎn)果膠酶菌株的篩選

    果膠酶最初是在研究蔬菜腐敗時(shí)發(fā)現(xiàn)[5],研究發(fā)現(xiàn)果膠酶廣泛存在于真菌、細(xì)菌、原生動(dòng)物、昆蟲中。目前,國內(nèi)外果膠酶的生產(chǎn)菌種主要來源于微生物,利用霉菌生產(chǎn)果膠酶已經(jīng)實(shí)現(xiàn)了商業(yè)化[6]。

    微生物產(chǎn)生的酶分為組成酶和誘導(dǎo)酶2種:組成酶是細(xì)胞內(nèi)長期存在的酶,這種酶的合成與生長發(fā)育條件無關(guān),常進(jìn)行定量合成;誘導(dǎo)酶是在環(huán)境中存在誘導(dǎo)物(一般是反應(yīng)的底物)時(shí),受基因調(diào)控誘導(dǎo)產(chǎn)生的酶。果膠酶就是一種誘導(dǎo)酶,所以在其篩選過程中,常在培養(yǎng)基中添加果膠作為唯一碳源進(jìn)行篩選。

    常用的產(chǎn)果膠酶菌株篩選方法有高碘酸法、剛果紅法、溴酚藍(lán)法,其詳細(xì)篩選方法如下:(1)高碘酸法。果膠降解產(chǎn)物可以溶于高碘酸,通過向篩選培養(yǎng)基中加入碘液,觀察透明圈大小,篩選出透明圈與菌落直徑比大的菌株[7]。(2)剛果紅法。剛果紅可以與大分子多糖結(jié)合,產(chǎn)生有色復(fù)合物。隨著多糖分子量的變化,剛果紅結(jié)合程度會(huì)發(fā)生變化,導(dǎo)致顏色從深紅到淡黃色的變化。產(chǎn)果膠酶菌株篩選中通過對(duì)剛果紅染色產(chǎn)生的有色透明圈與菌落直徑比篩選菌株。張耀廣等[8]利用剛果紅染色法從陳化煙葉中篩得多株果膠酶產(chǎn)生菌。(3)溴酚藍(lán)法。酸性條件下,果膠降解物可與溴酚藍(lán)反應(yīng)生成黃色透明圈,根據(jù)透明圈大小可以判定果膠酶活的大小[9]。除了以上方法外,還有人利用加入的1% CTAB(十六烷基三甲基溴化銨)觀察水解圈的生成,判定果膠酶產(chǎn)生菌[10]。除了利用顯色法與觀察有色產(chǎn)物的方法外,還可直接測(cè)定果膠酶活性,利用DNS法(二硝基水楊酸法),測(cè)量235 nm處吸光值[6]。產(chǎn)果膠酶菌株的篩選方法種類豐富,但主要以顯色法觀察水解圈為主,具體選擇哪一種方法還要根據(jù)實(shí)驗(yàn)的實(shí)際情況與條件確定。

    2.2 產(chǎn)果膠酶菌株的育種

    為適應(yīng)工業(yè)化生產(chǎn)的需求,果膠酶的研究熱點(diǎn)正逐步由菌種篩選的研究轉(zhuǎn)向誘變育種與基因工程菌構(gòu)建等分子生物學(xué)內(nèi)容。

    2.2.1 誘變育種

    誘變育種常見的方法有紫外誘變、化學(xué)試劑誘變、微波誘變和激光誘變等。由田等研究者[11]以從漚麻池中分離篩選出的HDYM-02菌株為出發(fā)菌株,通過紫外誘變,篩得一株在24 h時(shí)酶活力為49 U并達(dá)到產(chǎn)酶高峰期的菌株UV-21,較出發(fā)菌株酶活力提高了1.6倍。杜國軍等[12]利用甲基磺酸乙酯(EMS)處理黑曲霉,經(jīng)過篩選獲得了一株產(chǎn)果膠酶能力達(dá)到2 290 U/g的高產(chǎn)果膠酶菌株HY-M27,產(chǎn)果膠酶能力是出發(fā)菌株的2.91倍。張佰清等[13]在誘變過程中通過響應(yīng)面試驗(yàn)確定了最佳的脈沖強(qiáng)光誘變條件,脈沖電壓2 075 V、脈沖次數(shù)36次、脈沖距離5.4 cm,在此條件下篩出的一株高產(chǎn)果膠酶突變菌株L9,酶活力達(dá)到(188.21±1.22)U/mL,比出發(fā)菌株提高了1.8倍[13]。除了采用單一的突變方式,有研究者嘗試采用復(fù)合誘變技術(shù),大大提高了產(chǎn)果膠酶菌株的產(chǎn)酶能力。杜國軍等[14]采用微波-硫酸二乙酯復(fù)合誘變育種的方式,以黑曲霉HY-D7為出發(fā)菌株,采用微波與化學(xué)試劑硫酸二乙酯作為誘變劑處理黑曲霉孢子懸浮液,經(jīng)過篩選,得到高產(chǎn)果膠酶菌株HY-Z40,產(chǎn)果膠酶活性是出發(fā)菌株的2.51倍。還有研究者采用基因組改組的方式獲得了高產(chǎn)果膠酶菌株。陳幸鴿[15]通過多種誘變方式獲得正突變菌株,制備原生質(zhì)體,滅活原生質(zhì)體后利用PEG(聚乙二醇)誘導(dǎo)融合,進(jìn)行再生、篩選獲得高產(chǎn)果膠酶菌株FS105,酶活性是原始菌株的1.63倍。但誘變育種不確定性較大,往往需要大量的試驗(yàn)才能達(dá)到預(yù)期目標(biāo)。

    2.2.2 基因工程育種

    隨著技術(shù)的進(jìn)步,利用基因工程技術(shù)重組構(gòu)建工程菌,大大縮短了從探索到工業(yè)應(yīng)用的時(shí)間,避免了傳統(tǒng)的誘變育種存在的盲目性。

    劉曉肖等[16]全基因合成了來源于類芽孢桿菌的堿性果膠酶基因pel,并將其克隆至pHKA載體上,成功實(shí)現(xiàn)其在畢赤酵母GS115中的分泌表達(dá);并對(duì)信號(hào)肽和啟動(dòng)子進(jìn)行優(yōu)化,使得搖瓶發(fā)酵誘導(dǎo)168 h,果膠酶酶活性達(dá)到432.36 U/mL。何玉蘭[17]將黑曲霉果膠裂解酶基因家族的5個(gè)果膠裂解酶基因(pelA、pelB、pelC、pelD、pelF)成功克隆,篩選得到兩個(gè)高表達(dá)酸性果膠裂解酶基因pelA和pelD,轉(zhuǎn)化菌株SH2-PelA和SH2-PelD,在搖瓶發(fā)酵條件下最高酶活性分別為11 069.2 U/mL和8 822.6 U/mL。

    2.3 果膠酶發(fā)酵工藝優(yōu)化

    通過基因工程技術(shù)構(gòu)建的果膠酶高產(chǎn)菌株,不能直接應(yīng)用于工業(yè)生產(chǎn),還需進(jìn)一步對(duì)發(fā)酵條件進(jìn)行確定和優(yōu)化。高產(chǎn)菌株的發(fā)酵條件確定常常使用單因素實(shí)驗(yàn)法和響應(yīng)面分析法。王克芬等[18]利用單因素實(shí)驗(yàn)法,對(duì)枯草芽孢桿菌發(fā)酵產(chǎn)酶的碳源、氮源、無機(jī)鹽、磷酸鹽、溫度、pH與接種量進(jìn)行了優(yōu)化,確定了枯草芽孢桿菌的最優(yōu)產(chǎn)酶培養(yǎng)基配方為馬鈴薯淀粉35 g/L、豆餅粉30 g/L、氯化鈣2.775 g/L、硫酸鋅4.025 g/L、Na2HPO4113.6 g/L和果膠20 g/L;最優(yōu)發(fā)酵控制工藝為發(fā)酵溫度35 ℃、接種量3%。單因素試驗(yàn)無法考慮因素之間的相互作用,響應(yīng)曲面設(shè)計(jì)方法(Response Surface Methodology,RSM)是利用合理的試驗(yàn)設(shè)計(jì)方法并通過實(shí)驗(yàn)得到一定數(shù)據(jù),采用多元二次回歸方程來擬合因素與響應(yīng)值之間的函數(shù)關(guān)系,通過對(duì)回歸方程的分析來尋求最優(yōu)工藝參數(shù),解決多變量問題的一種統(tǒng)計(jì)方法。周熠[19]使用響應(yīng)面分析法,預(yù)測(cè)最佳條件,將菌株LYS-5304產(chǎn)果膠酶的酶活力從370.71 U/mL提升到809.30 U/mL。

    2.4 果膠酶固定化研究

    生物酶具有催化活性高、底物專一性強(qiáng)和對(duì)環(huán)境無污染的優(yōu)點(diǎn),但在工業(yè)應(yīng)用中,果膠酶直接加入到生產(chǎn)中,很難再回收利用,提高了生產(chǎn)成本。于是有學(xué)者采用了固定化酶技術(shù)來提高回收利用率,以降低生產(chǎn)成本。

    酶固定化技術(shù)通過物理或化學(xué)方法將游離酶和相應(yīng)載體結(jié)合起來,從而增強(qiáng)了酶的穩(wěn)定性,利于保存運(yùn)輸;同時(shí)又能將酶與底物分離,達(dá)到重復(fù)利用、降低成本的目的。常用的物理方法有吸附法、包埋法等;化學(xué)方法有共價(jià)鍵結(jié)合法、交聯(lián)法等。漆丹萍等[20]利用吸附法在HPD-750樹脂上固定果膠酶后,得到相較游離果膠酶pH適用范圍更廣泛、熱穩(wěn)定性更好并可以重復(fù)使用10次左右的固定化酶。余春柳等[21]用點(diǎn)擊化學(xué)法制備了固定化漆酶并在催化染料降解方面得到了應(yīng)用。

    3 結(jié)語

    果膠酶在食品、紡織業(yè)與造紙業(yè)等行業(yè)有廣泛的應(yīng)用,應(yīng)用效果良好,是一種十分重要的酶,未來應(yīng)用范圍及用量還將不斷擴(kuò)大。但目前價(jià)格相對(duì)于化學(xué)藥品仍較為昂貴,為了促進(jìn)其更好的應(yīng)用,需要在以下4個(gè)方面進(jìn)行改進(jìn):(1)繼續(xù)篩選、分離純化優(yōu)良的野生型果膠酶生產(chǎn)菌株;(2)通過基因工程技術(shù)構(gòu)建新的果膠酶高產(chǎn)菌株;(3)不斷優(yōu)化果膠酶生產(chǎn)菌株的發(fā)酵工藝;(4)繼續(xù)探索更好的果膠酶固定化方式。

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