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    3個(gè)山羊群體NPY-Y1R基因的多態(tài)性與繁殖性能

    2020-10-26 06:54:35李平龍清孟張蕓陳大芳譚曉山周迪李瀟蒙李俊馮文武
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2020年17期
    關(guān)鍵詞:繁殖性能

    李平 龍清孟 張蕓 陳大芳 譚曉山 周迪 李瀟蒙 李俊 馮文武

    摘要:以貴州黑山羊、酉州烏羊和努比亞3個(gè)品種為試驗(yàn)群體,采用PCR產(chǎn)物直接測(cè)序技術(shù)檢測(cè)NPY-Y1R基因的多態(tài)性,并探討其多態(tài)性對(duì)山羊繁殖性狀的影響,為山羊繁殖力的標(biāo)記輔助選擇和育種提供理論依據(jù)。利用Excel計(jì)算基因頻率、基因型頻率;利用POPGEN軟件計(jì)算遺傳多態(tài)性參數(shù)純合度、雜合度、有效等位基因數(shù)和多態(tài)信息含量并對(duì)Hardy-wein-berg平衡狀態(tài)進(jìn)行分析;用SPSS軟件對(duì)3個(gè)山羊群體NPY-Y1R基因多態(tài)性與產(chǎn)仔數(shù)進(jìn)行相關(guān)性分析。結(jié)果表明,NPY-Y1R基因外顯子中檢測(cè)到1個(gè)單核苷酸多態(tài)性(SNP)位點(diǎn),NPY-Y1R基因在外顯子2處存在突變位點(diǎn)G1141A,3個(gè)山羊群體在此突變位點(diǎn)處均存在2種基因型,分別為AG、GG;貴州黑山羊、酉州烏羊和努比亞χ2均未達(dá)到顯著水平,處于Hardy-Wein-berg平衡狀態(tài),貴州黑山羊和努比亞表現(xiàn)為低度多態(tài),酉州烏羊表現(xiàn)為中度多態(tài)。AG基因型個(gè)體在貴州黑山羊、酉州烏羊、努比亞群體中產(chǎn)羔數(shù)顯著高于GG基因型個(gè)體(P<0.05),呈現(xiàn)出AG>GG趨勢(shì)。AG基因型個(gè)體的山羊在后續(xù)的試驗(yàn)中待進(jìn)一步認(rèn)證,結(jié)果可為初步判定山羊NPY-Y1R基因的突變與繁殖性能的研究奠定試驗(yàn)基礎(chǔ)。

    關(guān)鍵詞:貴州黑山羊;酉州烏羊;努比亞山羊;NPY-Y1R基因多態(tài)性;繁殖性能

    中圖分類(lèi)號(hào):S827.3 ??文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A ?文章編號(hào):1002-1302(2020)17-0171-03

    神經(jīng)肽Y1受體(NPY-Y1R)是含有36個(gè)氨基酸殘基的一種單鏈多肽,廣泛分布于中樞神經(jīng)系統(tǒng)和外周神經(jīng)系統(tǒng),與YY肽和胰多肽一起構(gòu)成多肽家族[1-2]??蒲腥藛T在小鼠上研究發(fā)現(xiàn),NPY-Y1R基因敲除能夠損害小鼠促性腺軸,使小鼠對(duì)能量貯存感知的能力下降[3-4],同時(shí)發(fā)現(xiàn)NPY-Y1R基因在下丘腦中的表達(dá)受身體能量平衡變化的影響[5],NPY-Y1R基因在生殖功能調(diào)節(jié)與性發(fā)育中有重要作用,可能是影響山羊產(chǎn)羔數(shù)性狀的一個(gè)主效基因[6]。儲(chǔ)明星等在山東濟(jì)寧青山羊上研究發(fā)現(xiàn)NPY-Y1R基因的EF型濟(jì)寧青山羊產(chǎn)羔數(shù)比EE型多0.58只(P<0.01),并且F等位基因與濟(jì)寧青山羊性早熟和高繁殖力相關(guān)[1]。樊奇在貴州白山羊和川東白山羊2個(gè)群體中發(fā)現(xiàn),AB基因型山羊產(chǎn)羔數(shù)顯著高于AA基因型(P<0.05),而在古藺馬羊、貴州白山羊和川東白山羊3個(gè)群體中AA型和AB型之間的初生質(zhì)量最小二乘均值沒(méi)有顯著差異(P>0.05)[2]。目前,NPY-Y1R基因在山羊上的研究并不是很多,本研究以貴州黑山羊、酉州烏羊、努比亞3個(gè)山羊群體為研究對(duì)象,利用分子遺傳標(biāo)記輔助選擇手段,研究NPY-Y1R基因在3個(gè)山羊群體中的多態(tài)性及對(duì)繁殖性狀的影響,旨在為選育山羊高產(chǎn)仔率品種和培育高繁殖性狀羊群提供理論依據(jù),并應(yīng)用于在實(shí)踐生產(chǎn)中。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    試驗(yàn)樣品采集自貴州省黔西南布依族苗族自治州冊(cè)亨縣冗渡鎮(zhèn)貴州領(lǐng)頭羊山地草牧業(yè)科技有限公司。采取前腔頸靜脈采血方式,采集93只經(jīng)產(chǎn)貴州黑山羊、72只酉州烏羊、63只努比亞的血液,于-20 ℃保存血液備用。整理收集3個(gè)品種山羊產(chǎn)仔記錄數(shù)據(jù)。

    1.2 血液DNA提取

    血液樣本DNA提取采用天根生化科技(北京)有限公司生產(chǎn)的血液基因組DNA提取試劑盒,用1%瓊脂糖凝膠電泳對(duì)DNA質(zhì)量進(jìn)行檢測(cè)。通過(guò)超微量紫外分光光度計(jì)NanoDrop-ONE檢測(cè)DNA D260 nm/D280 nm比值。

    1.3 引物設(shè)計(jì)與合成

    引物參照儲(chǔ)明星等的引物設(shè)計(jì)方法[1],合成NPY-Y1R基因2個(gè)外顯子的引物序列見(jiàn)表1。引物由上海立菲生物技術(shù)有限公司合成。

    1.4 PCR擴(kuò)增

    以貴州黑山羊、酉州烏羊和努比亞基因組DNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR反應(yīng)體系為20 μL,其中PCR Mixture 10.0 μL,上、下游引物各0.5 μL,DNA模板1.0 μL,加蒸餾水至反應(yīng)體系為20 μL。PCR反應(yīng)條件:94 ℃預(yù)變性3 min;94 ℃變性30 s,退火(退火溫度見(jiàn)表1)30 s,72 ℃延伸1 min,共35個(gè)循環(huán);72 ℃延伸5 min;4 ℃保存。

    1.5 PCR產(chǎn)物測(cè)序

    用1%瓊脂糖凝膠電泳對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行檢測(cè),凝膠成像系統(tǒng)觀察電泳結(jié)果。選擇條帶單一、清晰明亮、產(chǎn)量高的PCR產(chǎn)物送上海立菲生物技術(shù)有限公司進(jìn)行雙向測(cè)序。用DNAStar軟件中的SeqMan對(duì)序列結(jié)果進(jìn)行分析。

    1.6 遺傳多態(tài)性分析

    應(yīng)用數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)軟件計(jì)算NPY-Y1R基因的基因頻率、基因型頻率。利用POPGEN軟件計(jì)算遺傳多態(tài)性參數(shù)純合度(Ho)、雜合度(He)、有效等位基因數(shù)(Ne)和多態(tài)信息含量(PIC),并對(duì)Hardy-Wein-berg平衡狀態(tài)進(jìn)行分析。

    1.7 NPY-Y1R基因與產(chǎn)仔數(shù)關(guān)聯(lián)性分析

    利用SPSS軟件對(duì)3個(gè)品種山羊群體NPY-Y1R基因多態(tài)性與產(chǎn)仔數(shù)進(jìn)行關(guān)聯(lián)性分析,結(jié)果以(平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤)表示,以P<0.05為差異顯著性判斷標(biāo)準(zhǔn)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 DNA檢測(cè)結(jié)果

    提取的貴州黑山羊、酉州烏羊和努比亞血液基因組DNA經(jīng)1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),條帶清晰明亮,無(wú)RNA和蛋白質(zhì)等污染(圖1)。利用超微量紫外分光光度計(jì)Nano Drop-ONE檢測(cè)DNA,D260nm/D280 nm值在1.8~2.0之間,說(shuō)明DNA提取效果好,純度高。結(jié)合圖像及檢測(cè)結(jié)果判斷提取的DNA純度與質(zhì)量可滿(mǎn)足后續(xù)試驗(yàn)要求。

    2.2 PCR產(chǎn)物檢測(cè)結(jié)果

    NPY-Y1R基因PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),分別在187、219 bp處有清晰條帶,與預(yù)期片段大小一致。

    2.3 測(cè)序結(jié)果分析

    經(jīng)測(cè)序發(fā)現(xiàn)3個(gè)山羊群體在NPY-Y1R基因的第2外顯子2上的G1141A位點(diǎn)處有突變,并且3個(gè)山羊群體均存在2種基因型,分別為AG、GG型,存在多態(tài)性見(jiàn)圖2。3個(gè)山羊群體在NPY-Y1R基因第2外顯子1上,均未發(fā)現(xiàn)多態(tài)性。

    2.4 NPY-Y1R基因的基因型頻率和等位基因頻率

    3個(gè)品種山羊群體NPY-Y1R基因在G1141A位點(diǎn)上,不同基因型的基因型頻率、等位基因頻率和群體遺傳多態(tài)性見(jiàn)表2。3個(gè)群體NPY-Y1R基因的G1141A位點(diǎn)G等位基因頻率高于A等位基因頻率,G為優(yōu)勢(shì)等位基因;GG基因型頻率高于AG,GG為優(yōu)勢(shì)基因型。3個(gè)品種山羊群體χ2均未達(dá)到顯著水平, 處于Hardy-Weinberg平衡狀態(tài)。3個(gè)品種的基因純合度均較高。根據(jù)多態(tài)信息含量的標(biāo)準(zhǔn):PIC≥0.50為高度多態(tài),0.50>PIC≥0.25為中度多態(tài),PIC<0.25為低度多態(tài),貴州黑山羊和努比亞表現(xiàn)為低度多態(tài),酉州烏羊表現(xiàn)為中度多態(tài)。

    2.5 NPY-Y1R基因不同基因型對(duì)不同品種羊產(chǎn)羔數(shù)的影響

    利用SPSS軟件對(duì)3個(gè)山羊群體NPY-Y1R基因多態(tài)性與產(chǎn)羔數(shù)進(jìn)行相關(guān)性分析。從表3可以看出,貴州黑山羊NPY-Y1R基因AG、GG這2種基因型群體的的平均產(chǎn)羔數(shù)分別為1.75、1.15只,AG型產(chǎn)羔數(shù)比GG型多0.60只,2個(gè)基因型之間產(chǎn)羔數(shù)差異顯著;酉州烏羊NPY-Y1R基因AG、GG這2種基因型群體平均產(chǎn)羔數(shù)分別為1.63、1.15只,AG型產(chǎn)羔數(shù)比GG型多0.48只,2個(gè)基因型之間產(chǎn)羔數(shù)差異顯著;盧比亞NPY-Y1R基因AG、GG 2種基因型群體平均產(chǎn)羔數(shù)分別為1.50、1.17只,AG型產(chǎn)羔數(shù)比GG型多0.33只,2個(gè)基因型之間產(chǎn)羔數(shù)差異顯著。

    3 結(jié)論與討論

    近些年,研究人員不斷地挖掘NPY-Y1R基因的突變位點(diǎn),并且有研究發(fā)現(xiàn)NPY-Y1R基因可能是影響山羊產(chǎn)羔數(shù)性狀的一個(gè)主效基因。國(guó)內(nèi)外對(duì)NPY-Y1R基因在山羊上的研究較少。儲(chǔ)明星等在濟(jì)寧青山羊、波爾山羊、安哥拉山羊和內(nèi)蒙古絨山羊上對(duì)NPY-Y1R基因進(jìn)行多態(tài)性研究發(fā)現(xiàn),在G1141A位點(diǎn)處4個(gè)山羊品種中都存在突變,為CC型與CD型2種基因型,CC和CD基因型濟(jì)寧青山羊上的產(chǎn)羔數(shù)差異不顯著;在C1330T位點(diǎn)處濟(jì)寧青山羊上存在突變,為EE型、EF型2種基因型,EF型濟(jì)寧青山羊產(chǎn)羔數(shù)均值比EE型多0.58只,表明NPY-Y1R基因的F等位基因可能與濟(jì)寧青山羊性早熟和高繁力相關(guān)[1]。

    本試驗(yàn)在3個(gè)山羊群體NPY-Y1R基因外顯子中檢測(cè)到1個(gè)單核苷酸多態(tài)性(SNP)位點(diǎn),NPY-Y1R基因在外顯子2處存在突變位點(diǎn)G1141A,在此突變位點(diǎn)處3個(gè)山羊群體均存在2種基因型,分別為AG、GG。產(chǎn)羔數(shù)關(guān)聯(lián)分析顯示,G1141A位點(diǎn)與貴州黑山羊、努比亞試驗(yàn)群體繁殖性狀顯著相關(guān),具體表現(xiàn)為貴州黑山羊、酉州烏羊、努比亞AG基因型個(gè)體的產(chǎn)羔數(shù)均高于GG基因型個(gè)體,本試驗(yàn)推斷AG基因型可能是貴州黑山羊、酉州烏羊、努比亞繁殖性能的優(yōu)勢(shì)基因型,NPY-Y1R基因的G1141A位點(diǎn)可望作為貴州黑山羊、酉州烏羊、努比亞等繁殖性能選擇的遺傳標(biāo)記而應(yīng)用于山羊的分子選育。

    參考文獻(xiàn):

    [1]儲(chǔ)明星,馮 濤,趙有璋,等. 神經(jīng)肽Y-Y1受體基因(NPY-Y1R)多態(tài)性及其與山羊繁殖性能關(guān)系[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),2009,17(6):960-966.

    [2]樊 奇. 中國(guó)西南地區(qū)山羊繁殖性能相關(guān)候選基因的研究[D]. 重慶:重慶大學(xué),2012.

    [3]Gonzales C,Voirol M J,Giacomini M,et al. The neuropeptide Y Y1 receptor mediates NPY‐induced inhibition of the gonadotrope axis under poor metabolic conditions[J]. The FASEB Journal,2004,18(1):137-139.

    [4]Gamba M,Pralong F P. Control of GnRH neuronal activity by metabolic factors:the role of leptin and insulin[J]. Molecular and Cellular Endocrinology,2006,254:133-139.

    [5]Eva C,Serra M,Mele P,et al. Physiology and gene regulation of the brain NPY Y1 receptor[J]. Frontiers in Neuroendocrinology,2006,27(3):308-339. 9.

    [6]Pellieux C,Sauthier T,Domenighetti A,et al. Neuropeptide Y (NPY) potentiates phenylephrine-induced mitogen-activated protein kinase activation in primary cardiomyocytes via NPY Y5 receptors[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2000,97(4):1595-1600.

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