袁 力,余 萌,王似錦,馬仕洪*
(1.河南省食品藥品檢驗(yàn)所,河南 鄭州 450018;2.中國(guó)食品藥品檢定研究院,北京 100050)
《中國(guó)藥典》2015年版二部共收載了純化水、注射用水及滅菌注射用水3種水[1]。藥典凡例中指出,試驗(yàn)用水除另有規(guī)定外,均系指純化水。目前,純化水可作為配制普通藥物制劑用的溶劑或試驗(yàn)用水,非滅菌制劑用器具的精洗用水。純化水在實(shí)驗(yàn)室的培養(yǎng)基配制和消毒液配制、試驗(yàn)器皿清洗、樣品稀釋和處理等方面發(fā)揮著重要作用。注射用水可作為配制注射劑、滴眼劑等的溶劑或稀釋劑,及用于容器的精洗。藥品生產(chǎn)潔凈區(qū)的清洗、消毒劑的配制、料液的配制都離不開(kāi)注射用水。隨著微生物檢驗(yàn)技術(shù)不斷發(fā)展,人們對(duì)實(shí)驗(yàn)室用水帶來(lái)實(shí)驗(yàn)風(fēng)險(xiǎn)的認(rèn)識(shí)不斷深化和提高。制藥行業(yè)潔凈區(qū)環(huán)境菌(人、空氣、表面)以革蘭陽(yáng)性菌為主[2],這是因?yàn)楦锾m陽(yáng)性菌通常不適合在液體環(huán)境中生存。但水系統(tǒng)中以革蘭陰性菌為主[3],常見(jiàn)葉桿菌屬和鞘氨醇單胞菌屬。某些革蘭陰性菌喜歡水生棲息,并容易在水系統(tǒng)和其他潮濕環(huán)境形成生物膜[4]。生物膜對(duì)抗生素和宿主免疫防御機(jī)制的抗性很強(qiáng)。成熟的生物膜通過(guò)蔓延、部分脫落或釋放出浮游菌等進(jìn)行擴(kuò)展,脫落或釋放的細(xì)菌重新變成浮游菌,又可在物體的表面形成新的生物膜,且形成生物膜之后對(duì)消毒劑或抗生素的耐受性有可能增強(qiáng)[5]。因此,本研究對(duì)某藥品微生物實(shí)驗(yàn)室的水系統(tǒng)進(jìn)行了污染微生物的分離與鑒定,對(duì)水系統(tǒng)中分離菌的分布特點(diǎn)進(jìn)行了分析,并比較了常見(jiàn)的鑒定方法對(duì)水系統(tǒng)微生物的鑒定效果差異。
Milli-Q?HX 7080純水儀(德國(guó)Merck);Elix?純水儀(德國(guó)Merck);SQ810C型壓力滅菌器(日本Yamato);EZ-S StreamTM(美國(guó)Millipore);NU-543-600S型生物安全柜(美國(guó)Nuaire);KD-240恒溫培養(yǎng)箱(德國(guó)Binder);BX53光學(xué)顯微鏡(美國(guó)Olympus);T100型PCR儀(美國(guó)Biorad);Biolog MicroStation 微生物自動(dòng)鑒定系統(tǒng)(美國(guó)Biolog);Riboprinter全自動(dòng)微生物基因指紋鑒定系統(tǒng)(美國(guó)Dupont);BX53光學(xué)顯微鏡(日本Olympus)。
一次性EZ濾杯(規(guī)格:100 ml;孔徑:0.45 μm;材質(zhì):尼龍膜);PrepGEM Bacteria PBA0100型DNA提取試劑盒(ZyGEM);2×Taq Plus PCR MasterMix(Tiangen);Riboprinter細(xì)菌鑒定套裝(美國(guó)Dupont);BiologGENⅢ細(xì)菌鑒定板(美國(guó)Biolog);R2A瓊脂培養(yǎng)基(美國(guó)BD公司)。
使用Milli-Q?HX 7080 Water Purification System和Elix?Reference Water Purification System。二者均為二級(jí)純水系統(tǒng),HX7080系統(tǒng)制備純水用于實(shí)驗(yàn)室消毒液配制、玻璃器皿清洗、高壓滅菌設(shè)備等日常使用,共包括5個(gè)取水點(diǎn):進(jìn)場(chǎng)洗手池口、A區(qū)準(zhǔn)備區(qū)西口、A區(qū)準(zhǔn)備區(qū)東口、B區(qū)滅菌區(qū)口、消毒液配制口。Elix?Reference制備純水用于微生物培養(yǎng)基、緩沖溶液、試劑等的配制,共包括兩個(gè)取水點(diǎn):B區(qū)準(zhǔn)備區(qū)配制口,B區(qū)儀器口。取樣時(shí),兩臺(tái)純水儀處于開(kāi)機(jī)狀態(tài),打開(kāi)各純水取水點(diǎn)開(kāi)關(guān),持續(xù)出水3 min后,用無(wú)菌離心管分別在7個(gè)出口接取純化水各10 ml。
參照中國(guó)藥典2015年版四部通則1105,從上述無(wú)菌離心管中各取供試液1 ml,經(jīng)薄膜過(guò)濾法處理,采用R2A瓊脂培養(yǎng)基[6],32.5 ℃培養(yǎng)24 h,然后22.5℃低溫繼續(xù)培養(yǎng)至5 d[7]。根據(jù)菌落特征,挑取平板中菌落,繼續(xù)用R2A平板劃線分離純化菌落,用于革蘭染色和微生物鑒定,并保存。
2.2.1 革蘭染色 分離微生物經(jīng)固體培養(yǎng)基劃線純化獲得單菌落,在生物安全柜中,用無(wú)菌接種環(huán)挑取少量單菌落涂布于滴加無(wú)菌生理鹽水的載玻片上,自然晾干后,加熱固定,經(jīng)結(jié)晶紫初染1 min,碘液媒染1 min,酒精脫色20~30 s,番紅復(fù)染1 min,自然晾干后,光學(xué)顯微鏡下油鏡觀察。
2.2.2 16S rDNA序列分析 純化后的分離微生物用D N A提取試劑盒提取基因組,作為模板備用;16SrDNA序列引物為27f:5’AGAGTTTGATCMTGGCTCAG3’;1492R:5’TACGGYTACCTTGTTACGACTT3’。每25 μl反應(yīng)體系中包括2×Taq Plus PCR MasterMix,上下游引物各0.2 μmol,模板10 ng。擴(kuò)增條件:95 ℃預(yù)變性4 min;95 ℃變性30 s,50 ℃引物退火45 s,72 ℃延伸90 s,35個(gè)循環(huán);72 ℃延伸5 min。PCR產(chǎn)物測(cè)序交由北京諾賽基因組研究中心有限公司完成。所得拼接結(jié)果輸入BLAST數(shù)據(jù)庫(kù)比對(duì)。
2.2.3 Riboprinter全自動(dòng)微生物基因指紋鑒定 采用Riboprinter對(duì)純化過(guò)的分離微生物進(jìn)行核糖體基因指紋圖譜分析。根據(jù)16S rDNA序列分析結(jié)果,針對(duì)各個(gè)出水口分離微生物,選擇不同屬水平代表菌株進(jìn)行Riboprinter分析。
2.2.4 生化鑒定 采用Biolog微生物自動(dòng)鑒定系統(tǒng)對(duì)純化過(guò)的分離微生物進(jìn)行生化鑒定分析。
對(duì)實(shí)驗(yàn)室7個(gè)出水口中收集到的37株微生物進(jìn)行鑒定分析。7個(gè)出水口的純化水來(lái)源于兩臺(tái)純水儀,按要求對(duì)各出水口純化水進(jìn)行檢測(cè),從培養(yǎng)濾膜上,選取生長(zhǎng)表型(菌落大小,形態(tài),顏色等)存在差異的菌落進(jìn)行進(jìn)一步分離純化,某些取水口菌株重復(fù)性較高,組成類(lèi)似,而某些取水口菌落則相對(duì)單一。培養(yǎng)基配制所用純化水由一臺(tái)純水儀單獨(dú)制備,取水位點(diǎn)分別為純水儀制水口和經(jīng)過(guò)濾膜過(guò)濾之后的培養(yǎng)基配制口。由16S rDNA序列分析結(jié)果可知,本實(shí)驗(yàn)室群落由8屬組成,分別為鞘氨醇單胞菌屬(Sphingomonas),草螺菌屬(Herbaspirillum),青枯菌屬(Ralstonia),甲基桿菌屬(Methylobacterium),葉桿菌屬(Phyllobacterium),生根瘤菌屬(Mesorhizobium),新鞘氨醇菌屬(Novosphingobium),Methylorubrum屬;各屬占比分別為38 %,3 %,16 %,8 %,27 %,5 %,3 %,3 %,見(jiàn)圖1。
圖1 水系統(tǒng)微生物群落分布圖
3.2.1 鏡檢結(jié)果 分離得到的37株菌染色結(jié)果均為革蘭陰性。占比最多的鞘氨醇單胞菌屬和葉桿菌屬染色鏡檢見(jiàn)圖2。鞘氨醇單胞菌屬為專(zhuān)性需氧的革蘭陰性菌,無(wú)芽胞,呈桿狀或略彎;葉桿菌屬為直桿狀革蘭陰性菌。
圖2 分離微生物部分鏡檢結(jié)果
3.2.2 鑒定方法比較 本實(shí)驗(yàn)共分離水系統(tǒng)中微生物37株,對(duì)這些微生物全部進(jìn)行16S rDNA序列分析,部分進(jìn)行Biolog生化鑒定及Riboprinter基因指紋圖譜鑒定(見(jiàn)表1)。Biolog鑒定系統(tǒng)主要是利用不同碳源進(jìn)行新陳代謝過(guò)程中產(chǎn)生的氧化還原酶與顯色物質(zhì)反應(yīng)導(dǎo)致的顏色變化及由于微生物生長(zhǎng)造成的濁度差異,通過(guò)與標(biāo)準(zhǔn)菌株數(shù)據(jù)庫(kù)比較,得出鑒定結(jié)果。Riboprinter 鑒定系統(tǒng)是利用核糖體DNA在不同菌株中的拷貝數(shù)存在差異,用限制性內(nèi)切酶對(duì)細(xì)菌基因組進(jìn)行酶切,菌株之間的酶切片段長(zhǎng)度、數(shù)量存在差異,經(jīng)特異性探針標(biāo)記,形成菌株專(zhuān)一的指紋圖譜,通過(guò)與數(shù)據(jù)庫(kù)中的圖譜比對(duì),得到鑒定結(jié)果。相似度值高于0.85時(shí),結(jié)果可信,相似度值低于0.85時(shí),結(jié)果不可信[8]。16S rDNA序列分析對(duì)上述微生物能給出屬/種水平的鑒定結(jié)果;Biolog給出鑒定結(jié)果的有13株,在屬水平與16S rDNA序列分析一致的有5株;Riboprinter給出鑒定結(jié)果的有17株,其中相似度值大于0.85的只有2株,在屬水平與16S rDNA序列分析一致的有11株。以上結(jié)果顯示本實(shí)驗(yàn)所采用的生化鑒定方法和核糖體分型方法對(duì)水系統(tǒng)中微生物的鑒定能力不足,究其原因,通過(guò)比對(duì)Biolog和Riboprinter的菌種數(shù)據(jù)庫(kù),發(fā)現(xiàn)這兩個(gè)數(shù)據(jù)庫(kù)對(duì)我們所分離的目標(biāo)微生物覆蓋不足,即這些水系統(tǒng)中的微生物并未納入這兩個(gè)鑒定系統(tǒng)的數(shù)據(jù)庫(kù)中,成為導(dǎo)致鑒定成功率較低的原因之一。此外,對(duì)于核糖體分型系統(tǒng)而言,即使數(shù)據(jù)庫(kù)中收載了相應(yīng)種/屬的微生物,但建庫(kù)所用菌株太少,以致代表性不足,也可能導(dǎo)致鑒定準(zhǔn)確性降低。
表1 3種鑒定方法分析結(jié)果對(duì)比
目前有關(guān)實(shí)驗(yàn)室水系統(tǒng)微生物群落分布規(guī)律的報(bào)道較少。試驗(yàn)用水廣泛應(yīng)用于微生物實(shí)驗(yàn)室的培養(yǎng)基及消毒劑的配制、器皿洗滌、樣品稀釋和處理等方面。微生物檢驗(yàn)結(jié)論正確的前提是使用的培養(yǎng)基未受污染,而影響培養(yǎng)基質(zhì)量的因素除培養(yǎng)基本身的配方質(zhì)量、保存條件、滅菌條件等,配制培養(yǎng)基使用的試驗(yàn)用水中微生物污染情況是另一個(gè)重要因素,加強(qiáng)試驗(yàn)用水的日常監(jiān)控和微生物污染狀況的研究,對(duì)于合理、有效地規(guī)范制水系統(tǒng)和儲(chǔ)水裝置的消毒、清洗周期和頻率有重要的參考意義。
對(duì)于純凈水的微生物限度檢查,各國(guó)藥典的規(guī)定見(jiàn)表2。由表2可見(jiàn),中國(guó)藥典和歐洲藥典均采用薄膜過(guò)濾法,使用R2A瓊脂培養(yǎng)基,30~35 ℃培養(yǎng)5 d,而美國(guó)藥典的檢驗(yàn)方法并未固定,培養(yǎng)基、培養(yǎng)溫度和培養(yǎng)時(shí)間均可根據(jù)具體實(shí)驗(yàn)情況進(jìn)行選擇[9]。研究發(fā)現(xiàn),方法一:采用R2A培養(yǎng)基于32.5 ℃培養(yǎng)5 d;方法二:采用R2A培養(yǎng)基于32.5 ℃培養(yǎng)24 h后再于22.5 ℃低溫繼續(xù)培養(yǎng)至5 d;二者相比,R2A培養(yǎng)基先高溫再低溫培養(yǎng)產(chǎn)生的微生物種類(lèi)和數(shù)量較32.5 ℃恒溫培養(yǎng)更多,原因是有些水生微生物適合低溫生長(zhǎng)[7]。故最后選用方法二進(jìn)行試驗(yàn)。
分析本實(shí)驗(yàn)室水系統(tǒng)微生物的構(gòu)成,鞘氨醇單胞菌屬占38 %,葉桿菌屬占27 %,分布特點(diǎn)與國(guó)外水系統(tǒng)監(jiān)測(cè)相關(guān)報(bào)道[10]基本一致。
本實(shí)驗(yàn)分別運(yùn)用基因型(16S rDNA序列分析)、Riboprinter全自動(dòng)微生物基因指紋鑒定系統(tǒng)),表型(Biolog微生物自動(dòng)鑒定系統(tǒng))鑒定方法對(duì)檢出微生物進(jìn)行分析。16S rDNA序列分析作為細(xì)菌鑒定或系統(tǒng)發(fā)育分析最常見(jiàn)的基因型方法[11],對(duì)水系統(tǒng)中分離微生物,在屬水平至種水平具有良好的鑒定效果。前期實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)Riboprinter基因指紋圖譜鑒定技術(shù)對(duì)于水系統(tǒng)中微生物的鑒定效果不佳,推測(cè)由于數(shù)據(jù)庫(kù)相關(guān)菌種的帶型收錄量不足導(dǎo)致,因此未對(duì)所有菌株進(jìn)行該項(xiàng)目的分析。但此種分析方法具備溯源分析的能力(見(jiàn)表1)。以生化反應(yīng)為鑒定依據(jù)的Biolog微生物自動(dòng)鑒定系統(tǒng)分析鑒定結(jié)果與16S rDNA序列分析相比,屬水平的鑒定準(zhǔn)確率為35 %,種水平則為13.5 %,原因是水系統(tǒng)中微生物具有寡養(yǎng)、嗜低溫、生長(zhǎng)緩慢的特性,Biolog微生物自動(dòng)鑒定系統(tǒng)建庫(kù)條件為33 ℃,最長(zhǎng)36 h的培養(yǎng),這些菌株在此條件下往往未能將其代謝特征充分表達(dá),因此在鑒定失敗時(shí),系統(tǒng)給出的原因往往是陽(yáng)性反應(yīng)孔少,無(wú)法與數(shù)據(jù)庫(kù)中錄入菌株進(jìn)行比較。綜上,對(duì)于水系統(tǒng)中微生物的鑒定分析,16S rDNA序列分析能獲得較準(zhǔn)確的鑒定結(jié)果。
16S rDNA序列分析的鑒定結(jié)果顯示,占比最多的是鞘氨醇單胞菌屬[12],其次是葉桿菌屬和青枯菌屬。這些菌的共同特點(diǎn)是常見(jiàn)于潮濕的環(huán)境中,如土壤、河流、湖泊等。青枯菌屬在水系統(tǒng)管道中易形成生物膜[12],能分解芳香烴和酚類(lèi)物質(zhì),因此能耐受酚類(lèi)消毒劑。文獻(xiàn)報(bào)道[13]純化水中常見(jiàn)分離微生物類(lèi)群基本一致,這些微生物均為革蘭陰性桿菌,對(duì)營(yíng)養(yǎng)要求不高,通??稍谒疄榻橘|(zhì)的寡養(yǎng)條件下生長(zhǎng)。一般認(rèn)為,無(wú)論是無(wú)菌藥品還是非無(wú)菌藥品,污染革蘭陰性桿菌的危害會(huì)高于其他種類(lèi)的細(xì)菌[9]。近年,與微生物相關(guān)的召回事件明顯增加,美國(guó)食品藥品監(jiān)督管理局(FDA)在非無(wú)菌召回事件中,一半以上的召回是因?yàn)楦锾m陰性桿菌的污染。因此,要對(duì)水系統(tǒng)中污染微生物的數(shù)量和種類(lèi)加以關(guān)注,必要的情況下,應(yīng)采取適當(dāng)?shù)拇胧14]。
表2 純凈水微生物限度檢查各國(guó)藥典對(duì)比
與制藥工業(yè)中的純水系統(tǒng)相比,本實(shí)驗(yàn)室的水系統(tǒng)未使用循環(huán)水設(shè)計(jì),除終端取水口裝有除菌過(guò)濾器外,7個(gè)出水口均未采取有效的消毒滅菌措施。依靠終端過(guò)濾器僅能對(duì)儲(chǔ)水器和流經(jīng)管路的水進(jìn)行單次純化,無(wú)法有效地降低微生物滋生的風(fēng)險(xiǎn)。另外,實(shí)驗(yàn)室水系統(tǒng)配置的儲(chǔ)水器容積偏大,或管路過(guò)長(zhǎng),特別是取樣部位和分路支管存有積水,同樣會(huì)增大樣本微生物污染的風(fēng)險(xiǎn)。
為減少微生物污染,建議實(shí)驗(yàn)室水系統(tǒng)選擇較小的儲(chǔ)水器,儲(chǔ)水器前端和終端均安裝除菌過(guò)濾器,必要時(shí)可在儲(chǔ)水器中安裝加熱消毒裝置、紫外線消毒裝置或定期使用化學(xué)試劑消毒,并保證系統(tǒng)的管道盡可能短。
本研究對(duì)微生物實(shí)驗(yàn)室的水系統(tǒng)進(jìn)行了微生物檢驗(yàn),并對(duì)分離菌進(jìn)行了鑒定與分析,分離得到的37株菌均為革蘭陰性菌,大多數(shù)菌具有寡營(yíng)養(yǎng)、嗜低溫、易形成生物膜的特點(diǎn),有些菌為條件致病菌。本研究初步表明:采用16S rDNA序列分析技術(shù)對(duì)水系統(tǒng)中微生物鑒定效果較好,Riboprinter全自動(dòng)微生物基因指紋鑒定系統(tǒng)則更適用于近緣微生物的分型溯源,自動(dòng)生化鑒定系統(tǒng)對(duì)于水系統(tǒng)微生物的鑒定效果不佳。建議對(duì)實(shí)驗(yàn)室水系統(tǒng)要定期進(jìn)行微生物檢驗(yàn),并根據(jù)監(jiān)測(cè)情況定期采取消毒措施,如熱消毒、化學(xué)試劑消毒、沖洗或排放等方法。若純化水用于培養(yǎng)基或消毒劑的配制,使用前可使用濾膜過(guò)濾,并定期更換濾膜。