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    FADS2對雞前脂肪細胞脂肪酸代謝相關(guān)基因表達的影響

    2020-10-19 10:49:02歐小倩何程實李春暉劉國慶楊少華
    關(guān)鍵詞:差異檢測研究

    歐小倩, 王 瑩, 何程實, 李春暉, 劉國慶, 楊少華

    (合肥工業(yè)大學(xué) 食品與生物工程學(xué)院,安徽 合肥 230601)

    多不飽和脂肪酸(PUFAs)作為一種生物活性物質(zhì),對人和動物有重要的生理功能。其中,n-6和n-3多不飽和脂肪酸在人和動物體內(nèi)都發(fā)揮著重要作用,作為合成類二十烷酸化合物的前體共同調(diào)節(jié)生物體的生命活動,廣泛參與脂類代謝調(diào)控基因表達、穩(wěn)定細胞膜功能及促進生長發(fā)育等[1-2]。多不飽和脂肪酸在多種生理過程中起著至關(guān)重要的作用,它們作為生物膜的主要成分參與結(jié)構(gòu)功能[3]、代謝能的產(chǎn)生、轉(zhuǎn)錄因子的配體和細胞通路中的信使[4]。多不飽和脂肪酸可由膳食提供,還可以由必需脂肪酸亞油酸和亞麻酸在體內(nèi)通過一系列去飽和及碳鏈延長過程獲得。對于禽類而言,多不飽和脂肪酸的含量直接影響肉質(zhì)風(fēng)味[5]。肉品嫩度是衡量肉質(zhì)的重要因素,肌內(nèi)脂肪對肉嫩度的影響較大。多不飽和脂肪酸能促進脂肪降解,減少體脂沉積[6],因此多不飽和脂肪酸通過降低嫩度影響肉質(zhì)風(fēng)味。

    相關(guān)研究表明,不飽和脂肪酸對脂肪合成具有抑制作用,增加不飽和脂肪酸比例會增加脂肪氧化酸敗程度,導(dǎo)致肉品質(zhì)下降[7]。截至目前,關(guān)于調(diào)控家禽脂肪酸含量機理的研究尚少,因此開展這方面的研究具有重要意義。前期通過候選基因分析策略,雖然找到了一些影響雞肉品質(zhì)的主效基因(例如脂肪酸合成酶(FASN)、超長鏈脂肪酸延伸酶6(ELOVL6)、過氧化物酶體增殖物激活受體(PPARG)等),但很多關(guān)鍵基因還無法得到分離和鑒定, 因此高通量檢測的研究手段刻不容緩?;诖?,本課題組前期通過對具有極端高、低多不飽和脂肪酸比率的黃山黑雞腿肌組織進行轉(zhuǎn)錄組測序分析,整合差異表達基因、己報道的影響雞肉脂肪酸代謝的QTL及基因的生物學(xué)功能分析,從而確定FADS2為影響肌肉中多不飽和脂肪酸含量的候選基因。

    脂肪酸脫氫酶(FADS)是一類催化脂肪酸酰基鏈特定位置C—C脫氫形成C=C的脫氫酶家族,能夠催化脂肪酸生成多不飽和脂肪酸[8]。脂肪酸脫氫酶2(FADS2)是脂肪酸脫氫酶家族成員之一,是多不飽和脂肪酸合成代謝途中關(guān)鍵的限速酶。在生物體內(nèi),具有維持膜的正確結(jié)構(gòu)和調(diào)節(jié)脂肪酸代謝等重要作用。FADS2基因可以通過調(diào)節(jié)脂肪酸代謝,從而影響雞肉的肉質(zhì)風(fēng)味[9]。文獻[10]的研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)ADS2基因3′端非編碼區(qū)SNP突變會對中國荷斯坦牛乳中脂肪酸組成產(chǎn)生重要影響;文獻[11]在對雞的研究中發(fā)現(xiàn),雞FADS2基因5′側(cè)翼區(qū)的G-997C和C-1402T 2個突變位點影響肌肉脂肪酸的含量,并且對雞前期生長速度影響較大。文獻[12]研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)ADS2基因3′UTR區(qū)部分SNP突變及其單倍型對乳中脂肪酸含量具有顯著影響。

    鑒于FADS2基因在畜禽脂肪酸代謝方面的重要作用,本文通過慢病毒介導(dǎo)的表達載體干擾沉默雞前脂肪細胞中的FADS2基因,篩選FADS2基因影響脂肪酸代謝的相關(guān)下游基因,從而探究FADS2基因?qū)﹄u脂肪酸代謝的調(diào)控機制。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    雞前脂肪細胞,本實驗室分離培養(yǎng);雞前脂肪細胞完全培養(yǎng)基購自武漢普諾賽有限公司;25 cm培養(yǎng)瓶、6孔細胞培養(yǎng)板購自南京凱基生物科技有限公司;293T細胞由中國科學(xué)院細胞庫提供;重組穿梭質(zhì)粒和包裝質(zhì)粒pGag/Pol、pRev、pVSV-G購于蘇州吉瑪;Lentivirus-病毒液購自Genepharma;RNAi-Mate 轉(zhuǎn)染試劑購自蘇州吉瑪;總RNA提取試劑盒購自TaKaRa公司;實時熒光定量通用試劑(Cat# GMRS-001 吉瑪, 上海)。

    1.2 方法

    1.2.1 雞前脂肪細胞的分離及培養(yǎng)

    雞前脂肪細胞的分離參照文獻[13-14]。將消化分離出來的細胞稀釋并吹打均勻,細胞計數(shù)器計數(shù),以1×104個/cm2的密度接種于25 cm培養(yǎng)瓶中,37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h后,用PBS清洗3~5次,除去未貼壁的細胞之后每1~2 d換1次培養(yǎng)液,并觀察拍照。

    1.2.2 shRNA干擾序列的設(shè)計與合成

    根據(jù)RNAi設(shè)計原則,設(shè)計雞FADS2基因的RNA干擾片段FADS2-shRNA,由蘇州吉瑪公司合成處理,序列信息見表1所列。

    表1 設(shè)計合成的shRNA序列信息

    1.2.3 shRNA有效片段篩選

    將雞前脂肪細胞消化后接種于24孔板中,待細胞達到60%左右匯合度時,分別加入慢病毒FADS2-259(F1)、FADS2-498(F2)、FADS2-618 (F3),同時以空病毒載體作為對照組。48 h收集細胞,提取總RNA,參照試劑盒說明提取,用于熒光定量檢測FADS2的干擾效率。引物設(shè)計見表2所列。

    表2 引物相關(guān)信息

    1.2.4 FADS2基因的干擾實驗

    將篩選得到的一組有效干擾FADS2的shRNA,同上述操作,感染雞前脂肪細胞,提取總RNA,用于熒光定量檢測FADS2干擾效率。

    1.2.5 基因表達檢測

    將檢驗合格后的雞脂肪細胞RNA根據(jù)其測得的濃度分別取3 μg來構(gòu)建RNA池,用于轉(zhuǎn)錄組的文庫構(gòu)建。利用轉(zhuǎn)錄組測序分析陰性對照(NC)組及干擾(GR)組中差異表達基因。

    1.2.6 構(gòu)建cDNA文庫及轉(zhuǎn)錄組序列

    樣品檢測合格后,用帶有Oligo(dT)的磁珠,通過A-T互補配對與mRNA的ployA尾結(jié)合的方式富集真核生物的mRNA。隨后加入fragmentation buffer將mRNA打斷成短片段,以mRNA為模板,用六堿基隨機引物合成一鏈cDNA,然后加入緩沖液、dNTPs和DNA polymerase Ⅰ合成二鏈cDNA,隨后利用AMPure XP beads純化雙鏈cDNA。純化的雙鏈cDNA再進行末端修復(fù)、加A尾并連接測序接頭,然后用AMPure XP beads進行片段大小選擇,最后進行聚合酶鏈式反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)富集得到最終的cDNA文庫。建好的測序文庫用Illumina HiSeqTM 2000進行測序。

    1.2.7 測序數(shù)據(jù)分析

    高通量測序得到的原始圖像數(shù)據(jù)文件經(jīng)CASAVA堿基識別分析轉(zhuǎn)化為原始測序序列,以FASTQ文件格式存儲。獲得原始測序序列后,通過去除帶接頭的reads,去除N(N表示無法確定堿基信息)的比例大于10%的reads和低質(zhì)量的reads,獲取clean reads。之后,使用HISAT軟件將獲取的clean reads進行基因組定位分析。

    1.2.8 差異表達及功能富集分析

    使用DESeq R軟件包(1.10.1)對NC(control)組和干擾(GR)組進行差異表達分析。將|lb Ratio|≥1和FDR≤0.05作為顯著性標準閾值。篩選差異表達基因后,通過基因本體(gene ontology,GO)功能富集分析能確定差異表達基因行使的主要生物學(xué)功能。以P≤0.05為閾值,篩選滿足此閾值的差異表達基因顯著富集的GO條目。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 FADS2基因干擾效率檢測

    熒光定量檢測FADS2基因干擾效率如圖1所示,圖1中,B表示空白對照組;NC表示陰性對照組;F1表示干擾片段1;F2表示干擾片段2;F3表示干擾片段3。

    圖1 熒光定量檢測FADS2基因干擾效率

    以B組為校準,ACTB為內(nèi)參,F(xiàn)ADS2基因的表達水平定量結(jié)果表明,與對照組相比,F(xiàn)1、F2、F3組FADS2的mRNA表達水平分別降低了60%、34%、4%。根據(jù)篩選干擾片段的條件(干擾效果>50%),F(xiàn)1片段已經(jīng)達到有效的干擾效果,因此可以用于后續(xù)的檢測試驗。

    2.2 FADS2基因干擾實驗結(jié)果

    將有效干擾片段F1轉(zhuǎn)染細胞72 h后的圖片(放大100倍)如圖2所示。

    圖2 轉(zhuǎn)染效率熒光情況

    由圖2可知,轉(zhuǎn)染效率在70%左右,細胞生長狀況良好。

    2.3 雞前脂肪細胞的RNA測序

    干擾組1(GR 1)、干擾組2(GR 2)、陰性對照組1(Control 1)和陰性對照組2(Control 2)測序序列經(jīng)過測序數(shù)據(jù)過濾后,共獲得清晰讀取數(shù)據(jù)232 535 kB,每個樣本的平均數(shù)為58 134 kB(范圍是50 794~65 430 kB),詳細信息見表3所列。

    表3 每個樣品的基本測序數(shù)據(jù)

    2.4 差異表達基因的鑒定

    使用RPKM方法,檢查了NC(control)組和干擾(GR)組之間的差異表達基因表達譜。NC(control)組和干擾(GR)組共檢測到190個差異表達基因,其中65個基因下調(diào)(左邊部分),125個基因上調(diào)(右邊部分),NC(control)組和干擾(GR)組火山圖如圖3所示。使用RNA-Seq和基因功能的綜合分析,篩選出FADS2可能的11個下游基因,見表4所列。

    圖3 差異表達基因的火山圖

    表4 FADS2調(diào)節(jié)脂肪酸代謝的11個下游基因

    2.5 差異表達基因的功能富集分析

    通過DAVID生物信息學(xué)資源進行了GO通路富集分析。結(jié)果顯示,與脂肪酸代謝過程有關(guān)的8個GO生物過程項顯著富集(P<0.05)。其中包括對脂質(zhì)的反應(yīng)(GO:0033993),膜脂質(zhì)生物合成過程(GO:0046467),細胞對脂質(zhì)的反應(yīng)(GO:0071396),甘油脂生物合成過程(GO:0045017),蛋白質(zhì)脂化(GO:0006497),甘油磷脂生物合成過程(GO:0046474),甘油脂生物合成過程(GO:0045017),脂蛋白生物合成過程(GO:0042158),詳細信息見表5所列。

    表5 差異表達基因的GO分析

    2.6 下游基因

    通過綜合分析差異表達基因、通路富集和基因功能,本文可以鑒定出STAT1、LY86、FABP5、OGFR、ACTA1、SLC5A6、NCOA7、KLF2、KLF4、ACSL5和FABP3可能是FADS2基因影響脂肪酸代謝的11個下游基因,具體信息詳見表4所列。

    3 討 論

    近年來,RNA-Seq已經(jīng)成為研究基因表達分析轉(zhuǎn)錄譜的有力工具[15]。作為轉(zhuǎn)錄組研究工具的新方法,RNA-Seq是一種高度敏感和準確的檢測手段[16]。在雞中,RNA-Seq已成功應(yīng)用于雞肉味器官的分析[17]、篩選差異表達的基因[18]、不同的脂肪酸生物合成機制[19]和胸肌剪切力[20]等研究。本研究將雞前脂肪細胞中的FADS2基因干擾沉默后,利用轉(zhuǎn)錄組測序技術(shù)篩選出FADS2影響的相關(guān)下游基因,為后續(xù)的研究奠定基礎(chǔ)。同時,本研究開展了3個重復(fù)實驗,減少了實驗誤差,避免了實驗的偶然性,保證了實驗結(jié)果的準確性。

    本研究利用RNA干擾技術(shù),通過慢病毒介導(dǎo)的表達載體干擾沉默雞前脂肪細胞中的FADS2基因[21-22]。本實驗所用慢病毒載體是以第三代載體系統(tǒng)為基礎(chǔ),通過一定改建,構(gòu)成四質(zhì)粒體系。同時,采用“自我滅活”修飾,阻止子代病毒自我復(fù)制和轉(zhuǎn)移,從而確保產(chǎn)生的慢病毒具備良好的生物安全性。與常規(guī)的原代細胞轉(zhuǎn)染結(jié)果相比,本實驗通過慢病毒包裝載體轉(zhuǎn)染目的細胞,轉(zhuǎn)染效率高達70%,極大地提高了轉(zhuǎn)染的效率。

    通過轉(zhuǎn)錄組測序檢測干擾結(jié)果,共檢測到190個差異表達基因。其中11個基因受FADS2基因的調(diào)節(jié),包括STAT1、LY86、FABP5、OGFR、ACTA1、SLC5A6、NCOA7、KLF2、KLF4、ACSL5和FABP3。其中,脂肪酸結(jié)合蛋白(FABP)是一種參與長鏈不飽和脂肪酸代謝的小分子蛋白[23],并且能夠協(xié)助動物組織細胞內(nèi)的脂肪酸轉(zhuǎn)運。

    脂肪酸結(jié)合蛋白5(FABP5)和脂肪酸結(jié)合蛋白3(FABP3)屬于脂肪酸結(jié)合蛋白家族(FABPs),是一種胞內(nèi)脂質(zhì)運載體[24],在本研究中均顯著下調(diào)。文獻[25]研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)ABP5對硬脂酸和亞油酸具有高度親和力,并通過調(diào)節(jié)細胞內(nèi)脂肪酸的轉(zhuǎn)運來調(diào)控脂質(zhì)代謝。文獻[26]將FABP5基因轉(zhuǎn)到田鼠中發(fā)現(xiàn),F(xiàn)ABP5基因在脂肪細胞中過表達會加快脂肪分解代謝。另一個脂肪酸結(jié)合蛋白家族成員FABP3基因,參與胞內(nèi)脂肪酸的短暫存儲和運輸[27]。文獻[28]研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)ABP3基因能結(jié)合脂肪酸等疏水性分子或有機陰離子。文獻[29]在研究中發(fā)現(xiàn),F(xiàn)ABP3基因遺傳信息的變化會直接或間接調(diào)控羊奶成分與脂肪酸的組成。因此,F(xiàn)ABP5、FABP3基因可能通過調(diào)節(jié)雞前脂肪細胞中脂肪酸的轉(zhuǎn)運、合成和遺傳調(diào)節(jié)脂肪酸的代謝。

    同樣ACTA1、SLC5A6、KLF2、KLF4和LY86基因的表達水平在雞前脂肪細胞中也顯著下調(diào)。骨骼肌α-肌動蛋白1(ACTA1)主要分布在骨骼肌細胞內(nèi),文獻[30]在對延邊黃牛的研究中發(fā)現(xiàn),ACTA1基因的表達水平與肌內(nèi)脂肪含量呈顯著負相關(guān),該基因可能參與延邊黃牛脂肪沉積的調(diào)控。溶質(zhì)載體家族5成員6(SLC5A6)會產(chǎn)生人鈉依賴性多種維生素轉(zhuǎn)運蛋白(hSMVT),hSMVT在多種細胞系統(tǒng)中介導(dǎo)脂肪酸攝取[31]。

    KLFs家族參與細胞的生長、增殖和分化,并在脂肪細胞的增殖分化調(diào)控中也有作用。其中,KLF2在脂肪細胞分化中具有重要的調(diào)控作用。文獻[32]研究發(fā)現(xiàn),KLF2基因在牦牛肺臟和脂肪組織中的表達水平最高,并且在背最長肌中的表達水平與肌內(nèi)脂肪含量呈正相關(guān)。文獻[33]對雞KLF2基因的表達分析中發(fā)現(xiàn),KLF2基因是雞脂肪細胞分化的負調(diào)控因子,可以通過抑制PPARγ和C/EBPα基因表達從而抑制脂肪細胞分化[34]。KLF4基因是參與脂肪代謝和脂肪組織形成的主要基因[35]。以上的諸多研究均與本研究的結(jié)果相吻合。然而,截至目前,沒有研究將LY86與脂肪酸代謝聯(lián)系起來,因此對該基因的進一步研究是有必要的。

    另一方面,STAT1、NCOA7、ACSL5和OGFR基因的表達水平在本研究中顯著上調(diào)。轉(zhuǎn)錄激活因子1(STAT1)在干擾素信號轉(zhuǎn)導(dǎo)過程中發(fā)揮著重要作用[36]。已有研究表明,STAT1的表達水平與脂肪沉積呈正相關(guān)[37]。核受體共激活物(NCOA7)參與不同核受體(如ESR1、THRB、PPARG和RARA)的共激活作用。而PPARG是目前發(fā)現(xiàn)的在脂肪組織中調(diào)控脂肪酸代謝的核心轉(zhuǎn)錄因子[38]。酰基輔酶A合成酶長鏈家族成員5(ACSL5)是長鏈脂肪酸-輔酶A連接酶家族的同工酶,該家族所有同工酶都能將游離的長鏈脂肪酸轉(zhuǎn)化為脂肪酰基輔酶A脂,從而在脂質(zhì)生物合成和脂肪酸降解中發(fā)揮關(guān)鍵作用。文獻[39]在研究中發(fā)現(xiàn),ACSL5在脂肪肝發(fā)展過程中起重要作用。相關(guān)研究表明,ACSL5主要在三酰甘油合成率高的組織中表達,表明ACSL5在脂質(zhì)合成代謝中具有重要作用[40]。這些研究為本研究結(jié)果提供了佐證。然而,OGFR基因的具體生物學(xué)功能尚不清楚,需進一步研究以了解該基因在脂肪酸代謝分子機制中的作用。

    4 結(jié) 論

    本研究通過慢病毒介導(dǎo)的表達載體對雞前脂肪細胞中的FADS2基因干擾沉默后,有效RNA進行轉(zhuǎn)錄組測序,共檢測到190個差異表達基因。通過綜合分析差異表達基因、通路分析和基因功能,確定STAT1、LY86、FABP5、OGFR、ACTA1、SLC5A6、NCOA7、KLF2、KLF4、ACSL5和FABP3這11個基因可能是FADS2基因影響的下游基因,為后期的研究提供了一定的理論依據(jù)。

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