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    棘孢木霉菌攜帶真菌病毒TaUV1的分離與鑒定

    2020-09-21 01:21:00張婷婷蔡小姚劉紅美
    農(nóng)技服務 2020年9期
    關鍵詞:霉菌基因組真菌

    張婷婷, 蔡小姚, 滕 麗,3, 周 靜, 劉紅美*

    (1.貴州醫(yī)科大學 生物與醫(yī)學工程重點實驗室, 貴州 貴陽 550025; 2.貴州醫(yī)科大學 環(huán)境污染與疾病監(jiān)控省部共建教育部重點實驗室, 貴州 貴陽 550025; 3.貴州醫(yī)科大學 基礎醫(yī)學院, 貴州 貴陽 550025)

    真菌病毒是指可以侵染絲狀真菌、酵母和卵菌,并能在其中復制的病毒。在植物病原真菌中存在著大量的真菌病毒[1-3]。大多數(shù)情況下,真菌病毒侵染寄主真菌后不會使其出現(xiàn)明顯的外部癥狀,僅有少數(shù)真菌病毒侵染寄主后會對其造成影響[4]。此外,研究表明,大多數(shù)真菌病毒是雙鏈RNA(dsRNA)病毒。目前,具有dsRNA基因組的真菌病毒在分類學上被分為6個科:呼腸孤病毒科(Reoviridae)、全病毒科(Totiviridae)、雙分病毒科(Paritiviridae)、產(chǎn)黃青霉病毒科(Chrysoviridae)、四分體病毒科(Quadriviridae)、巨型雙節(jié)段病毒科(Megabirnaviridae),以及最近提議的Botybirnaviridae科[5]。但仍存在許多未被分類的真菌病毒。近幾年已經(jīng)報道了諸多未分類的真菌病毒[6-9]。

    木霉菌(Trichodermaspp.)是一種自由生活的真菌,常見于土壤和根系生態(tài)系統(tǒng)中。其生存能力較強、分布較廣且能拮抗植物病原真菌,在農(nóng)業(yè)和工業(yè)生產(chǎn)中占有重要的地位。木霉菌具有無污染、對人、動物和環(huán)境無毒性、生長速度快、孢子產(chǎn)量高、容易生產(chǎn)等優(yōu)點,世界各國已將木霉菌應用于農(nóng)業(yè)生產(chǎn)、加工中,成為生物防治、生物肥料和土壤調節(jié)劑[10]。中國是農(nóng)業(yè)大國,大型農(nóng)作物對生物制劑的需求量很大。因此,木霉產(chǎn)業(yè)的發(fā)展產(chǎn)生了較大的經(jīng)濟效益[11]。木霉菌種(如曲霉菌、哈茨木霉和阿曲韋德菌)是許多土壤傳播植物病原體的有效生物防治劑,部分菌種能增強植物生長的能力[12-14]。棘孢木霉(Trichodermaasperellum)是2005年中國記錄的木霉屬物種[15],但其開發(fā)利用仍處于初步階段[16-17]。在木霉屬物種中,先前已經(jīng)報道了dsRNA真菌病毒的存在[6,18]。但目前尚無完全測序的真菌病毒感染棘孢木霉菌的報道。在此基礎上,筆者側重于獲取棘孢木霉菌株中攜帶真菌病毒的全基因組序列,并且對其進行基因組解析,從而明確病毒的分類學地位,并將此病毒命名為TrichodermaasperellumUnassigned Virus 1(TaUV1),以進一步了解真菌病毒的致病性、進化、生命周期以及病毒與寄主真菌之間互作等內容。而且,未分類真菌病毒的發(fā)現(xiàn)和新的真菌病毒能豐富病毒分類學,有利于研究真菌病毒的分類和進化,以及促進病毒學的發(fā)展。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 試驗材料 棘孢木霉菌株從貴州省興仁縣交樂村的高砷煤礦土壤中分離得到,長期保存于-80℃。

    1.1.2 主要試劑及儀器 DNase I酶、S1 Nuclease酶、M-MLV反轉錄酶、Klenow酶、pMD18-T載體、T4RNA連接酶均購自寶生物工程(大連)有限公司;氨芐青霉素(Ampicillin,Amp)購自上海阿拉丁生化科技股份有限公司;DNA膠回收試劑盒購自北京莊盟國際生物基因科技有限公司;2×PCR mix購自北京康潤誠業(yè)生物科技有限公司;DH5α感受態(tài)細胞購自北京全式金生物技術(TransGen Biotech)有限公司;恒溫培養(yǎng)箱購自上海博迅醫(yī)療生物儀器股份有限公司;電泳儀購自北京六一公司;凝膠成像儀購自北京君意東方電泳設備有限公司;恒溫振蕩器購自太倉市實驗設備廠;PCR儀購自美國ABI公司。

    1.1.3 培養(yǎng)基 PDA培養(yǎng)基:土豆200 g,切片,用去離子水1.4 L煮沸,過濾,量取1 L浸出液,加入葡萄糖20 g,瓊脂15 g,121℃恒溫高壓濕氣滅菌20 min。LB培養(yǎng)基:NaCl 10 g、蛋白胨10 g、酵母粉5 g、瓊脂15 g,加蒸餾水定容至1 L,121℃恒溫高壓濕氣滅菌20 min。

    1.1.4 引物設計 試驗引物由武漢天一輝遠公司合成,引物及序列見表1。

    1.2 菌株的分離

    稱取高砷煤礦土壤1 g放入50 mL錐形瓶中,加入適量的去離子水后放入搖床搖勻,取出靜置5 min,吸取100 μL上清液稀釋5個梯度,每個梯度吸取100 μL液體分別涂布在PDA培養(yǎng)基上,恒溫培養(yǎng)箱中28℃培養(yǎng),待有菌落長出,挑取不同的單菌落接在新的PDA培養(yǎng)基上繼續(xù)培養(yǎng),從而分離得到單個菌株。

    1.3 病毒RNA的提取與純化

    將目的菌株接種至加有玻璃紙的PDA平板中擴大培養(yǎng),將菌絲體放入研缽中,用液氮將其研磨成粉末狀,取約0.5 g裝入2.0 mL無菌離心管中。將0.6 mL 2×GPS、0.6 mL苯酚、0.6 mL氯仿∶異戊醇(體積比24∶1)和138 μL 10% SDS依次加入樣品中,室溫下充分震蕩,12 000 r/min離心10 min。將0.04 g無離子纖維素粉末(CF-11)稱入2.0 mL無菌離心管中,取0.6 mL上清液緩慢移入管中,并且每0.6 mL上清液加114 μL無水乙醇,混勻后放置4℃冰箱中過夜。然后離心機12 000 r/min離心5 min后棄上清,倒扣濾紙上吸干殘液,移液器加入0.6 mL清洗緩沖液,混勻后靜置1 min;重復洗脫3次,加入640 μL 1× STE,混合搖勻,12 000 r/min離心8 min并吸取0.6 mL上清至1.5 mL的無菌離心管,加入60 μL的3 mol/L醋酸鈉(pH 5.2),0.6 mL的異丙醇(或1.2 mL無水乙醇),混勻,-20℃下預沉淀2 h,4℃離心機12 000 r/min離心30 min,去除上清液,沉淀用500 μL 75%酒精進行洗脫,4℃下12 000 r/min離心5 min,瀝干上清液,并在37℃恒溫箱中干燥待其酒精揮發(fā)干凈,用20 μL DEPC-H2O溶解沉淀,即為粗提的RNA樣品。用DNaseI酶和S1核酸酶處理樣品,去除樣品中的DNA和單鏈RNA(single-stranded RNA,ssRNA)污染。樣品在1%瓊脂糖凝膠中電泳,用0.1 μg/mL溴化乙錠染色,紫外下觀察RoRV1的條帶特征。

    1.4 病毒RNA基因組序列的獲取

    將純化的dsRNA樣品作為模板,采用隨機引物擴增法獲得RoRV1的中間序列[19],即將純化的dsRNA經(jīng)反轉錄后用隨機引物RACE-3擴增得到大量隨機片段,在瓊脂糖凝膠電泳上呈彌散條帶,切下750~1 000 bp隨機片段進行膠回收,過夜連接pMD18-T載體并轉化到DH5α感受態(tài)細胞中,Amp篩選陽性克隆,挑選單克隆進行PCR鑒定,結果在1%瓊脂糖凝膠上呈大小不一的單一片段,挑取較大的隨機片段送公司進行測序。病毒末端克隆的方法參考POTGIETER等[20]采用的方法,首先在dsRNA的兩末端加上一段已知序列的接頭片段,然后將加上接頭的dsRNA進行反轉錄合成cDNA第1條鏈,最后用與該序列互補的一段寡核苷酸作為引物,另一引物根據(jù)已測定序列設計,進行逆轉錄-聚合酶鏈反應(Reverse Transcription-Polymerase Chain Reaction,RT-PCR)獲取dsRNA末端的序列。將擴增的cDNA產(chǎn)物與pMD18-T載體進行連接,并熱激轉化大腸桿菌DH5α,鑒定陽性克隆,進行測序分析。

    1.5 序列拼接及系統(tǒng)進化樹建立

    序列拼接和開放閱讀框(ORF)的預測使用DNAMAN 5.0軟件;序列同源性搜索使用NCBI網(wǎng)站的在線BLAST(https://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi);蛋白質保守結構域鑒定使用 NCBI網(wǎng)站的保守結構域數(shù)據(jù)庫搜索程序(http://www.ncbi.nlm. nih.gov/Structure/cdd/wrpsb.cgi?);氨基酸多序列比對使用 MAFFT軟件;系統(tǒng)進化樹的構建使用最大似然法(Maximum Likelihood,ML)。ML樹的計算使用 MEGA 5.0軟件,采用默認參數(shù)設置,并以自展法(bootstraP)對 ML樹進行評估,重復抽樣次數(shù)為1 000。系統(tǒng)進化樹分析中所用的病毒如表2所示。選擇的25種RNA病毒包括13種Totiviridae科病毒,3種Chrysoviridae科病毒,以及通過BLAST搜索的9種未分類的大型單分子樣雙鏈RNA病毒。

    2 結果與分析

    2.1 菌株的分離

    如圖1所示,棘孢木霉菌在培養(yǎng)基上培養(yǎng)3 d后會形成同心環(huán)狀的菌落,且會產(chǎn)生綠色稠密的分生孢子。接近中央的分生孢子呈暗綠色,靠近培養(yǎng)皿邊緣的分生孢子由于剛剛形成所以顏色較淺,氣生菌絲稀疏,培養(yǎng)基上無色素滲透。

    2.2 菌株中真菌病毒的分離與純化

    經(jīng)DNase I酶和S1核酸酶處理,菌株攜帶的真菌病毒為dsRNA真菌病毒。通過1%瓊脂糖凝膠電泳檢測顯示,在10 kb附近可見到1條單一的明顯條帶(圖2)。該病毒命名為TrichodermaasperellumUnassignedVirus 1(TaUV1)。

    2.3 TaUV1序列

    由圖3可見,TaUV1全長9 838個堿基,G+C含量為47.8%。通過隨機引物擴增法得到TaUV1的隨機片段(圖3中1~19),經(jīng)序列拼接發(fā)現(xiàn),并不能完全拼接出1條完整的全基因序列。隨后,根據(jù)已獲取的基因組序列設計特異性的搭橋引物A~D和末端引物a~d,通過PCR克隆出未獲得的基因組序列,最后通過拼接得到1條完整的TaUV1基因組序列。

    2.4 TaUV1基因組序列

    如圖4所示,從棘孢木霉菌中提取的TrichodermaasperellumUnassignedVirus 1(TaUV1)病毒,已獲取GenBank數(shù)據(jù)庫登錄號為MG897472?;蚪M序列分析表明,TaUV1在其基因組正鏈上包含2個不連續(xù)的大的開放閱讀框(ORF),ORF1和ORF2,其具有1個長1 176 bp的 5′-非翻譯區(qū)(UTR)和1個相對較短的長52 bp的3′-非翻譯區(qū)(UTR)。ORF1位于1 177~5 686 bp,總長4 509 bp,編碼的蛋白有1 502個氨基酸,分子量大小是165.2 kDa。ORF2不與ORF1重疊,位于5 802~9 786 bp,總長3 984 bp,編碼的蛋白有1 327個氨基酸,分子量為149.5 kDa。ORF2與ORF1間隔113 bp,在ORF1的終止密碼子TAA的5 684~5 686 bp發(fā)現(xiàn)了1個潛在的移碼序列七聚體(AAAAAAT,5 677~5 683 bp),在此處發(fā)生了程序性-1的核糖體移碼機制,使2個ORFS被通讀,編碼1個融合蛋白。使用RNA Structure軟件對病毒TaUV1的-1核糖體移碼序列(AAAAAAT)后的113 bp序列進行RNA二級結構的預測分析顯示,TaUV1的-1核糖體移碼序列(AAAAAAT)后的113 bp序列處有復雜的莖環(huán)結構。表明,-1核糖體移碼序列(AAAAAAT)后的113 bp序列形成的莖環(huán)結構,協(xié)助了-1核糖體移碼機制的發(fā)生,是該移碼機制的必須元件之一。

    2.5 TaUV1與相關病毒的結構

    由表3可見,TaUV1與其他4個病毒的基因組大小均為8.5~10 kb;ORF1編碼的蛋白是結構蛋白(structure protein;SP)或假定蛋白(hypothetical protein;HP),ORF2編碼的均為RNA依賴的RNA聚合酶(RNA-dependent RNA polymerases;RdRp);均有S7結構域(S7 domain);均有-1核糖體移碼現(xiàn)象,同時,也都含有假節(jié)或者莖環(huán)結構(Pseudoknot or stem-loop structure)。雖在真菌病毒中發(fā)現(xiàn)了各種七聚體移碼序列,但僅在TaUV1中發(fā)現(xiàn)了相同的AAAAAAT七聚體移碼序列。

    表3 TaUV1與相關病毒的比較

    2.6 TaUV1與相關病毒的RdRp區(qū)域

    如圖5所示,在TaUV1和7個病毒的RdRp區(qū)域發(fā)現(xiàn)了8個RdRp的保守結構域(conserved motifs Ⅰ-Ⅷ)和1個S7結構域。

    2.7 系統(tǒng)進化樹構建

    如圖6所示,該系統(tǒng)進化樹顯示TaUV1與未分類的FvV1、FvV2、TaMV1、MpRV2、FpV2、FpV3、FgV3、SsRV-L和BcRV1聚成一簇,與其他病毒相距較遠,這簇病毒為新的未分類病毒科。因此,從TaUV1的RNA依賴的RNA聚合酶(RdRp)系統(tǒng)進化的角度證實TaUV1是未分類病毒科的新成員。

    3 結論與討論

    通過棘孢木霉菌株攜帶的真菌病毒TaUV1獲取了TaUV1的全基因組信息,從TaUV1基因組結構分析得知,TaUV1具有1條未分段的9 838 bp病毒條帶。其具有2個大的不連續(xù)的閱讀框(ORF),即ORF1和ORF2。ORF1和ORF2分別編碼假定蛋白(HP)和RNA依賴的RNA聚合酶(RdRp)。2個閱讀框之間間隔113 bp,存在1個由七聚體移碼序列(AAAAAAT)引起的-1核糖體移碼現(xiàn)象,該移碼現(xiàn)象的存在將2個大的不連續(xù)閱讀框融合成1個大的閱讀框,提高了病毒的翻譯效率。未分段的病毒科中最具有代表性的是Totiviridae科病毒。但Totiviridae科病毒的基因組大小為4.6~6.5 kb。因此,TaUV1并不屬于Totiviridae科。

    對棘孢木霉菌株JLM45-3所攜帶的真菌病毒TaUV1構建系統(tǒng)進化樹分析得知,TaUV1與未分類的FvV1、FvV2、TaMV1、MpRV2、FpV2、FpV3、FgV3、SsRV-L和BcRV1聚成一簇,屬于Unassigned Virus科病毒。Unassigned Virus科病毒的特點:1)具有大的單一未分段病毒基因組;2)編碼2個大的閱讀框;3)2個閱讀框之間存在-1核糖體移碼現(xiàn)象,將2個大的閱讀框融合成1個閱讀框。

    研究明確了TaUV1的基因組結構和分類地位,下一步計劃獲取棘孢木霉菌株的脫毒菌株(TaUV1-),與未脫毒的菌株(TaUV1+)同時培養(yǎng),檢測兩者在生長速度、表型、次級代謝產(chǎn)物的異同,初步了解TaUV1的存在是否對其寄主有影響,以及對TaUV1與棘孢木霉菌株的互作關系進行初步研究。

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