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    米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶酶解蝦頭工藝探究

    2020-08-29 04:20:56王振猛江曉孫建安毛相朝

    王振猛,江曉,孫建安*,毛相朝

    (1. 中國海洋大學食品科學與工程學院, 山東 青島 266003; 2. 青島濱海學院醫(yī)學院, 山東 青島 266500)

    隨著中國經(jīng)濟的進步,捕撈業(yè)和水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)不斷發(fā)展,蝦類產(chǎn)品的市場十分龐大,市場需求量呈逐漸上升趨勢。中國蝦類產(chǎn)品種類主要是蝦仁或者冷凍蝦,而在蝦類產(chǎn)品的加工過程中會產(chǎn)生大量蝦頭、蝦殼等副產(chǎn)物,幾乎占到原材料質(zhì)量的45%~60%[1]。這些副產(chǎn)物富含蛋白質(zhì)、甲殼素和蝦青素等營養(yǎng)成分[2],并富含不飽和脂肪酸、類胡蘿卜素以及人體必需微量元素等營養(yǎng)物質(zhì)[3]。

    目前,這些副產(chǎn)物大多被直接丟棄,不僅浪費了寶貴的資源,還易造成環(huán)境污染。由于蝦頭營養(yǎng)價值十分豐富,目前許多國家正在著手開發(fā)這一優(yōu)良的資源,如將蝦副產(chǎn)物通過酶解發(fā)酵等方法制成蝦調(diào)味品[4],或從蝦頭中提取甲殼素、蝦青素等具有生物活性的物質(zhì),也可將之用于生產(chǎn)水產(chǎn)飼料和生物肥料等[5]。因此,將這些蝦副產(chǎn)物轉(zhuǎn)化為有用的產(chǎn)品對于對蝦產(chǎn)業(yè)的可持續(xù)發(fā)展至關(guān)重要。目前對蝦頭的加工利用多采用化學酸堿法,但環(huán)境危害大,不符合綠色生產(chǎn)要求[6]。另一種加工方式是采用市售蛋白酶酶解蝦頭,但是酶對蛋白的降解有選擇性,不同市售酶對不同蝦頭的水解程度不同,并且價格昂貴,不利于大規(guī)模加工利用[7]。

    米曲霉(Aspergillusoryzae)是目前微生物發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶最重要的菌株,其基因組中有135個胞外蛋白酶基因[8]。米曲霉的胞外蛋白酶系非常復雜[9],主要通過頂端分泌的方式分泌至胞外[10-11]。米曲霉發(fā)酵過程中不產(chǎn)生毒素,是分解各類蛋白用于飼料加工、生物肥料生產(chǎn)及食品加工等領(lǐng)域的最佳選擇。米曲霉產(chǎn)生的蛋白酶包括酸性蛋白酶、中性蛋白酶和堿性蛋白酶,由于在發(fā)酵期間不同蛋白酶之間交替發(fā)生作用,能夠賦予產(chǎn)品獨特的風味,因此,米曲霉目前在食品行業(yè)主要用于發(fā)酵分解大豆蛋白釀造醬油[12],賦予醬油獨特風味[13]。Su等[14]研究發(fā)現(xiàn),米曲霉蛋白酶粗提物水解脫脂大豆的能力優(yōu)于堿性蛋白酶、復合蛋白酶和木瓜蛋白酶等商業(yè)蛋白酶。米曲霉產(chǎn)酶活力的高低影響到原料利用率及產(chǎn)品品質(zhì),提高米曲霉產(chǎn)蛋白酶活力不僅可以提高原料利用率,而且可減少釀造工業(yè)的污染,對于實際生產(chǎn)具有十分重要的作用[15]。

    為實現(xiàn)阿根廷紅蝦(Pleoticusmuelleri)蝦頭的綠色高值化利用,本研究利用米曲霉固態(tài)發(fā)酵所產(chǎn)的蛋白酶酶解蝦頭,脫掉蛋白質(zhì),以制備蛋白液與甲殼素。此工藝避免了環(huán)境污染,降低了生產(chǎn)成本,且米曲霉安全性高,酶解液可用于生物飼料的開發(fā)利用,從而實現(xiàn)蝦頭的全面綜合利用。

    1 材料與方法

    1.1 原料與試劑

    馬鈴薯、麩皮和豆粕,購于青島市市南區(qū)農(nóng)貿(mào)市場。阿根廷紅蝦蝦頭購于青島市盛隆偉業(yè)科技有限公司,儲存在-20 ℃條件下。米曲霉由青島燈塔釀造有限公司提供,保藏在-80 ℃條件下20%甘油中,該菌在PDA培養(yǎng)基上于30 ℃下活化2 d,用無菌水將孢子刮下,得到孢子懸浮液。

    PDA培養(yǎng)基:稱取去皮馬鈴薯200 g,切成小塊,加1 000 mL蒸餾水煮沸30 min,用雙層紗布濾成清液。加入20 g葡萄糖至完全溶解,然后加蒸餾水至1 L, 自然pH(約7.5),121 ℃滅菌20 min。固體培養(yǎng)基加入瓊脂粉20 g。

    1.2 儀器與設(shè)備

    主要包括:勻漿機(九陽股份有限公司,JYL-C022E);BCM-1000型超凈臺(蘇州凈化設(shè)備有限公司);SPX生化培養(yǎng)箱(新江南儀器有限公司);水浴鍋(常州智博瑞儀儀器公司,HH-3A);pH計(上海精科儀器有限公司,PHS-2F);恒溫水浴搖床(常州萬順儀器公司,SHZ-88)。

    1.3 指標測定

    蛋白酶活力的測定采用福林酚法,具體步驟參照GB/T 23527—2009。將一個酶活力單位(U)定義為:在特定的條件下,每分鐘產(chǎn)生1 μg酪氨酸所需要的酶量。氨基態(tài)氮的測定采用甲醛滴定法[16]??扇苄缘鞍椎臏y定采用雙縮脲法[17]:取3.0 mL樣品溶液置于一試管中,先加入雙縮脲A試劑1.0 mL,再加入雙縮脲B試劑1.0 mL,于漩渦混合儀上混合均勻,靜置10 min,4 000 r/min離心10 min,取上清液于540 nm下測定OD值,對照標準曲線求得樣品溶液中的可溶性蛋白濃度(mg/mL)。

    1.4 米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶工藝條件的優(yōu)化

    麩皮和豆粕為常見的米曲霉培養(yǎng)基構(gòu)成成分,能夠滿足米曲霉生長繁殖所需的碳源和氮源。麩皮和豆粕的不同配比對米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶有較大的影響。將不同配比的含水量均為60%的培養(yǎng)基(1號:麩皮10 g;2號:麩皮8 g+豆粕2 g;3號:麩皮6 g+豆粕4 g;4號:麩皮5 g+豆粕5 g;5號:麩皮4 g+豆粕6 g;6號:麩皮2 g+豆粕8 g;7號:豆粕10 g)滅菌后攪拌均勻,以10%的接種量接入米曲霉孢子懸浮液(孢子含量107個/mL)。30 ℃靜置培養(yǎng)3 d,之后向培養(yǎng)基中加入100 mL水,30 ℃、200 r/min條件下振蕩3 h,浸提蛋白酶,取上清液離心測定蛋白酶酶活??疾炫囵B(yǎng)基組成對米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶活力的影響。

    在最佳培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上,培養(yǎng)基含水量分別調(diào)整為20%、30%、40%、50%、60%和70%,其他條件不變,考察培養(yǎng)基含水量對米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的影響。在最佳培養(yǎng)基和最佳含水量的基礎(chǔ)上,培養(yǎng)溫度分別調(diào)整為25、30、35、40和45 ℃,考察培養(yǎng)溫度對米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的影響。在已優(yōu)化的工藝條件基礎(chǔ)上,分別以1%、2%、4%、6%、8%和10%的接種量接入米曲霉孢子懸浮液,考察接種量對米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的影響。在上述最佳條件基礎(chǔ)上,培養(yǎng)時間調(diào)整為24、36、48、60、72、84和96 h,浸提蛋白酶,取上清液離心測定蛋白酶活,考察培養(yǎng)時間對米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的影響。在上述最佳條件下培養(yǎng)之后,浸提時間分別為1、2、3、4、5和6 h,考察浸提時間對米曲霉固態(tài)發(fā)酵所產(chǎn)蛋白酶浸出效果的影響。

    1.5 響應面優(yōu)化實驗

    根據(jù)單因素實驗結(jié)果,發(fā)現(xiàn)培養(yǎng)溫度、含水量和培養(yǎng)時間對米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶具有顯著影響,因此采用 Design-Expert 8.0.6.1 軟件,按照 Box-Benken設(shè)計原理,選取培養(yǎng)溫度、含水量和培養(yǎng)時間三因素,以蛋白酶活力作為響應函數(shù),進行三因素三水平的響應面實驗,通過響應曲面分析得出自變量與響應函數(shù)之間的統(tǒng)計模型,確定米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的最佳工藝條件,實驗因素水平編碼如表1所示。

    表1 因素水平表Tab.1 Factors and levels in Box-Behnken

    1.6 米曲霉所產(chǎn)蛋白酶酶解蝦頭工藝條件的優(yōu)化

    最佳酶解溫度的確定:稱取10 g勻漿后的蝦頭,按料液比1∶4加入米曲霉固態(tài)發(fā)酵所產(chǎn)的蛋白酶液混勻,自然pH下,酶解溫度分別設(shè)置為30、35、40、45和50 ℃,酶解5 h,測定酶解液中氨基態(tài)氮和可溶性蛋白的含量。

    最佳酶解pH的確定:在最佳溫度的基礎(chǔ)上,使用HCl和NaOH調(diào)節(jié)體系pH為6.0、6.5、7.0、7.5(自然pH)和8.0,酶解5 h,測定酶解液中氨基態(tài)氮和可溶性蛋白的含量。

    最佳酶解時間的確定:在最佳pH、最佳溫度下分別酶解2、3、4、5、6和7 h,測定酶解液中氨基態(tài)氮和可溶性蛋白的含量。

    1.7 蝦頭酶解液的風味成分分析

    1.7.1 揮發(fā)性成分分析

    目前,固相微萃取技術(shù)是應用最為廣泛的萃取揮發(fā)性物質(zhì)的方法,其主要是利用萃取頭上的萃取纖維對揮發(fā)性物質(zhì)進行吸附。實驗選用50/30 μm Car/PDMS/DVB萃取纖維頭對樣品進行吸附提取,具體操作如下:準確移取10 mL樣品裝入20 mL頂空萃取瓶中,放入轉(zhuǎn)子,同時加入1.5 g NaCl,蓋上瓶蓋,輕輕混勻,設(shè)置磁力攪拌轉(zhuǎn)數(shù)150 r/min,60 ℃水浴鍋中保持10 min,將固相微萃取纖維插入瓶中,調(diào)節(jié)萃取纖維與液面距離,頂空吸附30 min。吸附結(jié)束后,將萃取纖維迅速轉(zhuǎn)移到進樣口,進行氣相色譜-質(zhì)譜分析,將檢測到的揮發(fā)性物質(zhì)與NIST02.LIB數(shù)據(jù)庫比對,當且僅當匹配度大于80%時才予以采納。

    1.7.2 電子鼻分析

    電子鼻(E-nose)俗稱機器嗅覺,通過模擬動物和人的嗅覺功能,實現(xiàn)對揮發(fā)性物質(zhì)的檢測與鑒定。將25 mL樣品溶液裝入50 mL樣品瓶中,密封放置于25 ℃水浴鍋中保持30 min。電子鼻儀器使用前要先自清洗,當響應信號恢復到基線時,方可進行樣品測定。將樣品收集針頭插入樣品瓶中,開始收集數(shù)據(jù),電腦記錄每秒鐘相對電導率比值變化,最后生成相對電導率比值曲線。設(shè)定測試參數(shù):自清洗時間200 s,基線收集10 s,樣品收集時間100 s,載氣流速300 mL/min。當電導率比值信號穩(wěn)定時,采用Winmuster軟件對數(shù)據(jù)進行采集與處理。電子鼻傳感器性能描述見表2。

    表2 電子鼻傳感器性能描述Tab.2 Sensor performance description in E-nose

    1.7.3 電子舌分析

    電子舌(E-tongue)俗稱機器味覺,本實驗選取TS-5000Z味覺分析系統(tǒng)對酶解液進行分析,該系統(tǒng)不僅可以分析樣品的鮮、咸、酸、苦、澀和甜味,還可以客觀地分析苦、澀和鮮的回味,具有很高的靈敏度。具體操作如下:清洗液中清洗90 s,參比液清洗120 s,接著用第二參比液,繼續(xù)清洗,時間仍為120 s,傳感器歸零30 s,平衡后,取80 mL樣品開始進行測定。首先進行前味測定,即將傳感器放入樣品中,測試時間為30 s;清洗傳感器3 s,接著進行回味測定,即將傳感器再次放入?yún)⒈纫褐羞M行測試,時間仍為30 s。測試結(jié)束后,及時用潔凈溶液清洗傳感器。當電導率比值信號穩(wěn)定時,采用TS-5000Z軟件對數(shù)據(jù)進行采集與處理。

    1.8 統(tǒng)計分析

    每個實驗重復3次。試驗數(shù)據(jù)采用Origin進行單因素實驗結(jié)果分析,采用Design-Expert 8.0.6.1進行響應面試驗數(shù)據(jù)分析,采用SPSS 19.0進行數(shù)據(jù)的分析處理,組間差異顯著性分析采用ANOVA方差分析,P<0.05為有顯著差異。

    2結(jié)果與分析

    2.1米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的單因素優(yōu)化試驗

    2.1.1 不同固態(tài)培養(yǎng)基對米曲霉產(chǎn)蛋白酶的影響

    由圖1可知,隨著固態(tài)培養(yǎng)基中豆粕含量的不斷增加,米曲霉所產(chǎn)蛋白酶的酶活逐漸下降。麩皮和豆粕均是米曲霉生長過程中所需的碳源、氮源,麩皮質(zhì)地疏松、透氣性良好,而豆粕質(zhì)地緊密,會影響培養(yǎng)基的透氣性,不利于微生物的生長繁殖。當培養(yǎng)基中只含有麩皮時,不僅能夠滿足該米曲霉生長繁殖分泌蛋白酶的基本營養(yǎng)需求,且能保證培養(yǎng)基良好的透氣性,因此確定米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的最佳培養(yǎng)基為麩皮。

    2.1.2 培養(yǎng)基含水量對米曲霉產(chǎn)蛋白酶的影響

    水分是微生物發(fā)酵過程中生長及代謝的必要成分,適宜的初始含水量,一方面使發(fā)酵基質(zhì)具有一定的水分活度,而水分活度決定了微生物的萌發(fā)時間、生長速率及死亡率,另一方面使得發(fā)酵基質(zhì)的疏松度適宜,顆粒間存在一定間隙,對菌體獲取營養(yǎng)物質(zhì)及氧的傳遞起到重要作用。含水量過低不利于米曲霉的生長繁殖及蛋白酶的分泌,含水量過高又會導致整個固態(tài)培養(yǎng)體系透氣性差,供氧不足。由圖2可知,隨著培養(yǎng)基含水量的增加,米曲霉所產(chǎn)蛋白酶酶活呈現(xiàn)先升高后下降的趨勢,在含水量為60%時,蛋白酶活力達到最大值。因此確定米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的培養(yǎng)基最佳含水量為60%。

    2.1.3 培養(yǎng)溫度對米曲霉產(chǎn)蛋白酶的影響

    溫度作為影響固態(tài)發(fā)酵的關(guān)鍵因素,首先會影響米曲霉的生長和繁殖,其次由于固態(tài)培養(yǎng)過程中,基質(zhì)的傳熱性差,初始溫度過高,不利于發(fā)酵熱的散出,進而使發(fā)酵反應無法進行,會嚴重影響蛋白酶的分泌,因此溫度對固態(tài)發(fā)酵的影響比較大。米曲霉在40 ℃和45 ℃時,幾乎沒有生長跡象,37 ℃米曲霉能夠生長,但白色菌絲體較多,綠色孢子生長較少。由圖3可知,培養(yǎng)溫度在30 ℃時,米曲霉所產(chǎn)蛋白酶活力最高,因此確定米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的培養(yǎng)基最佳培養(yǎng)溫度為30 ℃。

    2.1.4 接種量對米曲霉產(chǎn)蛋白酶的影響

    由圖4可知,隨著米曲霉接種量由1%增加至2%,米曲霉所產(chǎn)蛋白酶活力有顯著上升(P<0.05),之后隨接種量的進一步增加,所產(chǎn)蛋白酶活力無明顯差異(P>0.05)。推測原因,10 g麩皮的固態(tài)培養(yǎng)基僅僅能夠滿足2%的接種量時米曲霉生長繁殖所需的營養(yǎng)成分,當米曲霉孢子總數(shù)達到一定量時,10 g麩皮已經(jīng)不能滿足更多米曲霉生長繁殖所需的營養(yǎng)成分,因此隨著接種量的增大,米曲霉所產(chǎn)蛋白酶活力不會繼續(xù)增高。最終確定最佳接種量為2%。

    2.1.5 培養(yǎng)時間對米曲霉產(chǎn)蛋白酶的影響

    由圖5可知,隨著培養(yǎng)時間的延長,米曲霉所產(chǎn)蛋白酶活力不斷升高,在36~48 h呈現(xiàn)快速增長的趨勢;48 ~84 h呈現(xiàn)緩慢增長的趨勢;84 h時,米曲霉所產(chǎn)蛋白酶活力最高;超過84 h,米曲霉所產(chǎn)蛋白酶活力呈現(xiàn)下降趨勢。觀察米曲霉的生長狀況,在24 h,開始生長出白色菌絲體,在36 h,開始生長出綠色孢子,因此初步確定,在36 h后,開始大量分泌蛋白酶,84 h蛋白酶分泌量達到最多。

    2.1.6 浸提時間對米曲霉所產(chǎn)蛋白酶浸出效果的影響

    加水振蕩是為了使米曲霉所產(chǎn)的蛋白酶更好的溶出,合適的浸提時間可使蛋白酶更好地完全溶出,并能節(jié)約時間成本。由圖6可知,隨著振蕩時間的延長,蛋白酶逐漸溶出,在1 ~3 h內(nèi)蛋白酶快速溶出,在3~4 h仍有少量蛋白酶繼續(xù)溶出,4 h后蛋白酶活力無明顯差異(P>0.05),說明蛋白酶基本全部溶出,且3 h左右蛋白酶溶出效果浮動較大,為保證蛋白酶能夠完全溶出,為后續(xù)試驗奠定基礎(chǔ),保證后續(xù)酶解試驗效果,因此確定4 h為合適的浸提時間。

    2.2 響應面結(jié)果與分析

    在培養(yǎng)基組成為麩皮、接種量為2%、浸提時間為4 h的基礎(chǔ)上,根據(jù)模型的中心組合試驗設(shè)計原理,挑選出培養(yǎng)溫度、含水量和培養(yǎng)時間3個對米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶效果影響較大的因素,以蛋白酶活力為指標進行試驗設(shè)計,試驗結(jié)果如表3。

    表3 響應面試驗設(shè)計與結(jié)果Tab.3 Design and result of response surface in Box-Behnken

    對表2進行多元化的回歸方程分析,得到二次響應面回歸方程為:Y=10 762.30-2 352.46A+391.39B-137.30C-114.75AB+16.39AC+28.69BC-3 002.05A2-3 243.85B2-1 276.64C2。

    該模型的方差分析見表4。由表4可知,該模型的F值為196.4,P<0.000 1,表示該二次回歸模型是極顯著的;擬合不足P值為0.053 2,說明該模型失擬顯著;相關(guān)系數(shù)R2=0.996 1,說明二次回歸模型預測性良好,能夠較好地反映響應值的變化。該模型與實際實驗擬合程度較好,預測值和實際值之間具有較高的相關(guān)性,可用于米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的理論指導依據(jù)。信噪比Adeq Precision=40.587>4,表示模型可行。培養(yǎng)溫度、含水量、培養(yǎng)溫度的二次項、含水量的二次項及培養(yǎng)時間的二次項對米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的影響達到極顯著水平(P<0.01)。

    表4 回歸系數(shù)模型及方差分析表Tab.4 Coefficient of regression model and variance analysis

    各因素對米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的2D等高線圖和3D響應面圖如圖7所示。三維曲面圖是各因素相互作用的直觀反映,因素影響越大,則曲面圖的曲線越陡峭。從圖7中可以發(fā)現(xiàn),當培養(yǎng)溫度或培養(yǎng)時間一定時,隨著含水量的增加,蛋白酶活呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(圖7b和圖7f);當含水量或培養(yǎng)時間一定時,隨著培養(yǎng)溫度的增加,蛋白酶活呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢,下降坡度較大(圖7b和圖7d);當培養(yǎng)溫度或含水量一定時,隨著培養(yǎng)時間的增長,蛋白酶活變化趨勢不大(圖7d和圖7f)。這與單因素試驗結(jié)果一致,也進一步說明了培養(yǎng)時間的影響不顯著,3個因素的兩兩交互作用不顯著,與表4結(jié)果一致。

    通過Design-Expert 8.0.6.1 軟件分析,得到米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的的最佳工藝參數(shù):培養(yǎng)溫度為28.05 ℃,含水量為60.7%,培養(yǎng)時間為83.28 h,此條件下,蛋白酶活力理論預測值為11 241.8 U/100 mL。驗證試驗過程中采取培養(yǎng)溫度為28 ℃,含水量為60.7%,培養(yǎng)時間為83.3 h,測得蛋白酶酶活實際值為11 139.35 U/100 mL。劉志偉等[18]研究發(fā)現(xiàn),米曲霉在固態(tài)培養(yǎng)基為麩皮、含水量為50%、30 ℃培養(yǎng)72 h所產(chǎn)蛋白酶酶活最高。袁艷玲等[19]研究發(fā)現(xiàn),米曲霉在固態(tài)培養(yǎng)基麩皮和豆粕的質(zhì)量比為4∶1、含水量為55%、30 ℃培養(yǎng)84 h條件下所產(chǎn)蛋白酶酶活最高。本實驗結(jié)果與劉志偉等的研究結(jié)果非常相似,均采用了麩皮做培養(yǎng)基,培養(yǎng)溫度和培養(yǎng)時間基本一致,但本研究中的培養(yǎng)基含水量相對較高,推測原因可能為不同菌種之間存在一定的差異導致。總體來看,本研究結(jié)果具有非常高的普遍性,可為米曲霉的研究提供一定的理論支持。

    2.3 米曲霉所產(chǎn)蛋白酶酶解蝦頭的單因素優(yōu)化試驗

    2.3.1 酶解溫度對蝦頭酶解效果的影響

    溫度對米曲霉所產(chǎn)蛋白酶酶解蝦頭效果的影響如圖8所示。在30~40 ℃范圍內(nèi),隨著溫度的上升,可溶性蛋白和氨基態(tài)氮的含量均在不斷升高,酶解溫度為40 ℃時,可溶性蛋白和氨基態(tài)氮的含量達到最高,分別為7.79 mg/mL和1.82 mg/mL。在40~50 ℃范圍內(nèi),可溶性蛋白含量呈明顯下降趨勢(P<0.05),推測40 ℃可能更有利于蛋白酶發(fā)揮作用,溫度過低或過高,導致蛋白酶活性降低。因此確定40 ℃為米曲霉固態(tài)發(fā)酵所產(chǎn)蛋白酶酶解阿根廷紅蝦蝦頭的最佳溫度條件。

    2.3.2 酶解pH對蝦頭酶解效果的影響

    pH對米曲霉所產(chǎn)蛋白酶酶解蝦頭效果的影響如圖9所示。從結(jié)果可知,氨基態(tài)氮隨著pH的增加而降低,這是因為氨基態(tài)氮的測定是采用的甲醛滴定法,且總體來看,不同pH條件下,氨基態(tài)氮含量雖然有所降低,但是差異很小,因此主要從可溶性蛋白的含量進行判斷。在pH為7.5即自然pH時,可溶性蛋白達到最高值7.93 mg/mL,且具有明顯優(yōu)勢,因此確定自然pH(7.5)為米曲霉固態(tài)發(fā)酵所產(chǎn)蛋白酶酶解阿根廷紅蝦蝦頭的最佳pH。

    2.3.3 酶解時間對蝦頭酶解效果的影響

    酶解時間對米曲霉所產(chǎn)蛋白酶酶解蝦頭效果的影響如圖10所示。氨基態(tài)氮在3 h時,達到最大值1.91 mg/mL,之后有微弱下降趨勢,可溶性蛋白在5 h時達到最大值7.31 mg/mL,之后有微弱下降趨勢。二者總和在5 h時達到最大值9.15 mg/mL,效果較好。因此確定5 h為米曲霉固態(tài)發(fā)酵所產(chǎn)蛋白酶酶解阿根廷紅蝦蝦頭的最佳時間。

    2.4 蝦頭酶解液的風味成分分析

    2.4.1 揮發(fā)性成分分析

    從表5中可以看出,酶解前檢測出醛類、酮類、醇類及胺類化合物共13種,其中醛類物質(zhì)含量最高,占總的揮發(fā)性成分的61.56%,醇類物質(zhì)次之,占總成分的28.40%,此外還檢測出三甲胺和少量的酮類。酶解后檢測出醛類、酮類、醇類、酯類、芳香族化合物、酚類、胺類化合物及雜環(huán)化合物共28種。其中,醇類物質(zhì)含量最高,占總的揮發(fā)性成分的51.25%,醛類和酮類次之,分別為28.16%和7.54%,此外,還檢測出少量的三甲胺、酯類、酚類、芳香族化合物以及雜環(huán)化合物。孟凌玉等[20]以南美白對蝦(Penaeusvannamei)風味蛋白酶酶解產(chǎn)物為原料制備蝦風味基料,對酶解后產(chǎn)品進行揮發(fā)性物質(zhì)測定發(fā)現(xiàn),醛、酮和醇三類物質(zhì)為主要成分,相對含量分別為20.45%、26.06%和8.16%,與本研究結(jié)果相似。

    表5 蝦頭酶解前后揮發(fā)性風味物質(zhì)相對含量比較Tab.5 Comparison of relative contents of volatile compounds before and after enzymatic hydrolysis of shrimp heads

    醛類物質(zhì)一般為脂質(zhì)降解的產(chǎn)物,且呈現(xiàn)出閾值較低的特點[21],尤其是苯甲醛,作為蝦頭的重要風味成分[22],能給予清香、果香和堅果香的芳香特質(zhì)[23]。豐富的酮類化合物貢獻于蝦的甜香和果香風味,通常由多不飽和脂肪酸的氧化或降解、氨基酸降解或微生物氧化產(chǎn)生[24]。醛酮類通常具有濃郁的香味,醛類物質(zhì)經(jīng)過脫氫酶的作用又可還原成相應的醇類物質(zhì),因此酶解后醛類物質(zhì)相對含量有所下降,而醇類物質(zhì)種類和相對含量均有所增多。醇類通常會產(chǎn)生比較清淡、柔和的氣味[25],是蝦頭酶解產(chǎn)物中的主要成分。含量較高的醇類化合物,特別是具有蘑菇風味的1-辛烯-3-醇等,具有低閾值和高風味活性的特點,同時帶有類似于薰衣草、玫瑰和干草的香氣,一般存在于海產(chǎn)品的揮發(fā)性氣味物質(zhì)中,已有報道稱1-辛烯-3-醇是大多數(shù)魚蝦類動物中共同具有的甜香和類植物香的氣味成分,可能由脂肪的氧化分解或由羰基化合物還原生成,對蝦頭風味也有較大的貢獻[26]。酯類物質(zhì)常帶有水果香,使風味更加濃郁[27]。含氮類物質(zhì)的閾值較低,是水產(chǎn)品氣味的重要組成部分,三甲胺作為一種非常強的揮發(fā)性物質(zhì)廣泛存在魚、蝦及蟹體內(nèi),產(chǎn)生魚腥味[28]。2-戊基呋喃是亞油酸的氧化產(chǎn)物,呈現(xiàn)出蘑菇味[29]。

    分析酶解前后揮發(fā)性成分的變化,可以發(fā)現(xiàn),阿根廷紅蝦蝦頭經(jīng)過米曲霉蛋白酶液酶解后,相比酶解前多檢測出酯類、酚類、芳香族化合物和雜環(huán)類化合物,揮發(fā)性成分種類變多,風味程度變得更加多樣復雜;苯甲醛在酶解前后的高含量說明酶解保留了蝦頭中優(yōu)良的蝦風味;具有明顯魚腥味的三甲胺相對含量降低,酶解液魚腥味減輕;醛類物質(zhì)種類未發(fā)生變化,相對含量有所降低。而酮類和醇類物質(zhì)種類更加多樣,相對含量有所升高,這也說明酶解液的風味成分更優(yōu)。在發(fā)酵過程中,米曲霉分泌了豐富的蛋白酶和脂肪酶,作用于蝦頭后,其中的蛋白質(zhì)和脂肪酸經(jīng)氧化降解產(chǎn)生更多的酮類和醇類等物質(zhì);另外在蝦頭的酶解過程中,本身所富含的醛類物質(zhì)經(jīng)過蛋白酶液的作用,被還原成大量的醇類物質(zhì),因此醛類物質(zhì)的相對含量有所降低,而醇類物質(zhì)相對含量顯著增加,這是酶解前后揮發(fā)性成分變化的原因。

    2.4.2 電子鼻分析

    總體來看,酶解前和酶解后響應值有較明顯差異,酶解后的總響應值略低于酶解前(圖11),這說明酶解液中的揮發(fā)性物質(zhì)含量略低。結(jié)合傳感器代表的取值(表2)分析可知,芳香物質(zhì)、醇類物質(zhì)(傳感器1、8)的含量經(jīng)過酶解后稍微得到提高,氨類物質(zhì)、硫化物及有機硫化物(傳感器3、7、9)等與蝦類等水產(chǎn)品腥味有關(guān)的物質(zhì)有明顯降低。這與揮發(fā)性成分的測定結(jié)果相一致,說明蝦頭經(jīng)過米曲霉蛋白酶液酶解后的風味得到進一步的改善。

    2.4.3 電子舌分析

    通過對電子舌味覺雷達圖的分析,可以發(fā)現(xiàn)酶解前和酶解后味覺差異不大,但是酶解液的鮮味有明顯的提升,鮮味回味也有一定程度的增加,且酸味有微弱降低(圖12)。這說明蝦頭經(jīng)過米曲霉蛋白酶酶液酶解后的總體味覺有明顯改進,該結(jié)果再一次證明經(jīng)過米曲霉所產(chǎn)蛋白酶酶解后的蝦頭的酶解液具有作為調(diào)味基料的潛能。

    3 結(jié)論

    本研究以阿根廷紅蝦蝦頭為原料,通過單因素實驗和響應面優(yōu)化實驗,確定了米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶的優(yōu)化參數(shù):培養(yǎng)基為麩皮、培養(yǎng)基含水量為60.7%、培養(yǎng)溫度為28 ℃、培養(yǎng)時間為83.3 h、接種量為2%及浸提時間為4 h。在此條件下,米曲霉固態(tài)發(fā)酵產(chǎn)蛋白酶酶活為11 139.35 U/100 mL。應用所產(chǎn)蛋白酶酶解阿根廷紅蝦蝦頭,通過單因素實驗優(yōu)化了酶解條件:酶解溫度為40 ℃、酶解pH為7.5(自然pH)、酶解時間為5 h。此條件下,酶解液中可溶性蛋白和氨基態(tài)氮含量最高,表明蝦頭脫蛋白效果好。對蝦頭酶解液進行風味評價結(jié)果表明,與酶解前相比,酶解后其風味成分更加豐富,鮮味有所提高,腥味減弱,可進一步開發(fā)為調(diào)味品。本研究采用米曲霉產(chǎn)蛋白酶酶解蝦頭,該工藝條件較溫和,且綠色環(huán)保,產(chǎn)品質(zhì)量較好,可為蝦頭等廢棄物的高值化利用提供理論參考和實踐指導。

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