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    玉米中4種交鏈孢霉毒素的測定方法研究

    2020-08-03 06:06:38張二鵬韓月哲張榕杰韓華云
    關(guān)鍵詞:孢霉毒素回收率

    蘇 爽,張二鵬,韓月哲,張榕杰*,韓華云,賀 靜

    1.鄭州大學(xué) 化學(xué)學(xué)院,河南 鄭州 450001

    2.河南省疾病預(yù)防控制中心,河南 鄭州 450016

    交鏈孢霉毒素是由交鏈孢霉產(chǎn)生的一類真菌毒素,主要包括細(xì)交鏈孢菌酮酸(TeA)、交鏈孢酚(AOH)、交鏈孢酚單甲醚(AME)和騰毒素(TEN)。近年來對交鏈孢霉毒素的研究表明其對人畜的健康均有影響:TeA可引起急性毒性,微克劑量可引發(fā)雞胚胎死亡,且與非洲血液病有關(guān);TEN可使多種植物產(chǎn)生萎黃病;AOH和AME具有遺傳毒性,可能導(dǎo)致細(xì)胞誘變及轉(zhuǎn)化[1-3]。韓小敏等[4]通過對人食管上皮細(xì)胞Het-1 A的體外毒性研究發(fā)現(xiàn),這4種毒素可通過抑制細(xì)胞增殖引起細(xì)胞凋亡。

    目前,國內(nèi)外還沒有食品中交鏈孢霉毒素的限量標(biāo)準(zhǔn)和相應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)檢驗(yàn)方法[5],但是在小麥、蔬菜、水果及其制品中均檢出了該類毒素[6-8]。安徽省新收割的小麥籽粒中交鏈孢霉毒素TeA檢出率為100%,最大檢出的含量為3 330.7 μg/kg[9];在番茄醬和番茄汁中TeA檢出率為100%,在柑橘汁中也檢出TeA和AME[10];在市售的新鮮櫻桃和櫻桃醬中4種毒素均有檢出,新鮮櫻桃中TeA最高含量為236.58 μg/kg[11]。隨著全球氣候的加速轉(zhuǎn)變以及環(huán)境污染的加重,糧食作物等受到真菌污染的概率越來越大,霉菌污染糧食已經(jīng)成為全球性的問題[12]。玉米是三大主糧之一,我國已經(jīng)成為全球玉米第二生產(chǎn)大國[13]。玉米作為畜禽飼料的主要原料,其生產(chǎn)安全在動(dòng)物性食品供應(yīng)中起到關(guān)鍵作用。目前對玉米毒素的研究主要集中于黃曲霉毒素B1、嘔吐毒素和玉米赤霉烯酮,對交鏈孢霉毒素的研究較少,因此建立相應(yīng)的檢測方法并對玉米及其相關(guān)食品的安全進(jìn)行調(diào)查非常重要。

    交鏈孢霉毒素的測定方法主要有薄層色譜法、高效液相色譜法、氣相色譜法、氣相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法、超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法[14-17]。超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法(UPLC-MS/MS)具有更高的分離能力、選擇性和靈敏度,近年來受到廣泛關(guān)注。作者通過超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法結(jié)合固相萃取前處理技術(shù),建立了玉米中4種交鏈孢霉毒素(TeA、AOH、TEN和AME)的測定方法,研究了不同淋洗液與洗脫液的組合對目標(biāo)化合物加標(biāo)回收率的影響,并用于實(shí)際樣品測定。

    1 材料和方法

    1.1 材料

    TeA、AOH、TEN、AME標(biāo)準(zhǔn)品溶液購自ROMER Labs,規(guī)格分別為100.9、100.3、100.5、100.3 mg/L乙腈溶液;甲醇、乙腈、甲酸為色譜純,其他試劑為分析純,試驗(yàn)用水均為超純水。

    玉米粒(10份)、玉米面(10份)、玉米糝(17份)、玉米碴(10份)購自鄭州市超市及農(nóng)貿(mào)市場,采集時(shí)間為2018年10月。采樣后用研磨機(jī)粉碎、過篩,置于-20 ℃下避光保存,待測。

    1.2 儀器與設(shè)備

    LC-30 A超高效液相色譜儀:日本Shimadzu公司;QTRAP 6500三重四極桿串聯(lián)質(zhì)譜儀:美國AB SCIEX公司;Multi Reax振蕩器:德國Heidolph公司;SORVALL LYNX 6000高速落地離心機(jī):美國Thermo Fisher公司;N-Evap 112氮吹儀:美國Organomation公司;Milli-Q A10 超純水器:美國Millipore公司;Oasis HLB固相萃取柱(200 mg,6cc)、XBridge BEH C18色譜柱:美國Waters公司。

    1.3 方法

    1.3.1 樣品前處理

    稱取5 g(精確至0.01 g)待測樣于50 mL離心管中,加入25 mL提取液(V0.05 mol/L磷酸二氫鈉緩沖液(pH3.0)∶V甲醇∶V乙腈=45∶10∶45),渦旋30 s后振蕩提取60 min。4 ℃低溫離心(10 000 r/min),取上清液5 mL加入15 mL磷酸二氫鈉緩沖液稀釋,混合均勻,離心,待凈化。HLB固相萃取柱預(yù)先用5 mL甲醇和5 mL水活化,將樣品稀釋液全部過柱,用5 mL 20%甲醇水溶液淋洗,抽干后用6 mL含1%氨水的甲醇/乙腈(50∶50,體積比)混合液洗脫小柱。洗脫液在40 ℃的氮?dú)饬飨麓抵两?,殘?jiān)? mL 10%甲醇水溶液復(fù)溶,渦旋30 s后,離心,上清液供UPLC-MS/MS分析。

    1.3.2 標(biāo)準(zhǔn)工作溶液的配制

    標(biāo)準(zhǔn)工作曲線:準(zhǔn)確移取適量標(biāo)準(zhǔn)品儲備溶液,用乙腈配制成TeA、AOH、TEN為500 μg/L,AME為50 μg/L的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,最后用10%甲醇稀釋配制系列標(biāo)準(zhǔn)溶液,TeA、AOH、TEN質(zhì)量濃度分別為1.0、2.0、5.0、10.0、20.0、50.0、100.0 μg/L,AME質(zhì)量濃度為0.1、0.2、0.5、1.0、2.0、5.0、10.0 μg/L。

    基質(zhì)匹配工作曲線:取陰性玉米樣品,用1.3.1方法處理得到空白基質(zhì)溶液,取適量混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,用空白基質(zhì)溶液稀釋配制基質(zhì)匹配工作曲線,其中TeA、AOH、TEN質(zhì)量濃度分別為1.0、2.0、5.0、10.0、20.0、50.0、100.0 μg/L,AME質(zhì)量濃度為0.1、0.2、0.5、1.0、2.0、5.0、10.0 μg/L。

    1.3.3 液相條件

    色譜柱:XBridge BEH C18色譜柱(2.1 mm×100 mm,2.5 μm);柱溫:40 ℃;進(jìn)樣量:5 μL;流速:0.5 mL/min;流動(dòng)相(A)1.0 mmol/L碳酸氫銨水溶液和(B)甲醇;梯度洗脫:0~1.0 min,5%B;1.0~1.5 min,5%-75%B;1.5~2.0 min 75%-90% B;2.0~4.0 min,90%B;4.0~4.2 min,95%-5%B;4.2~9.0 min,5%B。

    1.3.4 質(zhì)譜條件

    離子化模式:電噴霧離子源,負(fù)離子模式(ESI-);質(zhì)譜掃描方式:多反應(yīng)監(jiān)測(MRM);離子化電壓:-4 500 V;氣簾氣(Curtain Gas):241.3 kPa;溫度:550 ℃;噴霧氣(Gas1):344.7 kPa;輔助加熱氣(Gas 2):413.7 kPa;碰撞氣:Medium。4種交鏈孢霉毒素的質(zhì)譜參數(shù)見表1。

    表1 交鏈孢霉毒素的質(zhì)譜采集參數(shù)

    2 結(jié)果與討論

    2.1 色譜和質(zhì)譜條件的優(yōu)化

    TeA是一元酸類化合物(pKa=3.5),與AOH和AME極性相差較大,需要選擇合適的分離條件[18]。研究了CORTECS C18、BEH C18、HSS T3和XBridge BEH C184種色譜柱,以及甲醇-1.0 mmol/L氨水和甲醇-1.0 mmol/L碳酸氫銨水溶液分別作為流動(dòng)相對4種毒素分離和檢測的影響。結(jié)果發(fā)現(xiàn),以甲醇-1.0 mmol/L氨水作為流動(dòng)相,使用CORTECS C18和HSS T3色譜柱,TeA峰形拖尾;使用BEH C18色譜柱,TeA保留能力差,出峰太快,目標(biāo)化合物的電離易受影響。甲醇-1.0 mmol/L碳酸氫銨做流動(dòng)相,使用BEH C18色譜柱,4種化合物峰形均出現(xiàn)拖尾的情況;分別使用HSS T3和XBridge BEH C18色譜柱時(shí)4種交鏈孢霉毒素的峰形較好??紤]到HSS T3柱pH值(2~8)耐受范圍較窄,而XBridge BEH C18柱pH值(2~12)適用范圍廣,最終選用XBridge BEH C18做分離柱,甲醇-1.0 mmol/L碳酸氫銨做流動(dòng)相。

    通過流動(dòng)注射泵直接進(jìn)樣的方式,在ESI-模式下進(jìn)行一級質(zhì)譜分析,對去簇電壓和錐孔電壓進(jìn)行優(yōu)化,確定準(zhǔn)分子離子峰。接著進(jìn)行目標(biāo)離子二級質(zhì)譜掃描,優(yōu)化碰撞電壓和碰撞室出口電壓,得到碎片離子。選擇穩(wěn)定性好、豐度高的兩個(gè)碎片離子分別作為定性離子和定量離子,并以豐度最強(qiáng),響應(yīng)最高的離子作為定量離子,見表1。

    2.2 樣品前處理方法優(yōu)化

    固相萃取過程中淋洗液及洗脫液的溶劑種類和比例對試驗(yàn)結(jié)果影響很大[10-11],分別優(yōu)化了3種淋洗方式和兩種洗脫方式。淋洗:(1)依次用5 mL 20%甲醇、5 mL含1%甲酸的20%甲醇水溶液和5 mL水淋洗;(2)用5 mL含1%甲酸的20%甲醇水溶液淋洗;(3)用5 mL 20%甲醇水溶液淋洗。洗脫:(1)用5 mL甲醇和5 mL乙腈依次洗脫;(2)用6 mL含1%氨水的甲醇/乙腈(50∶50,體積比)混合溶液洗脫。

    試驗(yàn)結(jié)果見表2。采用淋洗方式3與洗脫方式1組合,發(fā)現(xiàn)TeA和TEN的回收率滿足要求,AOH和AME回收率較差;采用淋洗方式3與洗脫方式2組合,AOH和AME回收率均達(dá)到70%以上。當(dāng)采用淋洗方式1與洗脫方式2組合時(shí),發(fā)現(xiàn)AOH和AME也能滿足要求,但是結(jié)果穩(wěn)定性較差。故而確定20%甲醇水溶液為淋洗液,含1%氨水的甲醇/乙腈(50∶50,體積比)混合溶液為洗脫液。

    表2 不同固相萃取處理方法對4種交鏈孢霉毒素回收率的影響

    進(jìn)一步研究了洗脫液體積對試驗(yàn)結(jié)果的影響。取5 mL空白基質(zhì)溶液,向其中加入適量標(biāo)準(zhǔn)溶液(TeA、AOH、TEN為100 μg/kg,AME為10 μg/kg),稀釋后上樣、凈化,用10 mL洗脫液分5次對小柱進(jìn)行洗脫,每次2 mL,分別收集洗脫液,氮吹,定容到2.0 mL,上機(jī)檢測。結(jié)果顯示,第4次和第5次的洗脫液中不含任何待測物,說明6 mL洗脫液可以把樣品完全洗脫出來。

    2.3 方法評價(jià)

    對分析方法的特性進(jìn)行了評估,結(jié)果見表3。TeA、AOH、TEN在1.0~100.0 μg/L、AME在0.1~10.0 μg/L范圍內(nèi)具有良好的線性關(guān)系(r>0.999)。檢出限(LOD)和定量限(LOQ)分別以信噪比為3∶1和10∶1進(jìn)行計(jì)算。

    表3 分析方法的特性

    為確定方法的準(zhǔn)確性,對4種化合物進(jìn)行了低、中、高三水平加標(biāo)回收率測定,每個(gè)加標(biāo)水平下平行測定6次,計(jì)算相對標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD),結(jié)果見表4。4種化合物的平均回收率為78.4%~100.3%,RSD≤8.9%,表明該方法對玉米中4種交鏈孢霉毒素的測定具有較高的回收率和精密度,準(zhǔn)確可靠。

    表4 玉米樣品中4種交鏈孢霉毒素的回收率和精密度(n=6)

    2.4 基質(zhì)效應(yīng)

    基質(zhì)效應(yīng)由基質(zhì)匹配工作曲線與溶劑標(biāo)準(zhǔn)曲線的斜率之比進(jìn)行計(jì)算[19]。由表3可知,4種毒素都有基質(zhì)抑制效應(yīng),當(dāng)基質(zhì)效應(yīng)導(dǎo)致信號變化大于20%時(shí),基質(zhì)效應(yīng)不可忽略,而AOH和AME信號降低50%以上(圖1),為了得到準(zhǔn)確的結(jié)果,采用基質(zhì)匹配工作曲線進(jìn)行校正。

    注:A為10%甲醇,B為空白;TeA、AOH、TEN為50 μg/L,AME為5 μg/L;色譜峰1—4分別為TeA、AOH、TEN、AME。

    2.5 樣品測定結(jié)果及污染情況分析

    對47份玉米樣品進(jìn)行檢測,4種交鏈孢霉毒素均有檢出,測定結(jié)果見表5。有66.0%(31/47)的樣品至少受一種毒素污染,TeA、AOH、TEN和AME檢出率分別為23.4%、10.6%、4.3%和63.8%。TeA檢出的含量最高,為32.51 μg/kg。4種毒素平均含量為TeA>AOH>AME>TEN,Zhao等[20]報(bào)道小麥粉中4種毒素平均含量為TeA>AOH>TEN>AME,其中TEN的含量為16.0~98.7 μg/kg,而本次研究共采集47份玉米樣品,TEN的檢出率較低,平均含量為1.04μg/kg,可見該毒素在玉米中的污染情況和小麥有所不同。由表6可知,不同顆粒大小的玉米樣品AME毒素檢出率分別為玉米面100%、玉米糝88.2%、玉米碴30%、玉米粒20%,可見玉米面、玉米糝與玉米粒、玉米碴相比,毒素檢出率較高。此外,受4種毒素污染最為嚴(yán)重的是玉米面,其中TeA檢出率為90%,平均值為8.85 μg/kg;AME檢出率為100%,平均值為2.65 μg/kg。谷物粉碎后,沒有了表皮的保護(hù),在適宜的環(huán)境下,霉菌很容易生長繁衍。因此糧食在收割及儲藏時(shí)盡量保持顆粒完整,且入庫前降到安全水分(≤14%),降低儲藏濕度、溫度,以降低霉變風(fēng)險(xiǎn)[21]。

    表5 玉米樣品中4種交鏈孢霉毒素的檢出情況(n=47)

    表6 不同種類玉米中4種交鏈孢霉毒素陽性率

    3 結(jié)論

    建立了超高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法同時(shí)測定玉米中4種交鏈孢霉毒素的分析方法,4種毒素低中高加標(biāo)回收率為78.4%~100.3%,相對標(biāo)準(zhǔn)偏差≤8.9%,該方法具有較好的精密度和準(zhǔn)確度,滿足玉米中4種交鏈孢霉毒素的檢測要求。對采集的47份玉米樣品進(jìn)行檢測,結(jié)果發(fā)現(xiàn),有66.0%(31/47)的樣品至少受一種毒素污染。玉米中4種毒素檢出的含量為TeA>AOH>AME>TEN,TeA毒素是玉米中檢出的主要毒素,TEN污染程度最低,與小麥粉中4種毒素污染情況有所不同。與玉米粒和玉米碴這種大顆粒樣品相比,玉米面污染最為嚴(yán)重,由此推測,樣品顆粒度越小,越易受霉菌污染。

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