焦?fàn)I營(yíng),曾曉媛,李宗鵬,張玉嬌,劉啟發(fā),葉潔瑜
南方醫(yī)科大學(xué)南方醫(yī)院血液科,廣東 廣州 510515
原發(fā)性免疫性血小板減少癥(ITP)雖然是非惡性疾病,但因高出血風(fēng)險(xiǎn)及明顯乏力癥狀,患者生活質(zhì)量非常差,甚至低于大部分癌癥患者[1-2]。ITP一線治療藥物是糖皮質(zhì)激素,有效率達(dá)70%~80%,但在藥物減量或停藥過(guò)程中有相當(dāng)大部分患者出現(xiàn)復(fù)發(fā),而對(duì)于這種激素耐藥/依賴患者目前仍缺乏有效治療方案。既往考慮血小板破環(huán)過(guò)多是ITP發(fā)病主要原因,近年來(lái)學(xué)者們強(qiáng)調(diào)血小板生成減少也是重要因素。然而,針對(duì)ITP患者血小板生成減少的研究仍十分局限,目前比較明確的發(fā)現(xiàn)僅僅是巨核細(xì)胞(MK)生成受抑制[3-4],但其中具體機(jī)制尚不明確。血小板造血是極其復(fù)雜的生理過(guò)程,受到多種因素調(diào)控。即使血小板水平相同的ITP患者其出血癥狀卻差異很大,這種強(qiáng)異質(zhì)性現(xiàn)象提示還有一些未知因素參與ITP的發(fā)病。
機(jī)體的正常造血除了依靠造血細(xì)胞,還依賴于支持造血細(xì)胞生長(zhǎng)發(fā)育的“造血微環(huán)境”,主要由成骨細(xì)胞、破骨細(xì)胞、骨髓內(nèi)皮細(xì)胞及骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞組成[5]。巨核細(xì)胞的生長(zhǎng)發(fā)育受到造血微環(huán)境中多種因素的精細(xì)調(diào)節(jié)[6],微環(huán)境中的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞及骨髓內(nèi)皮細(xì)胞主要通過(guò)分泌細(xì)胞因子;以及通過(guò)細(xì)胞表面的粘附分子與巨核細(xì)胞相互接觸,促進(jìn)巨核細(xì)胞的成熟及遷移[7]。在病理狀態(tài)下,體內(nèi)的造血微環(huán)境也會(huì)發(fā)生改變[8],進(jìn)而影響巨核細(xì)胞造血。近期研究發(fā)現(xiàn),ITP患者的內(nèi)皮祖細(xì)胞(EPC)功能明顯受損[9];動(dòng)物模型的電鏡檢查果提示,ITP組的動(dòng)物內(nèi)皮細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)與對(duì)照組明顯不同,實(shí)驗(yàn)組的吞飲小泡減少,細(xì)胞間隙明顯增大[10];另外,ITP組動(dòng)物的血漿vWF水平明顯增高,這些都是ITP內(nèi)皮細(xì)胞受損的表現(xiàn)。此外,本課題組前期研究發(fā)現(xiàn):TPO可減少缺氧誘導(dǎo)的人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞凋亡,從而發(fā)揮細(xì)胞保護(hù)作用[11]。因此我們推測(cè),TPO可能通過(guò)修復(fù)內(nèi)皮細(xì)胞功能,恢復(fù)其對(duì)MK細(xì)胞的造血支持作用,從而促進(jìn)血小板生成。
選擇2019年3月1日~11月31日在南方醫(yī)科大學(xué)南方醫(yī)院血液科22例確診ITP患者的骨髓作為實(shí)驗(yàn)標(biāo)本,并且獲得健康供者捐贈(zèng)的骨髓(n=10)作為健康對(duì)照組,患者和健康供者骨髓標(biāo)本的獲取均通過(guò)南方醫(yī)科大學(xué)南方醫(yī)院醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)批準(zhǔn),并取得患者及健康供者知情同意。
BM-EC細(xì)胞來(lái)自ITP患者及供者,AnnexinV/PI凋亡試劑盒(南京凱基生物科技發(fā)展有限公司),EBM-2培養(yǎng)基(廣州優(yōu)寧維生物科技有限公司),胎牛血清(廣州優(yōu)邦生物科技有限公司),24孔板及6孔板(廣州杰特偉生物科技有限公司),TPO為臨床剩余廢棄,胰蛋白酶(英濰捷基貿(mào)易有限公司),CCK-8試劑盒(東仁化學(xué)科技有限公司),倒置顯微鏡(德國(guó)萊卡儀器股份有限公司);AIRTECHVS-1300L-U超凈工作臺(tái)(上海整新電子設(shè)備廠);自動(dòng)定量酶標(biāo)儀(Bio-Rad);5%CO2恒溫培養(yǎng)箱(香港Heal Force HF100型);離心機(jī)(湖南湘儀實(shí)驗(yàn)室儀器開(kāi)發(fā)有限公司);FACSCaliburTM(BD Biosciences)流式細(xì)胞儀(Becton Dickinson)。鼠抗CD34/CD133/CD309(廣州賽哲生物科技有限公司),Lonza-EGM-2培養(yǎng)基(上海優(yōu)寧維生物科技有限公司)。DIL-AC-LDL(廣州新進(jìn)度生物科技有限公司),F(xiàn)ITC-UEA(sigma)、青鏈霉素混合液(廣州科進(jìn)生物有限公司),基質(zhì)膠(coring)(廣州賽哲生物科技有限公司),明膠(上海翊圣生物科技有限公司)。
采用淋巴細(xì)胞分離液分離法分離ITP患者及供者骨髓標(biāo)本,獲得單個(gè)核細(xì)胞,置于10%血清,1%雙抗的EGM-2培養(yǎng)基(含內(nèi)皮祖細(xì)胞生長(zhǎng)因子)中重懸。以1×106/mL接種于預(yù)涂1%明膠的24孔板內(nèi)。將所提取ITP患者的單個(gè)核細(xì)胞分兩組:實(shí)驗(yàn)組加入濃度為100 ng/mL的TPO,對(duì)照組不添加TPO,同時(shí)按照上述提取BM-EPC方法提取健康人骨髓單個(gè)核細(xì)胞進(jìn)行BM-EPC培養(yǎng),作為健康對(duì)照組。將其放入37℃、5%CO2敷箱培養(yǎng),每隔3 d換液,并觀察細(xì)胞形態(tài),長(zhǎng)至80%~90%融合狀態(tài)時(shí)棄去舊培養(yǎng)基,PBS清洗1~2次,加入0.25%EDTA胰酶放入37℃、5%CO2敷箱1 min左右,鏡下觀察當(dāng)細(xì)胞皺縮、變圓、細(xì)胞間間隙變大時(shí)用含10%血清的完全培養(yǎng)基終止消化,輕輕吹打至細(xì)胞完全脫落,離心收集細(xì)胞傳代。
1.4.1 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)其表面CD34/CD133/CD309表達(dá) 收集不同處理組培養(yǎng)7 d的細(xì)胞,離心收集至流式管,調(diào)整細(xì)胞濃度為106/mL,分別加入5 μL的鼠抗CD34/CD133/CD309混勻置于4℃冰箱避光孵育20~30 min,PBS洗2次上機(jī)檢測(cè)。
1.4.2 DIL-AC-LDL及FITC-UEA-1實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)吞功能 首先將DIL-AC-LDL用EGM-2培養(yǎng)基稀釋成2.5 μg/mL FITC-UEA-1生理鹽水稀釋至10 μg/mL。收集不同處理組培養(yǎng)7 d的細(xì)胞,棄去舊培養(yǎng)基,PBS輕輕清洗1~2次,加入DIL-AC-LDL(2.5 μg/mL)放置37 ℃、5%CO2敷箱3~4 h,取出后倒掉其液體PBS洗3次,加入4%多聚甲醛固定20 min,其后棄去液體,PBS洗3次,每次5 min,加入 FITC-UEA-1(10 μg/mL)放置敷箱2 h,取出后PBS洗3次,每次5 min,置于倒置熒光顯微鏡下觀察并拍照記錄。
取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的ITP患者BM-EC,接種于96孔板中,96孔板周圍邊緣孔用無(wú)菌PBS填充,TPO以0、50、100、200 ng/mL不同劑量組加入96孔板中,使得總體積為100 μL。作用24 h后,將液體棄去,全部換為無(wú)血清EGM-2培養(yǎng)基,并加入10 μL CCK8試劑,反應(yīng)2 h,酶標(biāo)儀檢測(cè)細(xì)胞吸光度A450nm。細(xì)胞增殖率(%)=[(實(shí)驗(yàn)組吸光度-空白組吸光度)(A450nm)(/對(duì)照組吸光度-空白組吸光度)(A450nm)]×100%。
預(yù)先將96孔板及槍頭預(yù)冷,將50 μL Matrigel加入96孔板中,放入37℃孵箱中30 min。用胰酶消化各組BM-EC并用ECM培養(yǎng)基重懸,以2×104細(xì)胞(總體積50 μL)種入預(yù)先放有Matrigel的96孔板中,12 h后顯微鏡下觀察,使用Image J.測(cè)量其管長(zhǎng)度。
取不同處理組對(duì)數(shù)期生長(zhǎng)狀態(tài)的細(xì)胞,用胰酶消化BM-EC并用完全培養(yǎng)基重懸,以3×105細(xì)胞種于6孔板內(nèi),待其完全貼壁后加入1×105巨核細(xì)胞,37℃、5%CO2敷箱培養(yǎng)48 h后,收集細(xì)胞調(diào)整細(xì)胞濃度為106/mL,分別加入5 μL的鼠抗CD41a混勻置于4℃冰箱避光孵育20~30 min,PBS洗2次上機(jī)檢測(cè)。
采用SPSS22.0對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行單因素方差分析;實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示;兩樣本比較采用配對(duì)t檢驗(yàn)。以P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
鏡下細(xì)胞分離接種初期為單個(gè)核細(xì)胞形態(tài),第3天細(xì)胞開(kāi)始變大,有聚集成團(tuán)的現(xiàn)象。5~7 d細(xì)胞開(kāi)始出現(xiàn)不規(guī)則形、梭形;9~10 d為典型的EPC細(xì)胞形態(tài)(圖1)。
用流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)不同處理組BM-EPC表面相關(guān)CD分子表達(dá)水平,結(jié)果顯示,所培養(yǎng)的細(xì)胞表面表達(dá)CD34、CD309及CD133的細(xì)胞率占80%以上(圖2)。
TPO 0、50、100、200 ng/mL作用于BM-EPC 24 h,在100 ng/mLTPO作用下增殖率達(dá)到最大,這為理想的藥物濃度,綜合考慮選用100 ng/mL的TPO處理細(xì)胞進(jìn)行相關(guān)實(shí)驗(yàn)(圖3)。
采用免疫熒光方法檢測(cè)不同處理組BM-EC DILAC-LDL及FITC-UEA-1雙染陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)量,結(jié)果顯示,不同處理組培養(yǎng)的BM-EPC均為陽(yáng)性,并且TPO處理組明顯高于未處理組(圖4)。
不同處理組細(xì)胞接種在鋪有Matrigel的96孔板中,12 h后的顯微鏡下結(jié)果(圖5)。TPO處理組成管能力高于未處理組其結(jié)果差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(n=8,P<0.05)。
使用6孔板直接共培養(yǎng)BM-EPC與MK,48 h后,流式上機(jī)檢測(cè)不同處理組CD41a的表達(dá),使用TPO處理組CD41表達(dá)明顯高于未處理(圖6)。
當(dāng)前研究表明,ITP患者BM-EPCs功能受損,主要表現(xiàn)為增殖能力、成管功能及支持巨核細(xì)胞造血功能下降,在體外TPO處理后,EPCs數(shù)量明顯增加,成管功能明顯增強(qiáng),共培養(yǎng)MK數(shù)量明顯增多。TPO及c-mpl已被證實(shí)在除了造血干/祖細(xì)胞及巨核系統(tǒng)以外的多種細(xì)胞中表達(dá)。有文獻(xiàn)報(bào)道內(nèi)皮細(xì)胞及EPC均表達(dá)c-mpl,TPO通過(guò)c-mpl受體發(fā)揮生物學(xué)作用[12-13];另有研究表明通過(guò)對(duì)骨髓移植后的小鼠輸注BM-EPC可以加速移植后各系功能重建,促進(jìn)HSC增殖[14]。此外,TPO刺激造血干細(xì)胞中的血管內(nèi)皮細(xì)胞生長(zhǎng)因子(VEGF)的產(chǎn)生,VEGF是對(duì)HSC生理至關(guān)重要的一種細(xì)胞因子[15]。本研究提示TPO對(duì)ITP患者BM-EPCs有促增殖及恢復(fù)其支持巨核細(xì)胞造血的作用。其機(jī)制可能是TPO通過(guò)增加EPCs數(shù)量,加大與巨核細(xì)胞間的直接接觸,另一方面可能是通過(guò)促進(jìn)分泌VEGF、SDF-1等細(xì)胞因子促進(jìn)HSC向MK分化從而增強(qiáng)其支持巨核細(xì)胞造血功能[16]。但TPO處理后的BM-EPC是否可以通過(guò)增加造血因子的分泌影響巨核細(xì)胞造血,還需進(jìn)一步研究。
BM-EPC在刺激因子作用下可分化成成熟內(nèi)皮細(xì)胞,具有成管和遷移特性,對(duì)于新生血管的形成和血管的修復(fù)具有重要意義[17]。內(nèi)皮細(xì)胞的成管功能是參與機(jī)體止血的重要環(huán)節(jié)[18],ITP患者的出血癥狀不僅僅與血小板減少相關(guān),可能與內(nèi)皮的成管功能受損也有很大的關(guān)系。本研究結(jié)果表明,TPO可修復(fù)ITP患者EPC的成管功能;這可能是臨床使用TPO類制劑,例如重組人血小板生成素以及TPO受體激動(dòng)劑減少出血癥狀的機(jī)制之一[19-20];同時(shí)也解釋了一部分ITP患者即使血小板數(shù)量增高不明顯,出血癥狀也可明顯改善,可能與這部分患者EPC成管功能得以恢復(fù)有關(guān)。另外,文獻(xiàn)報(bào)道TPO/c-mpl可激活Src激酶通路[21],而Src-ERK通路在內(nèi)皮細(xì)胞的成管功能中發(fā)揮重要作用[22],故TPO是否也通過(guò)此通路修復(fù)EPC的成管功能仍有待進(jìn)一步研究。
綜上所述,TPO對(duì)ITP患者受損的內(nèi)皮細(xì)胞具有修復(fù)作用,主要表現(xiàn)為成管功能及巨核細(xì)胞支持功能明顯增強(qiáng)。本研究進(jìn)一步完善了TPO的生理學(xué)作用及促巨核細(xì)胞造血的作用機(jī)制,為臨床ITP患者合理使用TPO類試劑提供了理論依據(jù)。