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    棗粉對(duì)陜北白絨山羊肉抗氧化性能的影響

    2020-07-22 14:37:42孫旺斌薛瑞林
    關(guān)鍵詞:肉色肌紅蛋白絨山羊

    馮 平,孫旺斌,張 騫,薛瑞林,付 琪

    (1. 榆林學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院,榆林 719000;2. 榆林市佳縣方塌鎮(zhèn)瑞興種羊場(chǎng),榆林 719208)

    0 引 言

    陜北白絨山羊是肉絨兼用型品種,其肉質(zhì)具有細(xì)嫩、口感好、高蛋白、低脂肪、低膽固醇等特點(diǎn)[1]。近年來(lái)隨著生態(tài)環(huán)境的限制和羊肉需求量的增多,絨山羊養(yǎng)殖方式從傳統(tǒng)的放牧轉(zhuǎn)變?yōu)樯犸暫桶肷犸暭s化養(yǎng)殖,但高密度的集約化養(yǎng)殖會(huì)造成絨山羊生長(zhǎng)發(fā)育遲緩、免疫功能減弱,抗氧化能力低,從而導(dǎo)致羊肉品質(zhì)下降。目前,通過(guò)營(yíng)養(yǎng)調(diào)控提高羊肉的抗氧化能力,改善肉品質(zhì)已成為一種重要的手段。許多學(xué)者進(jìn)行相關(guān)研究,胡宇超等[2]發(fā)現(xiàn)發(fā)酵麩皮多糖能提高肉羊肌肉中調(diào)控抗氧化酶相關(guān)基因的表達(dá)量,可增強(qiáng)肌肉的抗氧化能力;Hukerdi 等[3]在羔羊飼糧中補(bǔ)充橄欖葉發(fā)現(xiàn),隨著橄欖葉水平的增加,羔羊肌肉中的脂質(zhì)氧化程度降低,谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GSH-Px)活力增加;Adeyemi 等[4]發(fā)現(xiàn)棕櫚油和菜籽油能提高山羊肌肉組織中的抗氧化物質(zhì),如α-生育酚和類胡蘿卜素的含量;Deng 等[5]在湖羊的飼糧中添加紫蘇籽,發(fā)現(xiàn)紫蘇籽能降低背最長(zhǎng)肌中丙二醛(Malondialdehyde,MDA)的含量,增加抗氧化酶活性,改善肌肉氧化狀態(tài)和肉品質(zhì)。但飼糧中添加棗粉改善山羊肉抗氧化性能方面的研究還比較少[6]。棗粉中含有豐富的多糖、皂甙、黃酮類等活性物質(zhì),是天然的抗氧化劑[7]。

    鑒于此,本文以陜北白絨山羊?yàn)檠芯繉?duì)象,旨在探討飼糧添加棗粉對(duì)絨山羊肉色,脂質(zhì)氧化,蛋白氧化狀態(tài)、抗氧化系統(tǒng)和抗氧化酶基因的影響,明確棗粉在絨山羊飼糧中的適宜添加量,從而為指導(dǎo)生產(chǎn)高品質(zhì)的絨山羊肉提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    從陜西省榆林市佳縣瑞興羊場(chǎng)選取舍飼條件下健康的6 月齡陜北白絨山羊(初始體質(zhì)量(20.15±1.63)kg)40 只,按照每組8 只(公母各4 只)分成5 組,分別飼喂棗粉添加量為0(對(duì)照組)、10%(I 試驗(yàn)組)、15%(II 試驗(yàn)組)、20%(III 試驗(yàn)組)、25%(IV 試驗(yàn)組)的飼料,棗粉等比例代替基礎(chǔ)日糧中的玉米秸稈,棗粉由當(dāng)?shù)赝慌蔚臍埓侮儽奔t棗全棗加工而成,所用棗粉均為同一批次生產(chǎn),棗粉的營(yíng)養(yǎng)成分與抗氧化性能見(jiàn)表1。日糧參照配方配制并制成顆粒狀,試驗(yàn)日糧組成見(jiàn)表2。每日飼喂兩次,分別為08:00 和20:00,自由飲水,并定期清理羊舍。飼養(yǎng)試驗(yàn)預(yù)試期10 d,飼喂期70 d。飼喂試驗(yàn)結(jié)束后進(jìn)行屠宰,宰前禁食24 h,禁水2 h,宰后1 h 內(nèi)用已消毒剪刀迅速?gòu)难虮匙铋L(zhǎng)肌取約2 g 肌肉放入無(wú)菌無(wú)酶管中,于-80 ℃保藏待用,另各取約20 g 左右肌肉于-20 ℃保藏,進(jìn)行肉色、脂質(zhì)氧化和蛋白氧化指標(biāo)測(cè)定。

    表1 棗粉的營(yíng)養(yǎng)成分與抗氧化性能 Table 1 Nutritional content and antioxidant capability of jujube power

    表2 日糧組成 Table 2 Dietary composition %

    磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、氯化鈉(均為分析純),北京國(guó)藥試劑有限公司;超氧化物歧化酶(Superoxide Dismutase,SOD)試劑盒(檢測(cè)范圍:5.0~122.1 U/mg)、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(Glutathione Peroxidase,GSH-Px)試劑盒(檢測(cè)范圍:20.0~330.0 U/mg)、過(guò)氧化氫酶(Catalase,CAT)試劑盒(檢測(cè)范圍:0.2~24.8 U/mg)、丙二醛(Malondialdehyde,MDA)試劑盒(檢測(cè)范圍:0~113.0 nmol/mg)、總抗氧化能力(Total Antioxidant Capacity,T-AOC)試劑盒(檢測(cè)范圍:0.2~55.2 U/mg),南京建成生物工程研究所;2, 2-聯(lián)氮基-雙-(3-乙基苯并噻唑啉-6- 磺酸) 二銨鹽( 2, 2'-Azino-Bis(3-Ethylbenzothiazoline-6-Sulfonic acid),ABTS),美國(guó)Amresco 公司;焦碳酸二乙酯,美國(guó)Thermo Fisher 公司;RNAiso Plus、6×loading buffer、Marker DL2000、Premix Taq?Version 2.0、PremeScript TM RT reagent Kit with gDNA Eraser、SYBR?Premix Ex TaqTM,大連寶生物工程有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    XHF-DY 型高速分散器,寧波新芝生物科技股份有限公司;5810-R 型低溫臺(tái)式冷凍離心機(jī),德國(guó)Eppendorf公司;TU-1810 型紫外/可見(jiàn)分光光度計(jì),北京普析通用儀器有限公司;CR-400 型色差儀,日本柯尼卡美能達(dá)公司;電熱恒溫箱,上海一恒科學(xué)儀器有限公司;BG-power 5000 型穩(wěn)壓穩(wěn)流電泳儀,北京百晶生物科技有限公司;水平電泳槽、凝膠成像分析儀、CFX96TM 型實(shí)時(shí)定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Real-time Quantitative Polymerase Chain Reaction,qPCR)儀,美國(guó)Bio-Rad 公司;普通PCR 儀,美國(guó)Applied Biosystems 公司。

    1.3 方法

    1.3.1 瘤胃降解率的測(cè)定

    參照姜富貴等[8]的方法并稍作修改,對(duì)安裝有永久性瘤胃瘺管的陜北白絨山羊進(jìn)行營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)48 h 瘤胃降解率的測(cè)定,計(jì)算試驗(yàn)羊的瘤胃的干物質(zhì)消化率(Dry Matter Digestibility,DMD)和粗蛋白消化率(Crude Protein Digestibility,CPD),計(jì)算公式如下

    1.3.2 生長(zhǎng)性能測(cè)定

    分別在試驗(yàn)開(kāi)始和結(jié)束時(shí)對(duì)試驗(yàn)羊進(jìn)行空腹稱量,試驗(yàn)期間記錄每次的投料量和料槽中剩余的料量,以計(jì)算每只羊每天的采食量。由此計(jì)算試驗(yàn)羊的平均日采食量(Average Daily Feed Intake,ADFI)、平均日增重(Average Daily Gain,ADG)和料肉比(Feed Conversion Ratio,F(xiàn)CR),計(jì)算公式如下

    1.3.3 肉色的測(cè)定

    用CR-400全自動(dòng)色差儀測(cè)定絨山羊背最長(zhǎng)肌的亮度(L*值)、紅度(a*值)以及黃度(b*值),每個(gè)樣品測(cè)定3 次,取平均值。

    1.3.4 肌紅蛋白含量的測(cè)定

    參照羅玉龍等[9]的方法,切碎部分背最長(zhǎng)肉樣,稱取5 g,按1∶9 g/mL 比例加入45 mL 磷酸鹽緩沖液(40 mmol/L、pH 值6.8),4 000 r/min 冰浴勻漿20 s 后靜置5 min 后過(guò)濾,在525 nm 波長(zhǎng)下測(cè)定濾液的吸光度,空白對(duì)照為磷酸鹽緩沖液。肌紅蛋白(Myoglobin,Mb)質(zhì)量分?jǐn)?shù)(mg/g)按下式計(jì)算

    式中7.6 為Mb 在波長(zhǎng)525 nm 處的吸光系數(shù),L/(mol·cm);1 cm 為比色皿寬度;17 000 為Mb 的平均分子質(zhì)量,Da;10 為稀釋倍數(shù);A525為525 nm 波長(zhǎng)下濾液的吸光度。

    1.3.5 蛋白氧化狀態(tài)的測(cè)定

    參照Kim 等[10]的方法,稱取已剪碎肉樣5 g,按1∶5 g/mL 比例加入25 mL 磷酸鹽緩沖液(40 mmol/L、pH值6.8),4 000 r/min 冰浴勻漿20 s 后靜置1 h,混液離心25 min(4 ℃,3 000 r/min)后取上清液,濾紙過(guò)濾后收集濾液,分別在525、545、565、572 nm 波長(zhǎng)下測(cè)定濾液的吸光度,結(jié)合Krzywicki[11]的方法分別計(jì)算出氧合肌紅蛋白(Oxymyoglobin,OMb)和高鐵肌紅蛋白(Metmyoglobin,MMb)的相對(duì)含量(%),如下式所示

    式中R1、R2、R3分別為572、565、545 nm 波長(zhǎng)與525 nm波長(zhǎng)處吸光度的比值。

    1.3.6 抗氧化指標(biāo)測(cè)定

    將預(yù)冷的生理鹽水漂洗絨山羊背最長(zhǎng)肌,濾紙吸干表面水分后剪碎肉樣,準(zhǔn)確稱取0.5 g 肉樣,按1∶5 g/mL比例加入生理鹽水,8 000 r/min 冰浴勻漿30 s,混液離心10 min(4 ℃,4 000 r/min)后取上清液,即得到10%的肌肉提取液。采用硫代巴比妥酸法測(cè)定組織中的丙二醛(Malondialdehyde,MDA)含量,采用比色法測(cè)定總抗氧化能力(Total Antioxidant Capacity,T-AOC),超氧化物歧化酶(Superoxide Dismutase,SOD),谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(Glutathione Peroxidas,GSH-Px)和過(guò)氧化氫酶(Catalase、CAT)活力,所用試劑盒均購(gòu)自南京建成生物工程研究所,測(cè)定時(shí)按試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行操作。

    1.3.7 自由基清除率的測(cè)定

    參照Wen 等[12]的方法,并稍作修改。首先配制ABTS+自由基溶液,14 mmol/L 的ABTS 原液與2.45 mmol/L 的過(guò)硫酸鉀等體積混合,在室溫避光條件下反應(yīng)16 h,將ABTS+自由基溶液用磷酸鹽緩沖液(pH 值7.4)稀釋,使其在30 ℃下,734 nm 波長(zhǎng)處的吸光度為0.75±0.02,即得到ABTS+自由基工作液。取上述10%肌肉提取液50 μL加入試管中,再加6 mL ABTS+自由基工作液,空白管用去離子水代替樣品溶液,30 ℃避光水浴6 min 后,在734 nm 波長(zhǎng)處測(cè)定其吸光度。自由基清除率(Radical Scavenging Ability,RSA,%)計(jì)算公式為

    式中A空白為空白溶液吸光度,A 為樣品溶液吸光度。

    1.3.8 基因表達(dá)量的測(cè)定

    稱取約100 mg 肉樣,參照羅玉龍等[13]的方法提取肉樣的總RNA,提取的RNA 通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)RNA 質(zhì)量,并測(cè)定吸光度(A260nm/A280nm)及質(zhì)量濃度。樣品吸光度在1.8-2.2 之間可用于后續(xù)試驗(yàn)。將RNA 樣品稀釋至500 ng/μL 后反轉(zhuǎn)錄為cDNA,反轉(zhuǎn)錄方法參照試劑盒說(shuō)明操作,反轉(zhuǎn)錄后的cDNA 于-80 ℃保存待用。以cDNA 為模板,參照試劑盒說(shuō)明書,采用兩步法測(cè)定SOD、CAT、GSH-Px、LOX 的mRNA 相對(duì)表達(dá)量。以18S 為管家基因,采用2-ΔΔCt法計(jì)算目的基因的相對(duì)表達(dá)量,SOD、CAT、GSH-Px、LOX、18S 引物由上海生工生物工程有限公司設(shè)計(jì)并合成,引物序列如表 3 所示。

    表3 qPCR 引物 Table 3 Primers of qPCR

    PCR 體系為:12.5 μL SYBR?Premix Ex Taq TMII(TLi RNaseH Plus),引物F 和R 各1.0 μL,2.0 μL cDNA模板,8.5 μL RNase Free dH2O。升溫程序?yàn)椋侯A(yù)變性95 ℃、30 s;變性95 ℃、5 s,退火60 ℃、30 s,延伸72 ℃、30 s,35 個(gè)循環(huán);延伸72 ℃、10 min。

    1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

    用SPSS 20.0 軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行ANOVA 統(tǒng)計(jì)分析,采用雙變量相關(guān)分析法(Pearson)對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行相關(guān)性分析,采用Excel 2003 軟件進(jìn)行圖表處理。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同棗粉添加水平對(duì)絨山羊瘤胃降解率及生長(zhǎng)性能的影響

    粗飼料DMD 和CPD 的瘤胃降解率是評(píng)價(jià)飼料可消化性的重要指標(biāo)[14]。由表4 可知,II、III 和IV 組的干物質(zhì)消化率顯著高于對(duì)照組和I 組(P<0.05),并隨著棗粉添加量提高,DMD 值逐漸增加,說(shuō)明棗粉飼料能在瘤胃中被較好的降解利用。與對(duì)照組相比,II、III 和IV 組的平均日采食量(ADFI)和平均日增重(ADG)均顯著增加(P<0.05),并且IV 組的料肉比顯著高于對(duì)照組(P <0.05),由于棗粉中含有多糖、皂甙、黃酮類等活性物質(zhì),能改善飼料的適口性,從而利于白絨山羊生長(zhǎng)性能的提高。

    表4 棗粉對(duì)絨山羊瘤胃降解率及生長(zhǎng)性能的影響 Table 4 Effects of jujube powder on rumen degradation rate and growth performance of Cashmere goat

    2.2 不同棗粉添加水平對(duì)絨山羊肉色的影響

    肉色是評(píng)定肌肉外觀的重要指標(biāo),能反映肉質(zhì)性狀[15]。肉色的指標(biāo)分別是L*、a*和b*值,其中L*代表亮度,與肌肉的光澤度有關(guān);a*代表紅度,肌紅蛋白含量與a*有關(guān),在一定范圍內(nèi)a*值越高,則肉色越好,b*值則代表黃度。由表5 可知,棗粉水平對(duì)絨山羊的肉色有顯著影響,其中對(duì)照組的L*值(32.81)最低,隨著棗粉水平的提高,L*值增加,與對(duì)照組相比,I、II、III、IV 組的L*值分別提高了14.29%、6.49%、17.25%和18.23%;b*值在II 組中最大,顯著高于對(duì)照、I 和IV 組(P<0.05);對(duì)照組和I 組的a*值較低,顯著低于II、III 和IV 組(P <0.05),III 組的a*值最高(20.62),表明棗粉水平為20%時(shí),絨山羊的肉色較好。

    表5 棗粉對(duì)絨山羊肉色的影響 Table 5 Effects of jujube powder on meat color of Cashmere goat

    2.3 不同棗粉添加水平對(duì)絨山羊肉脂質(zhì)氧化程度的影響

    丙二醛(MDA)是組織內(nèi)脂質(zhì)氧化的終產(chǎn)物,其含量越高說(shuō)明機(jī)體產(chǎn)生的過(guò)氧化脂質(zhì)越多,氧化損傷就越嚴(yán)重[16]。由表6 可知,對(duì)照組、I 組的MDA 含量顯著高于其他3 組(P<0.05),并隨著棗粉水平提高,絨山羊肉中的丙二醛含量逐漸降低,在 IV 組中達(dá)到最低(1.788 nmol/mg),但與III 組(2.123 nmol/mg)沒(méi)有顯著差異(P>0.05)。脂質(zhì)氧化能生成氫過(guò)氧化物、共軛二烯烴等,這些氧化產(chǎn)物有介導(dǎo)肌紅蛋白氧化的能力,進(jìn)而影響色澤。隨著MDA 值的降低,a*值增加,說(shuō)明a*值的變化可能是由脂質(zhì)氧化驅(qū)動(dòng)肌紅蛋白氧化導(dǎo)致的[17]。棗粉水平能影響肌肉中丙二醛的含量,有效應(yīng)對(duì)氧化應(yīng)激,抑制組織內(nèi)的氧化,其原因是棗粉中含有豐富的多糖、黃酮類物質(zhì),能及時(shí)清除組織中的自由基,抑制自由基誘導(dǎo)產(chǎn)生的氧化損傷[18]。

    2.4 不同棗粉添加水平對(duì)絨山羊蛋白氧化狀態(tài)的影響

    肌紅蛋白是紅色素的主要成分,其含量及氧化還原狀態(tài)與肉色密切相關(guān)[19]。由表6 可知,肌紅蛋白(Mb)含量隨棗粉水平的提高而增加,對(duì)照組的Mb 含量最低(7.85 mg/g),顯著低于II、III 和IV 組(P<0.05)。III組的Mb 含量最高(11.48 mg/g),顯著高于對(duì)照組、I和II 組(P<0.05),但與IV 組差異不顯著(P>0.05),這與a*值的趨勢(shì)一致,進(jìn)一步印證了III 組肉色最好。棗粉中含有豐富的礦物質(zhì)元素,羊攝食后,這些礦物質(zhì)元素能參與組織中Mb 的合成,增加了Mb 的含量[20]。

    表6 棗粉對(duì)絨山羊肉脂質(zhì)及蛋白氧化狀態(tài)的影響 Table 6 Effects of jujube powder on lipid and myoglobin oxidation of Cashmere goat meat

    肌紅蛋白的氧化還原態(tài)包括鮮紅色的氧合肌紅蛋白(OMb)和褐色的高鐵肌紅蛋白(MMb),肉中OMb 越高,肉色越深,而MMb 含量高對(duì)肉色不利[21]。一般肉中的MMb 高于20%時(shí),肉的紅色逐漸變暗,達(dá)到50%時(shí),肉呈現(xiàn)紅褐色,若高于70%則肉變?yōu)楹稚?,失去銷售價(jià)值。在表6 中,對(duì)照組的OMb 最低(28.32%),顯著低于I、II、III 和IV 組(P<0.05),而MMb 最高(35.14%)。隨著棗粉水平提高,絨山羊肉中的OMb 增加,而MMb減少,III、IV 組中OMb 的相對(duì)含量顯著高于對(duì)照組、I和II 組(P<0.05),而MMb 含量顯著低于對(duì)照組、I和II 組(P<0.05),兩者呈相反的結(jié)果。III 組的OMb和MMb 的相對(duì)含量與IV 組沒(méi)有顯著差異,可以推斷20%棗粉添加量能有效抑制蛋白氧化,防止肉色劣變。肌肉組織的內(nèi)源抗氧化保護(hù)機(jī)制能在一定程度上防止蛋白質(zhì)的氧化,在飼糧中添加棗粉能夠增加抗氧化性能,影響絨山羊肉的OMb 和MMb 相對(duì)含量,進(jìn)而改善肉色。

    2.5 不同棗粉添加水平對(duì)絨山羊抗氧化能力的影響

    動(dòng)物組織中的抗氧化防御體系主要由酶系統(tǒng)和非酶系統(tǒng)組成,酶系統(tǒng)主要包括過(guò)氧化氫酶(Catalase,CAT)、超氧化物歧化酶(Superoxide Dismutase,SOD)和谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(Glutathione Peroxidase,GSH-Px)等抗氧化酶;非酶系統(tǒng)主要包括維生素E、維生素C、胡蘿卜素等抗氧化物質(zhì)[22-23]。T-AOC 能衡量肉中總的抗氧化能力,RSA 則反映組織中所有抗氧化物質(zhì)對(duì)自由基的清除能力。由表7 可知,對(duì)照組中總抗氧化能力(Total Antioxidant Capacity,T-AOC)(0.653 U/mg)和自由基清除率(Radical Scavenging Ability,RSA)值(17.421%)均為最低(P<0.05),隨著棗粉添加量的提高,絨山羊肉中的T-AOC 和RSA 值均顯著增加(P<0.05),IV 組中的T-AOC 和RSA 值最大,試驗(yàn)結(jié)果表明在飼糧中添加棗粉能顯著提高肌肉的抗氧化能力。

    表7 棗粉對(duì)絨山羊肉抗氧化能力的影響 Table 7 Effects of jujube powder on antioxidant capacity of Cashmere goat meat

    在抗氧化酶中,SOD 能清除組織內(nèi)的自由基,產(chǎn)生H2O2和O2;CAT 廣泛存在于動(dòng)物組織中,能繼續(xù)催化H2O2分解成H2O 和O2,清除細(xì)胞中的H2O2;GSH-Px 可直接清除組織和胞液內(nèi)的脂質(zhì)過(guò)氧化物,并與維生素E 協(xié)同作用阻止脂質(zhì)過(guò)氧化[24-25]。由表7 可知,SOD 活力隨棗粉水平的提高而增加,與對(duì)照組相比,I、II、III 和IV 組的SOD活力分別提高了26.08%、32.92%、48.90%和57.01%,均與對(duì)照組差異顯著(P<0.05)。對(duì)照組的CAT 活力最低(7.465 U/mg),與對(duì)照組相比,I、II、III 和IV 組的CAT活力分別提高了12.53%、54.74%、55.10%和26.27%,CAT活力在III 組達(dá)到峰值(11.578 U/mg),顯著高于對(duì)照組、I 和IV 組(P<0.05),這表明飼糧添加棗粉能提高肌肉的CAT 活力,但添加量并不是越高越好。隨著棗粉水平的提高,肌肉中GSH-Px 活力增加,與對(duì)照組相比,I、II、III和IV組的GSH-Px活力分別提高了47.21%、15.73%、77.30%和86.62%,IV 組的GSH-Px 活力最高,顯著高于對(duì)照組、I、和II 組(P<0.05),但與III 組差異不顯著(P >0.05)。綜合分析,III 和IV 組的抗氧化酶活力最高,說(shuō)明20%和25%棗粉添加量能有效提高絨山羊肉的抗氧化酶活力,但兩者部分指標(biāo)差異不顯著,因此可選20%棗粉添加量。

    2.6 不同棗粉添加水平對(duì)絨山羊相關(guān)酶基因的影響

    調(diào)控抗氧化酶的基因包括SOD、CAT 和GSH-Px 基因,這些基因的表達(dá)量的高低能反映抗氧化酶的活性[26];而脂氧合酶(Lipoxygenase,LOX)基因能調(diào)控LOX酶活性,并反映肉中MDA 含量。由表8 可知,對(duì)照組的SOD、CAT 和GSH-Px 基因表達(dá)量均最低(P<0.05),隨著棗粉水平的提高,抗氧化酶的基因表達(dá)量增加,SOD 和GSH-Px 基因表達(dá)量增加趨勢(shì)一致。III、IV 組的SOD、GSH-Px 基因表達(dá)量顯著高于對(duì)照、I 和II 組(P<0.05);II、III 和IV 組的CAT 基因表達(dá)量顯著高于對(duì)照組和I 組(P<0.05),這從分子水平上驗(yàn)證了飼糧中添加棗粉能提高絨山羊肉的的抗氧化能力。在肌肉組織中,LOX 催化生物膜中的不飽和脂肪酸發(fā)生氧化反應(yīng),生成脂質(zhì)過(guò)氧化物后分解形成小分子物質(zhì),LOX 基因表達(dá)量越高,脂質(zhì)氧化程度越高[27]。由表8可知,對(duì)照組和I 組的LOX 基因表達(dá)量顯著高于II、III 和IV 組(P<0.05),在棗粉水平為20%和25%時(shí),絨山羊肉中LOX 基因表達(dá)量最低(1.013 和1.083),說(shuō)明棗粉抑制了LOX 基因的表達(dá),改善了絨山羊肉的抗氧化性能。

    表8 棗粉對(duì)絨山羊相關(guān)酶基因表達(dá)量的影響 Table 8 Effects of jujube powder on related gene expression of Cashmere goat meat

    2.7 抗氧化酶與酶基因表達(dá)量之間的相關(guān)性分析

    絨山羊肉中抗氧化酶與酶基因的相關(guān)性分析見(jiàn)表9,SOD 基因表達(dá)量與SOD 酶活、CAT 酶活、GSH-Px 酶活之間呈極顯著正相關(guān)(P<0.01),與MDA 呈極顯著負(fù)相關(guān)(P<0.01),說(shuō)明SOD 基因的高表達(dá)能提高SOD 酶活、CAT 酶活和GSH-Px 酶活,并抑制了組織中的MDA 含量。CAT 基因表達(dá)量與CAT 酶之間呈顯著正相關(guān)(P <0.05),CAT 基因表達(dá)活躍時(shí),CAT 酶活力隨著增加,這更好地解釋了肌肉中CAT 酶的活性依賴于基因表達(dá)調(diào)控[28]。GSH-Px基因表達(dá)量與SOD 酶活、GSH-Px 酶活之間呈極顯著正相關(guān)(P<0.01)。在本研究中,棗粉能顯著提高絨山羊肌肉中SOD、CAT 和GSH-Px 的基因表達(dá)量,并提高了抗氧化酶的活性,進(jìn)而提高肌肉的抗氧化能力,這可能與棗粉中較高的多糖、黃酮類物質(zhì)有關(guān)[29]。LOX 基因表達(dá)量與MDA呈極顯著正相關(guān)(P<0.01),與SOD 酶活、CAT 酶活和GSH-Px 酶活之間呈極顯著負(fù)相關(guān)(P<0.01)。

    2.8 絨山羊肉中抗氧化指標(biāo)的相關(guān)性分析

    由表10 可知,絨山羊肉中SOD 酶與a*值呈顯著正相關(guān)(P<0.05),Mb 與T-AOC、CAT 酶呈極顯著正相關(guān)(P<0.01),OMb 與RSA、GSH-Px 呈極顯著正相關(guān)(P<0.01),說(shuō)明肉中的抗氧化酶能夠影響肉的色澤,組織的抗氧化系統(tǒng)可協(xié)同作用清除自由基,影響Mb 的氧化狀態(tài),使OMb 的含量處于主導(dǎo)地位,進(jìn)而改善肉色[30]。

    表9 絨山羊肉中抗氧化酶與酶基因的相關(guān)性分析 Table 9 Correlation analysis between antioxidant enzyme and related gene of Cashmere goat meat

    表10 絨山羊肉中抗氧化指標(biāo)的相關(guān)性分析 Table 10 Correlation analysis of antioxidant parameters for Cashmere goat meat

    MDA 與MMb 之間呈顯著正相關(guān)(P<0.05),組織中的MDA 含量高時(shí),能促進(jìn)OMb 向MMb 轉(zhuǎn)化,破壞肉色穩(wěn)定性,使羊肉肉色發(fā)生劣變[16]。CAT 酶與SOD 酶呈顯著正相關(guān)(P<0.05),與T-AOC 呈極顯著正相關(guān)(P <0.01),GSH-Px 酶活力與RSA 呈極顯著正相關(guān)(P <0.01),說(shuō)明抗氧化酶之間能協(xié)同作用,并且組織中的非酶抗氧化物質(zhì)能促進(jìn)酶活力的提高,提高絨山羊肉的抗氧化能力[31]??軡萚32]發(fā)現(xiàn)添加二甲基甘氨酸鈉后,雞肉中的SOD 酶、GSH-Px 酶活力和T-AOC 值均增加,這與本試驗(yàn)的研究結(jié)果一致。羊肉中的MDA 含量與a*值呈顯著負(fù)相關(guān)(P<0.05),與OMb 值呈極顯著負(fù)相關(guān)(P<0.01),說(shuō)明MDA 含量高能加速OMb 的氧化,促進(jìn)MMb 含量生成,并造成a*值下降;本試驗(yàn)結(jié)果表明,T-AOC、CAT 酶與MMb之間呈極顯著負(fù)相關(guān)(P<0.01);Xiao 等[33]和Zhou等[34]研究表明組織中抗氧化系統(tǒng)能抑制肌紅蛋白氧化,降低MMb 的生成。本研究未對(duì)血液指標(biāo)進(jìn)行討論,從肌肉組織角度可以推斷飼糧中添加棗粉能通過(guò)增強(qiáng)山羊的抗氧化系統(tǒng)抑制肌紅蛋白氧化來(lái)改善肉色;RSA、CAT 和GSH-Px 酶與MDA 呈顯著負(fù)相關(guān)(P<0.05),SOD 酶與MDA 呈極顯著負(fù)相關(guān)(P <0.01),機(jī)體中的抗氧化系統(tǒng)能發(fā)揮抗氧化作用,清除組織中的自由基,抑制脂質(zhì)氧化,因此在飼糧中添加棗粉能夠改善抗氧化性能,穩(wěn)定肉色。

    3 結(jié) 論

    本研究通過(guò)飼糧中的不同棗粉水平(0,10%,15%,20%和25%)研究了陜北白絨山羊肉的抗氧化性能,具體如下:

    1)棗粉提高了白絨山羊的瘤胃降解率和生長(zhǎng)性能,其中15%、20%和25%添加組的干物質(zhì)消化率、平均日采食量和平均日增重均顯著高于對(duì)照組(P<0.05)。

    2)棗粉改善了羊肉的肉色,20%棗粉水平時(shí),羊肉的紅度(a*)值(20.63)、肌紅蛋白(Myoglobin,Mb)含量(11.48 mg/g)和氧合肌紅蛋白(Oxymyoglobin,OMb)(43.28%)相對(duì)含量最高,高鐵肌紅蛋白(Metmyoglobin,MMb)(25.12%)相對(duì)含量最低,絨山羊肉的蛋白氧化程度低。

    3)飼糧中添加棗粉能顯著提高肌肉的抗氧化能力,20%和25%添加組的總抗氧化能力(Total Antioxidant Capacity,T-AOC)和自由基清除率(Radical Scavenging Ability,RSA)值顯著高于對(duì)照組(P <0.05),20%添加組的超氧化物歧化酶(Superoxide Dismutase,SOD)、過(guò)氧化氫酶(Catalase,CAT)和谷胱甘肽過(guò)氧化物酶活(Glutathione Peroxidase,GSH-Px)均顯著高于對(duì)照組(P <0.05);20%添加組的SOD、CAT 和GSH-Px 基因表達(dá)量顯著高于對(duì)照組(P<0.05)。棗粉水平為20%時(shí),抗氧化效果最好。綜合上述指標(biāo),推薦20%為適宜的棗粉添加量。

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