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    16S rRNA測序探討嶺南濕證人群腸道菌群結(jié)構(gòu)變化

    2020-07-02 09:28:08宋佳堉叢夢雨巫柳岑王術(shù)玲
    中醫(yī)藥學(xué)報(bào) 2020年3期
    關(guān)鍵詞:物種差異分析

    宋佳堉,叢夢雨,巫柳岑,王術(shù)玲

    (廣州中醫(yī)藥大學(xué)中藥學(xué)院,廣東 廣州 510006)

    廣東地處嶺南,氣候炎熱濕溫,四季長夏冬暖,吳又可《溫疫論》 中曾道:“南方卑濕之地,更遇久雨淋漓,時(shí)有感濕者。”清代廣東名醫(yī)何夢瑤于《醫(yī)碥·中濕》道:“嶺南地卑土薄,土薄則陽氣易泄,人居其地,腠理汗出,氣多上壅。地卑則潮濕特盛,晨夕昏霧,春夏淫雨,人多中濕……?!睅X南地區(qū)人們喜澡善泳,喜食生猛海鮮,長期濕悶的氣候和當(dāng)?shù)氐纳铒嬍沉?xí)俗影響著人們的脾胃運(yùn)化功能[1-2]。濕邪綿綿久客體內(nèi),易困脾胃,遂成濕證體[3-4]。尤其每年三、四月份陰雨綿綿,濕證癥狀最為明顯,起床難,沒精神,身困體乏,納呆,四肢酸沉,大便粘滯不成形,舌苔白厚、黃膩、邊有齒痕[5]。廣東人習(xí)用具有祛濕、健脾、降火、清熱等功效的中藥煲湯或煮涼茶以緩解癥狀,調(diào)理濕證體質(zhì),比如葛根鯽魚湯、木棉花糖水等。根據(jù)中醫(yī)理論,濕證病因重在脾胃,胃腸道功能是濕證的主要病機(jī)[6],大便溏薄或?yàn)a泄是濕證體質(zhì)的重要表現(xiàn),而大便形狀與腸道菌有直接關(guān)系,因此推測濕證體質(zhì)人群的腸道菌群結(jié)構(gòu)可能存在一定的破壞[7],故本文通過招募志愿者,利用16S rRNA擴(kuò)增子測序[8-9],研究濕證體質(zhì)人群的腸道菌群組成。

    1 資料與方法

    1.1 一般資料

    本研究采用問卷調(diào)查的方式,于2018年3月—2018年4月召集志愿者53名,性別不限,年齡19~25歲,BMI 19~26 kg/m2。志愿者經(jīng)廣州中醫(yī)藥大學(xué)黎同明、高潔兩位教授的診斷并結(jié)合調(diào)查問卷的內(nèi)容,分成健康對照組和濕證組。濕證人群的納入標(biāo)準(zhǔn):主證為大便溏而不爽,身重肢倦[1,10]。正常對照組應(yīng)無上述癥狀及其他任何不適。排除標(biāo)準(zhǔn):近3個(gè)月內(nèi)使用過抗生素;近1個(gè)月內(nèi)服用過益生菌制劑(包括酸奶);患有消化道疾病。經(jīng)過診斷,符合標(biāo)準(zhǔn)者共29名,濕證組(簡稱M組)16名和正常組(簡稱C組)13名。本研究符合世界衛(wèi)生組織《涉及人的生物醫(yī)學(xué)研究國際倫理準(zhǔn)則》和世界醫(yī)學(xué)協(xié)會最新修訂的《赫爾辛基宣言》的相關(guān)規(guī)定。

    1.2 糞便樣本的收集

    志愿者按日常習(xí)慣排便后,立刻收集于冷凍保藏管中,置于醫(yī)用冰盒運(yùn)回實(shí)驗(yàn)室,放入-80℃冰箱待制樣送檢。收回樣本29個(gè),其中編號為C7、C9、M4、M8、M9、M11、M13的志愿者采樣時(shí)操作不規(guī)范,故棄去,共剩余有效樣本22個(gè)。

    1.3 樣品檢測與庫的建立

    提取糞便樣本總DNA,使用Qubit法對樣品濃度進(jìn)行精確定量檢測,合格后需建立文庫,構(gòu)建目的擴(kuò)增子(Amplicon)片段并回收。使用融合引物建庫方法,合成融合了目標(biāo)序列引物和上機(jī)接頭、index等序列的引物,通過一步PCR擴(kuò)增直接完成建庫,使用Agencourt AMPure XP磁珠進(jìn)行純化并溶于Elution Buffer。樣品的合格檢測,總DNA提取質(zhì)控,修飾末端融合引物并PCR擴(kuò)增,測序文庫構(gòu)建及 Illumina Miseq 平臺高通量測序由深圳華大基因科技服務(wù)有限公司進(jìn)行。

    1.4 數(shù)據(jù)分析

    利用Illumina Miseq平臺對腸道菌群DNA進(jìn)行高通量測序;上機(jī)數(shù)據(jù)經(jīng)過數(shù)據(jù)過濾,濾除低質(zhì)量的reads,剩余高質(zhì)量的Clean data方可用于后期分析;通過reads之間的Overlap關(guān)系將reads拼接成Tags;在給定的相似度下將Tags聚成OTU,然后通過OTU與數(shù)據(jù)庫比對,對OTU進(jìn)行物種注釋;基于OTU和物種注釋結(jié)果進(jìn)行樣品物種復(fù)雜度分析以及組間物種差異分析。通過Alpha Diversity(α多樣性分析),Beta Diversity(β多樣性分析),等數(shù)據(jù)分析手段,最終得到糞便菌群的物種豐度信息。

    2 結(jié)果

    2.1 樣本測序數(shù)據(jù)分析

    本項(xiàng)目入選的研究樣本共22個(gè),其中對照組(Control)和濕證組各11個(gè)樣本。高通量焦磷酸測序共產(chǎn)生1 374 547條有效序列,其中對照組11個(gè)樣本獲得688 061條有效序列(平均每個(gè)樣品序列數(shù)為62 551±421);11個(gè)濕證組樣本共獲得686 486條有效序列(平均每個(gè)樣品序列數(shù)為62 408±396)。[11]通過分析不同樣本OTU組成(97%相似性),可以反映樣本的差異和距離。如果兩個(gè)樣品距離越近,則表示這兩個(gè)樣品的組成越相似、差異越小。不同處理或不同環(huán)境間的樣本可能表現(xiàn)出分散和聚集的分布情況,從而可以判斷相同條件的樣本組成是否具有相似性。圖1為基于OTU豐度的PLS-DA 分析,可看出濕證組和對照組的組成差異較大。

    圖1 基于OTU豐度的PLS-DA 分析圖

    2.2 腸道微生物 α多樣性分析——微生物群落結(jié)構(gòu)分析

    利用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)(雙側(cè))對所有樣本有效序列的群落豐富度指數(shù)(species richness)和群落多樣性指數(shù)(species diversity)進(jìn)行比較分析[12],包括:Observed species、ace、 Chao、Shannon和Simpson等5個(gè)指數(shù)。如表1所示,反映群落豐富度的Observed species,ace和Chao指數(shù)在濕證組顯著性高于對照組(P<0.05);而反映群落多樣性的Shannon和Simpson指數(shù)在濕證組與對照組相比無差異。以上結(jié)果提示,濕證組比正常對照組的腸道菌群群落豐富度發(fā)生了顯著變化。

    表1 濕證組和健康對照組α多樣性參數(shù)比較

    注:*P<0.05,有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義

    2.3 腸道微生物 β 多樣性分析

    β多樣性分析(β diversity)是用來比較物種多樣性方面存在的差異大小,本文采用unweighted UniFrac指數(shù)衡量β多樣性,利用該指數(shù)得到的分析圖中距離越大表示樣本間的差異越大。如圖2中的主坐標(biāo)分析PCoA圖所示,除個(gè)別樣本存在偏差,濕證組和健康對照組基本呈現(xiàn)在不同區(qū)域。

    圖2 β多樣性分析(物種多樣性)

    2.4 門水平腸道菌群序列分類分析

    腸道菌群大多數(shù)序列隸屬于Firmicutes(厚壁菌門)及Bacteroidetes(擬桿菌門),這兩種菌門序列大約占總序列數(shù)90%以上,是腸道菌群中的絕對優(yōu)勢菌群。本研究中,在門水平上,濕證組與健康對照組之間,腸道菌群物種豐度較高的擬桿菌門(Bacteroidetes,49.94% vs 45.09%)、厚壁菌門(Firmicutes,42.16% vs 45.75%)、變形菌門(Proteobacteria,6.87% vs 6.76%)、藍(lán)藻菌門(Cyanobacteria,0.12% vs 0.05%)、軟壁菌門(Tenericutes,0.04% vs 0.02%)、放線菌門(Actinobacteria,0.70% vs 1.10%)均未見顯著性差異。而與對照組相比,差異最明顯的是梭桿菌門(Fusobacteria,0.12% vs 0.89%) 濕證組降低了86.5%(P<0.05)。見圖3。

    圖3 門水平物種差異圖

    2.5 科水平腸道菌群物種組成分類分析

    在科水平上,與對照組相比,差異最明顯的是普雷沃菌科(Paraprevotellaceae,2.08% vs 0.03%),濕證組升高了近70倍(P<0.05);此外,韋榮球菌科(Erysipelotrichaceae,0.25% vs 0.95%)、雙歧桿菌科(Bifidobacteriaceae,0.56% vs 1.04%),濕證組分別下降了73.95%、46.34%(P<0.05)。見圖4。

    2.6 屬水平腸道菌群物種組成分類分析

    濕證組與對照組相比共有6個(gè)屬差異顯著,分別是梭桿菌屬(Fusobacterium,0.07% vs 1.13 %),雙歧桿菌屬(Bifidobacterium,0.56 % vs 1.04 %),濕證組分別降低了93.76%、46.40%(P<0.05);薩特氏菌屬(Sutterella,1.39% vs 0.82%),顫螺旋菌屬(Oscillospira,1.01 % vs 0.64 %),糞球菌屬(Coprococcus,1.93% vs 0.70 %),丁酸亞胺菌屬(Butyricimonas,0.22% vs 0.07%),濕證組分別升高了69.08%、58.19%、176.59%、200.78%(P<0.05)。見圖5。

    圖4 科水平物種差異圖

    圖5 屬水平物種差異圖

    2.7 種水平上腸道菌群組成分析

    與對照組相比,濕證組中的產(chǎn)蛋白酶嗜熱細(xì)菌(Anoxybacillus kestanbolensis)豐度顯著降低(P<0.05);而口腔毛絨厭氧桿菌菌(Lachnoanaerobaculum orale)、嬰兒鏈球菌菌(Streptococcus infantis)、瘤胃乳桿菌(Lactobacillus ruminis)、產(chǎn)黑普氏菌(Prevotella melaninogenica)、淡黃奈瑟氏菌(Neisseria subflava)、牙髓卟啉單胞菌(Porphyromonas endodontalis)、粘滑羅氏菌(Rothia mucilaginosa)、齡齒羅氏菌(Rothia dentocariosa)在濕證組的豐度顯著升高(P<0.05)。見圖6。

    圖6 種水平物種差異圖

    2.8 PICRUSt腸道菌群功能預(yù)測分析

    利用PICRUSt軟件對16S測序樣本中可能存在的各級KEGG通路及豐度值進(jìn)行預(yù)測,共富集到81個(gè)功能通路[13],其中濕證組有9條通路相對于正常對照組差異顯著(P<0.05),見圖7,分別是:半胱氨酸和甲硫氨酸代謝(cysteine and mathionine metabolism),能量代謝(energy metabolism),葉酸生物合成(folate biosynthesis),半乳糖代謝(galactose metabolism),甘油磷脂代謝(glycerophospholipid metabolism),脂多糖生物合成蛋白(lipopolysaccharide biosynthesis proteins),氮代謝(nitrogen metabolism),氧化磷酸化作用(oxidative phosphorylation),五磷酸途徑(pentose phosphate pathway)。說明濕證體質(zhì)引起的各種不適(如大便不爽,四肢酸沉等)可能與這些通路的功能異常有關(guān)。

    圖7 差異通路圖

    3 討論

    本文對比了濕證體質(zhì)志愿者與健康對照志愿者的腸道菌群組成,發(fā)現(xiàn)整體指標(biāo)上,濕證組的群落豐富度指數(shù)與健康對照組顯著不同,而群落多樣性指數(shù)沒有差異,提示濕證組的腸道菌群中沒有形成新的菌種,只是有些細(xì)菌分布比例發(fā)生顯著改變。具體表現(xiàn)為濕證組的梭桿菌門(Fusobacteria)、韋榮球菌科(Erysipelotrichaceae)、雙歧桿菌科(Bifidobacteriaceae)顯著降低,普雷沃菌科(Paraprevotellaceae)顯著升高;另外,還發(fā)現(xiàn)濕證組有6個(gè)屬、9個(gè)種的細(xì)菌分布與健康對照組顯著不同。此外我們利用PICRUSt軟件預(yù)測到這些腸道菌群的改變能引起11個(gè)通路的功能改變,提示這些功能的改變可能是濕質(zhì)體質(zhì)癥狀表現(xiàn)的誘因。

    老火靚湯和涼茶是廣東最有特色的兩張名片,是千百年來人類與大自然抗 爭的結(jié)果,利用一些藥食同源的中藥材調(diào)理人體以適應(yīng)環(huán)境、氣候等對健康的影響。歷來中醫(yī)古籍記載嶺南多疫瘴癘氣,這與濕溫的氣候?qū)е驴諝庵形⑸锓植枷啾缺狈揭嘤嘘P(guān)[14]。嶺南濕熱蘊(yùn)蒸的氣候特點(diǎn)使長久生活于此的居民容易形成濕證體質(zhì),最常見的表現(xiàn)之一就是大便粘滯不爽,本文通過對濕證體質(zhì)人群的腸道菌進(jìn)行基因測序,發(fā)現(xiàn)與健康對照組相比,濕證組的腸道菌群結(jié)構(gòu)存在顯著差異。而廣東人習(xí)用的煲湯藥材或凉茶或許是通過調(diào)節(jié)腸道微生態(tài)而改善濕證的癥狀[15],這些推測仍需更深入的研究。

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