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    蠅蛆油對急性皮膚創(chuàng)傷感染模型大鼠愈合的影響及機制研究Δ

    2018-06-12 08:18:16韓躍東張超張松張衍國空軍軍醫(yī)大學(xué)唐都醫(yī)院皮膚科西安7100西安市第三醫(yī)院消化內(nèi)科西安71008空軍軍醫(yī)大學(xué)唐都醫(yī)院藥劑科西安7100
    中國藥房 2018年11期
    關(guān)鍵詞:油組蠅蛆溶菌酶

    韓躍東,張超,張松,張衍國(1.空軍軍醫(yī)大學(xué)唐都醫(yī)院皮膚科,西安7100;.西安市第三醫(yī)院消化內(nèi)科,西安 71008;.空軍軍醫(yī)大學(xué)唐都醫(yī)院藥劑科,西安 7100)

    皮膚創(chuàng)面愈合是一個極其復(fù)雜的生物學(xué)過程,大致包括細(xì)胞增殖、炎癥反應(yīng)、創(chuàng)面收縮、膠原生成等過程[1]。在創(chuàng)面愈合過程中,創(chuàng)面感染會使愈合延遲,嚴(yán)重時還會造成嚴(yán)重的菌血癥,威脅患者生命[2]。因此,在有效控制感染的同時促進創(chuàng)面愈合,是治療皮膚創(chuàng)傷的重要環(huán)節(jié)。近年來,臨床常用抗生素控制皮膚創(chuàng)傷感染,但抗生素不僅易引起過敏性休克,還有可能引起二重感染,此外耐藥菌的產(chǎn)生也嚴(yán)重困擾著臨床醫(yī)師和藥師[3]。因此,開發(fā)兼具抗感染和促愈合的新型藥物具有重要意義。

    蠅蛆又名五谷蟲,是麗蠅科絲光綠蠅和大頭金蠅的幼蟲,為我國傳統(tǒng)中藥材,其體內(nèi)具有豐富的蛋白質(zhì)、脂肪酸、礦物質(zhì)、維生素和氨基酸類成分,營養(yǎng)價值高于魚類,可用于某些氨基酸缺乏癥或其他多種疾病的防治[4-5]。研究發(fā)現(xiàn),蠅蛆油可抑制炎癥反應(yīng),對綠膿桿菌和金黃色葡萄球菌均具有較強的抑菌作用,對深Ⅱ度燙傷模型小鼠及鹽酸引起的化學(xué)性損傷和燒傷具有顯著的保護作用[6-7]。但是,目前還未見關(guān)于蠅蛆油對急性皮膚創(chuàng)傷感染的保護作用及作用機制的文獻報道。故本研究通過對大鼠復(fù)制創(chuàng)傷感染模型,研究蠅蛆油對急性皮膚創(chuàng)傷感染的保護作用及機制,為蠅蛆油的進一步開發(fā)應(yīng)用提供參考。

    1 材料

    1.1 儀器

    Infinite F50全自動酶標(biāo)儀(瑞士Tecan公司);Chem Doc XRS+凝膠成像系統(tǒng)、Mini Protein Tetra Cell蛋白電泳槽(美國Bio Rad公司)。

    1.2 試劑

    京萬紅(天津達仁堂京萬紅藥業(yè)有限公司,批號:211761,規(guī)格:20 g/支);羥脯氨酸(批號:20170219)、大鼠溶菌酶(批號:20170122)、腫瘤壞死因子α(TNF-α,批號:20170214)和白細(xì)胞介素6(IL-6,批號:20170218)酶聯(lián)免疫吸附(ELISA)測定試劑盒均購自南京建成生物工程有限公司;核轉(zhuǎn)錄因子κB p65(NF-κB p65)、磷酸化NF-κB 抑制因子(p-IκB-α)、增殖細(xì)胞核抗原(PCNA)和β-肌動蛋白(β-actin)抗體均購自美國 Cell Signaling Technology公司;羊抗兔二抗(博士德生物有限公司);石油醚(國藥集團化學(xué)試劑有限公司,批號:20160729,分析純);氯胺酮注射液(美國Sigma公司,批號:H35020148,規(guī)格:0.1 g/2 mL)。

    1.3 動物

    清潔級SD大鼠280只,♀♂各半,體質(zhì)量180~220 g,購自空軍軍醫(yī)大學(xué)動物實驗中心[動物生產(chǎn)合格證號:SCKX(軍)2007-007號]。購入后將大鼠飼養(yǎng)于為室溫為(25±2)℃、濕度為65%~75%的環(huán)境中,普通飼料喂養(yǎng)。4~5日齡蠅蛆幼蟲由西安福如林生物技術(shù)有限公司提供。

    1.4 菌株

    金黃色葡萄球菌由唐都醫(yī)院檢驗科提供。

    2 方法

    2.1 蠅蛆油的提取

    取4~5日齡蠅蛆幼蟲,精密稱量10 g,充分碾磨后,用100 mL石油醚浸泡,每次6 h,重復(fù)3次,合并浸提液,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀在低溫下(30℃)減壓揮干石油醚,在真空干燥器中干燥至恒質(zhì)量,蠅蛆油的得率為12.7%。

    2.2 分組、造模與給藥

    將大鼠隨機分為正常組(創(chuàng)傷表面涂生理鹽水)、模型組(創(chuàng)傷表面涂生理鹽水)、蠅蛆油組(測試藥物組)、京萬紅組(陽性對照組),每組70只。除正常組外,其余各組大鼠均參考文獻[8]方法復(fù)制皮膚急性創(chuàng)傷感染模型:腹腔注射氯胺酮(100 mg/kg)麻醉大鼠,用脫毛膏去除背部毛發(fā),洗凈后,用碘酒給皮膚消毒,切開長為1.5 cm傷口,深至皮下。在傷口處涂上1 mL(1.2×109mL-1)的金黃色葡萄球菌懸液,每天上午涂1次,連續(xù)3 d。參考國家衛(wèi)生部醫(yī)改司醫(yī)院感染檢測小組制訂的醫(yī)院感染診斷標(biāo)準(zhǔn)[9],以傷口出現(xiàn)紅腫熱痛并有膿液即提示造模成功。造模成功后,每天9:00和17:00各給藥1次,給藥劑量為0.3 mL/100 g(給藥劑量參考文獻[6]報道的給藥劑量以及前期預(yù)實驗結(jié)果確定),連續(xù)給藥15 d。

    2.3 創(chuàng)面大體情況觀察

    每日觀察用藥后大鼠皮膚創(chuàng)面情況,包括是否水腫、有無紅腫、有無瘢痕、表面是否干燥平整,記錄愈合時間。皮膚愈合判斷標(biāo)準(zhǔn)[8]:皮膚完整,無水腫、無膿液滲出。

    2.4 創(chuàng)面含水量及組織中羥脯氨酸含量測定

    給藥1、2、4、6、8 d后,每個時間點每組選10只大鼠,收集背部皮膚。采用干濕比法測定給藥2、4、6、8 d后大鼠創(chuàng)面含水量:取創(chuàng)面組織,清除皮下脂肪組織,精確稱量,記為濕質(zhì)量;剪碎組織,在烘箱(100℃)中烘烤24 h,精確稱量,記為干質(zhì)量,創(chuàng)面含水量=(濕質(zhì)量-干質(zhì)量)/濕質(zhì)量×100%。取干燥后的皮膚組織(給藥1、2、4、6、8 d后的大鼠皮膚組織)7 mg,用6 mol/L的HCl溶液在120℃下水解15 h,用去離子水稀釋裂解物,并用NaOH(1 mol/L)溶液中和,將裂解物以1 000×g離心15 min,收集上清液,用于羥脯氨酸含量測定,具體操作依照試劑盒說明書進行。

    2.5 血清中溶菌酶含量測定

    末次給藥結(jié)束2 h后,每組取10只大鼠,麻醉后收集血液,在室溫下將血液以1 000×g離心10 min,收集血清;每只大鼠取20 μL血清,按照試劑盒說明書操作,應(yīng)用雙抗體夾心法測定血清中溶菌酶含量。待反應(yīng)結(jié)束后,采用全自動酶標(biāo)儀在450 nm波長下測定各樣品的吸光度(OD)值,通過標(biāo)準(zhǔn)曲線計算樣品中大鼠溶菌酶含量。

    2.6 血清中TNF-α、IL-6含量測定

    末次給藥結(jié)束2 h后,每組取10只大鼠,收集大鼠血液,將血液以1 500×g離心10 min,收集上清液。按照相應(yīng)試劑盒說明書操作,測定各組大鼠血清中TNF-α和IL-6含量。

    2.7 創(chuàng)面組織中NF-κB p65、p-I-κB蛋白表達測定

    將大鼠取血后處死,取50 mg皮膚組織,加入組織蛋白勻漿液500 μL,勻漿至無組織塊,冰浴15 min,在4℃條件下以1 500×g離心5 min,收集上清。然后按照說明書要求,加入細(xì)胞漿蛋白提取液,冰浴10~15 min,以10 000×g離心10 min,收集上清液,即為細(xì)胞漿蛋白樣品液。沉淀中加入細(xì)胞核蛋白提取液,冰浴10~15 min,以10 000×g離心10 min后,收集上清液,即為細(xì)胞核蛋白樣品液。用二喹啉甲酸(BCA)法對細(xì)胞漿和細(xì)胞核蛋白進行定量,然后置于-70℃保存,備用。蛋白變性后,分別取等量蛋白(30 μg)上樣,十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)分離,半干轉(zhuǎn)至聚偏二氟乙烯(PVDF)膜上,脫脂奶粉封閉后,用一抗(NF-κB p65、I-κB)孵育過夜,洗膜緩沖液TBST漂洗3遍后,加入羊抗兔二抗(1∶5 000),孵育1 h。TBST漂洗后,采用化學(xué)發(fā)光超敏顯色試劑盒顯影、拍照。核蛋白檢測以PCNA(1∶1 000)為內(nèi)參,細(xì)胞漿蛋白檢測以β-actin(1∶1 000)為內(nèi)參。采用Quantity one軟件進行條帶灰度值分析,以目的蛋白條帶和內(nèi)參(PCNA或β-actin)條帶灰度值的比值表示目的蛋白的相對表達水平,并將正常組的比值設(shè)置為1。

    2.8 統(tǒng)計學(xué)方法

    采用SPSS 18.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)分析。結(jié)果以±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗。P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    3 結(jié)果

    3.1 創(chuàng)面愈合的觀察結(jié)果

    與正常組比較,模型組大鼠創(chuàng)面愈合緩慢,愈合率較低,愈合時間較長[(14.3±2.1)d]。與模型組比較,蠅蛆油組和京萬紅組大鼠創(chuàng)面愈合率顯著增加,愈合時間顯著縮短[分別為(8.2±2.3)、(9.5±2.5)d](P<0.01),創(chuàng)面平整光滑、疤痕面積較小、整潔度較好。

    3.2 創(chuàng)面含水量的測定結(jié)果

    與正常組比較,模型組大鼠在給藥2、4、6、8 d后創(chuàng)面含水量均顯著增加(P<0.01);與模型組比較,蠅蛆油組和京萬紅組大鼠在給藥2、4、6、8 d后創(chuàng)面含水量均顯著減少(P<0.01)。各組大鼠創(chuàng)面含水量測定結(jié)果見表1。

    表1 各組大鼠創(chuàng)面含水量測定結(jié)果(±s,n=10,%%)Tab 1 Content determination of water in wound of rats in each group(±s,n=10,%%)

    表1 各組大鼠創(chuàng)面含水量測定結(jié)果(±s,n=10,%%)Tab 1 Content determination of water in wound of rats in each group(±s,n=10,%%)

    注:與正常組比較,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01Note:vs.normal group,**P<0.01;vs.model group,##P<0.01

    組別正常組模型組蠅蛆油組京萬紅組8 d 38.7±2.2 66.8±4.2**43.5±3.9##46.3±4.6##2 d 39.5±2.3 85.3±3.6**73.5±4.8##74.3±5.5##4 d 38.1±2.6 78.2±4.1**64.5±5.1##65.3±5.7##6 d 40.3±1.9 70.7±4.6**57.9±4.4##59.1±4.7##

    3.3 創(chuàng)面組織中羥脯氨酸含量的測定結(jié)果

    與正常組比較,模型組大鼠創(chuàng)面組織中羥脯氨酸含量隨著時間的增加而增加,在給藥4 d后差異開始有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05或P<0.01)。與模型組比較,在給藥后2、4、6、8 d后蠅蛆油組和京萬紅組大鼠創(chuàng)面組織中羥脯氨酸含量顯著增加(P<0.01),提示蠅蛆油可以促進創(chuàng)面膠原合成,增加創(chuàng)面愈合能力。各組大鼠創(chuàng)面組織中羥脯氨酸含量測定結(jié)果見表2。

    表2 各組大鼠創(chuàng)面組織中羥脯氨酸含量測定結(jié)果(±s,n=10,μg/mg)Tab 2 Content determination of hydroxyproline in wound of rats in each group(x ± s,n=10,μg/mg)

    表2 各組大鼠創(chuàng)面組織中羥脯氨酸含量測定結(jié)果(±s,n=10,μg/mg)Tab 2 Content determination of hydroxyproline in wound of rats in each group(x ± s,n=10,μg/mg)

    注:與正常組比較,*P<0.05,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01Note:vs.normal group,*P<0.05,**P<0.01;vs.model group,##P<0.01

    組別正常組模型組蠅蛆油組京萬紅組8 d 0.28±0.06 0.55±0.05**1.96±0.18##1.93±0.19##1 d 0.22±0.05 0.26±0.07 0.31±0.04 0.29±0.05 2 d 0.27±0.07 0.33±0.03 0.91±0.08##0.84±0.07##4 d 0.26±0.04 0.41±0.05*1.42±0.15##1.34±0.13##6 d 0.31±0.05 0.49±0.07*1.82±0.11##1.74±0.12##

    3.4 血清中溶菌酶含量的測定結(jié)果

    與正常組比較,模型組大鼠血清中溶菌酶含量顯著增加(P<0.01)。與模型組比較,蠅蛆油組和京萬紅組大鼠血清中溶菌酶含量顯著減少(P<0.01),表明蠅蛆油可以促進創(chuàng)面膠原合成,增強創(chuàng)面愈合能力。各組大鼠血清中溶菌酶含量測定結(jié)果見表3。

    表3 各組大鼠血清中溶菌酶含量測定結(jié)果(±s,n=10)Tab 3 Content determination of lysozyme in serum of rats in each group(±s,n=10)

    表3 各組大鼠血清中溶菌酶含量測定結(jié)果(±s,n=10)Tab 3 Content determination of lysozyme in serum of rats in each group(±s,n=10)

    注:與正常組比較,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01Note:vs.normal group,**P<0.01;vs.model group,##P<0.01

    組別正常組模型組蠅蛆油組京萬紅組溶菌酶含量,U/mL 1.27±0.21 2.14±0.26**4.78±0.38##4.15±0.27##

    3.5 血清中TNF-α和IL-6含量的測定結(jié)果

    與正常組比較,模型組大鼠血清中TNF-α和IL-6含量顯著增加(P<0.01)。與模型組比較,蠅蛆油組和京萬紅組大鼠血清中TNF-α和IL-6含量顯著減少(P<0.01)。各組大鼠血清中TNF-α和IL-6含量測定結(jié)果見表4。

    表4 各組大鼠血清中TNF-α和IL-6含量測定結(jié)果(±s,n=10,ng/L)Tab 4 Content determination of TNF-α and IL-6 in serum of rats in each group(±s,n=10,ng/L)

    表4 各組大鼠血清中TNF-α和IL-6含量測定結(jié)果(±s,n=10,ng/L)Tab 4 Content determination of TNF-α and IL-6 in serum of rats in each group(±s,n=10,ng/L)

    注:與正常組比較,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01Note:vs.normal group,**P<0.01;vs.model group,##P<0.01

    IL-6 1.04±0.13 3.09±0.65**1.58±0.45##1.66±0.56##組別正常組模型組蠅蛆油組京萬紅組TNF-α 142.5±33.8 369.4±49.7**211.6±41.5##227.4±43.1##

    3.6 創(chuàng)面組織中NF-κB p65和p-I-κB-α蛋白表達測定結(jié)果

    與正常組比較,模型組大鼠創(chuàng)面組織中NF-κB p65(細(xì)胞質(zhì)中)蛋白表達水平顯著降低(P<0.01),NF-κB p65(細(xì)胞核中)和p-IκB-α(細(xì)胞質(zhì)中)蛋白表達水平均顯著升高(P<0.01);與模型組比較,蠅蛆油組和京萬紅組大鼠創(chuàng)面組織中NF-κB p65(細(xì)胞質(zhì)中)蛋白表達水平顯著升高(P<0.01),NF-κB p65(細(xì)胞核中)和p-IκB-α(細(xì)胞質(zhì)中)蛋白表達水平均顯著降低(P<0.01)。各組大鼠創(chuàng)面組織NF-κB p65和I-κB-α蛋白表達電泳圖見圖1,測定結(jié)果見表5。

    圖1 各組大鼠創(chuàng)面組織中NF-κB p65和p-IκB-α蛋白表達電泳圖Fig 1 Electrophorograms of protein expression of NF-κB p65 and p-IκB-α in wound of rats in each group

    4 討論

    表5 各組大鼠創(chuàng)面組織中NF-κB p65和p-IκB-α蛋白表達水平測定結(jié)果(±s,n=10)Tab 5 Protein expression level of NF-κB p65 and p-IκB-α in wound of rats in each group(±s,n=10)

    表5 各組大鼠創(chuàng)面組織中NF-κB p65和p-IκB-α蛋白表達水平測定結(jié)果(±s,n=10)Tab 5 Protein expression level of NF-κB p65 and p-IκB-α in wound of rats in each group(±s,n=10)

    注:與正常組比較,**P<0.01;與模型組比較,##P<0.01Note:vs.normal group,**P<0.01;vs.model group,##P<0.01

    組別正常組模型組蠅蛆油組京萬紅組p-IκB-α 1 2.37±0.21**1.32±0.26##1.26±0.28##NF-κB p65細(xì)胞質(zhì)1 0.35±0.18**0.93±0.22##0.87±0.24##細(xì)胞核1 2.79±0.25**1.24±0.22##1.18±0.24##

    皮膚創(chuàng)傷以及繼發(fā)的感染是一種常見的疾病,發(fā)生率較高,如何促進創(chuàng)傷愈合和減輕感染一直以來是廣大醫(yī)藥工作者渴望解決的難題。前期研究發(fā)現(xiàn),蠅蛆油對抗燒、燙傷和鹽酸燒傷有較好的改善作用,但未見有關(guān)其用于治療皮膚創(chuàng)傷感染的報道[6-8,10]。本研究在大鼠皮膚創(chuàng)傷感染模型上,研究了蠅蛆油的治療效果,并探討了其作用機制。京萬紅是臨床常用的治療燒燙傷的藥物,對皮膚創(chuàng)傷感染也有較好的治療效果[11],所以本研究以其為陽性對照藥。在本研究中,蠅蛆油可以減輕創(chuàng)傷感染引起的組織水腫,縮短創(chuàng)面愈合時間,并且創(chuàng)面愈合整潔度較好,疤痕形成較少,這表明蠅蛆油可以促進創(chuàng)面愈合,抑制組織水腫。同時,其還可以促進創(chuàng)面組織內(nèi)羥脯氨酸的持續(xù)生成,這提示蠅蛆油促進創(chuàng)面愈合作用可能與促進膠原蛋白合成有關(guān)。另外,筆者還觀察到蠅蛆油給藥組溶菌酶含量顯著高于模型組,這表明蠅蛆油可以促進吞噬細(xì)胞分泌溶菌酶,從而發(fā)揮抗菌作用。

    炎癥反應(yīng)是機體修復(fù)損傷組織的一種基本反應(yīng),是創(chuàng)面修復(fù)的始動環(huán)節(jié),但過度的炎癥反應(yīng)則會加重組織損傷[12]。過度的炎癥反應(yīng)會使細(xì)胞過度增殖,膠原蛋白大量合成、沉積,使瘢痕過度增生,組織修復(fù)不良[13]。本研究結(jié)果顯示,創(chuàng)傷感染后大鼠血清中TNF-α、IL-6含量明顯增加,表明創(chuàng)傷感染誘導(dǎo)了炎癥反應(yīng),而蠅蛆油可明顯抑制血清中TNF-α、IL-6的含量,表明蠅蛆油能夠控制炎癥反應(yīng)。正常情況下,NF-κB以二聚體的形式在細(xì)胞質(zhì)內(nèi)與I-κB結(jié)合,處于失活狀態(tài),而當(dāng)受活性氧或細(xì)菌感染等刺激時,I-κB發(fā)生磷酸化,使NF-κB p65解離和活化,并轉(zhuǎn)位至細(xì)胞核內(nèi),調(diào)節(jié)下游蛋白表達,使損傷加劇[14-15]。為研究蠅蛆油的作用機制,筆者分別檢測了細(xì)胞質(zhì)內(nèi)NF-κB p65和p-IκB-α蛋白表達情況,以及細(xì)胞核內(nèi)NF-κB p65蛋白表達情況。結(jié)果表明,蠅蛆油可以使p-IκB-α蛋白表達水平降低,促使NF-κB p65由胞核轉(zhuǎn)移至細(xì)胞質(zhì)中,抑制NF-κB活化,從而抑制過度激活的炎癥反應(yīng)。

    綜上所述,蠅蛆油對急性皮膚創(chuàng)傷感染引起的組織損傷具有一定的改善作用,其機制可能與促進膠原蛋白生成、增加溶菌酶含量和調(diào)節(jié)NF-κB信號通路從而發(fā)揮抗炎作用有關(guān)。

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