主成分分析法綜合評價采收成熟度對金蘭柚貯藏特性的影響

林雄，李宏祥，張亞男，馬巧利*，陳金印,2*

1(江西農(nóng)業(yè)大學 農(nóng)學院，江西省果蔬采后處理關(guān)鍵技術(shù)及質(zhì)量安全協(xié)同創(chuàng)新中心， 江西省果蔬保鮮與無損檢測重點實驗室，江西 南昌,330045) 2(萍鄉(xiāng)學院，江西 萍鄉(xiāng),337055)

柑橘是我國南方的第一大宗水果，其中柚類是柑橘屬中比較耐貯藏的種類。井岡蜜柚是江西省吉安市地理標志品種，2015年井岡蜜柚種植面積達到 23 000 hm2，投產(chǎn)面積1 666.7 hm2，總產(chǎn)2萬t，產(chǎn)值達1.2億元[1]。金蘭柚(Citrusmaxima(Burm.) Merr. cv. Jinlan Pomelo)屬于井岡蜜柚晚熟系列品種，由于果實發(fā)育期較短，成熟期集中，鮮果銷售壓力巨大，生產(chǎn)上常通過適當貯藏來調(diào)節(jié)市場供給。研究表明，適宜的采收成熟度，因為果實發(fā)育充分，新陳代謝速率減弱，抗性物質(zhì)有效積累，可以有效地降低果實的失重率和腐爛率[2-3],且適時采收的園藝產(chǎn)品在采收初期及貯藏期都表現(xiàn)出更好色澤[4-6]。李宏祥等[7-8]研究了不同采收成熟度的其他2種井岡蜜柚——桃溪蜜柚和金沙柚的貯藏特性，發(fā)現(xiàn)其腐爛率、失重率、色澤、風味、抗氧化性能等均表現(xiàn)出明顯的差異，總體應(yīng)當根據(jù)鮮食、短期貯藏或長期貯藏等目的選擇合適的采收成熟度[7]。

評價貯藏品質(zhì)的指標多種多樣，利用主成分分析法(principle components analysis, PCA)可有效將評價指標降維，從而更加直觀有效地提供數(shù)據(jù)參考。李儉等[9]通過PCA分析了南康不同柚子品種的果實外觀和內(nèi)在風味品質(zhì)指標;牟紅梅等[10]通過PCA對27種西洋梨的果實品質(zhì)進行分析;林媚等[11]也通過PCA方法對浙江12個柑橘品種進行綜合分析，從符合普通消費習慣和適合推廣角度對12種柑橘進行了排名。

本試驗以生產(chǎn)上常用的成熟度,盛花后158 d(成熟度Ⅰ)的金蘭柚果實為對照，比較了盛花后173 d(成熟度Ⅱ)和188 d(成熟度Ⅲ)采收的金蘭柚，在常溫連續(xù)貯藏150 d內(nèi)果實失重率、腐爛率、果皮色澤、總糖、總有機酸、可溶性糖和有機酸組分及含量等感官品質(zhì)指標，以及總酚、DPPH清除率和鐵離子還原/抗氧化能力(ferric reducing ability of plasma, FRAR)等抗氧化指標，并通過PCA綜合評價了3個成熟度的果實品質(zhì)，期望獲得適宜的采收成熟度與上市期的最佳組合，為指導生產(chǎn)上市提供數(shù)據(jù)參考。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

3個成熟度的金蘭柚果實分別采于盛花后158 d(成熟度Ⅰ)、173 d(成熟度Ⅱ)和188 d(成熟度Ⅲ)，采自江西省吉安市安?？h張家冬興果園(北緯27°38′55.22″，東經(jīng)114°56′55.87″)。

福林酚(純度97%)，上海藍季科技發(fā)展有限公司；沒食子酸(純度99%)，天津市大茂化學試劑廠。糖標準品試劑：蔗糖(純度99.5%)、葡萄糖(純度99.5%)和果糖(純度99%),上海阿拉丁生化科技股份有限公司;酸標準品試劑：草酸(99.99%)、酒石酸(純度99%)、奎尼酸(純度98%)、蘋果酸(純度98%)、抗壞血酸(純度99.99%)和檸檬酸(純度99.5%),上海阿拉丁生化科技股份有限公司。

LC-20A 高效液相色譜儀，日本島津公司；MINOLTA CR-400 D65光源色差儀，日本柯尼卡美能達公司；Ball Mills MM 400研磨機，德國萊馳公司；UNIVERSAL 320R高速冷凍離心機，德國赫提馳科學儀器公司；UV-2600紫外分光光度計，日本島津公司；KQ-500B超聲波清洗器，昆山市超聲儀器有限公司；DK-S28電熱恒溫水浴鍋，上海精宏實驗設(shè)備有限公司；JM-B6002電子天平，余姚市紀銘稱重校驗設(shè)備有限公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 樣品處理

挑選大小、成熟度一致，無病蟲害的果實于當天運回實驗室。在充分散失田間熱后，清洗、晾干，用聚乙烯薄膜保鮮袋(0.05 mm, 25 cm×35 cm)單果包裝，通風庫室溫(8～10 ℃)貯藏。試驗樣品每30 d采集一次。每次取12個大小均勻、健康的果實，平均分為3組，測定果實色差指數(shù)后，取果皮、果肉用液氮速凍，放置-80 ℃冰箱保存，隨后進行果實品質(zhì)相關(guān)生理生化指標檢測。

1.2.2 果皮色差指數(shù)測定

采用色差儀分別對12個果實表面赤道部位對角4個方向測定果皮的L*、a*、b*、c*、H0值。L*表示亮度，值越大則樣品表面越光亮；a*表示紅綠色差，正值為紅色，負值為綠色，絕對值越大,紅色或綠色越深；b*表示黃藍色差，正值為黃色，負值為藍色，絕對值越大,黃色或藍色越深。c*值為色飽和度，表示顏色的彩度，其值越大，顏色越純。Ho表示色調(diào)角，當a*>0，b*>0時，Ho=tan-1(b*/a*)；當a*<0，b*>0時，Ho=180°+tan-1(b*/a*)。當Ho值在0°～90°時隨著角度增大，顏色依次從紫紅色(0°)、紅色(22.5°)、橙紅色(45°)、橙黃色(67.5°)到黃色(90°)漸變；Ho值在90°～180°時，顏色依次從黃綠色 (90°)、綠色 (135°) 到藍綠色 (180°) 漸變。CCI表示著色指數(shù)，CCI>0為紅色，CCI<0為藍綠色，按公式(1)計算

(1)

1.2.3 失重率和腐爛率測定

隨機選取33個果實，定期測單果重，計算失重率，重復(fù)3次。按公式(2)計算失重率，

(2)

定期統(tǒng)計腐爛果個數(shù)，按公式(3)計算腐爛率，

(3)

1.2.4 總糖和可滴定酸的測定

分別采用曹建康等[12]的蒽酮比色法和酸堿滴定法測定，結(jié)果以mg/g表示。

1.2.5 果實糖酸組分的提取與測定

果實糖、酸組分提取與測定參照胡志群等[13]和CHEN等[14]的方法。取4 g左右果肉樣品，加入體積分數(shù)80%乙醇，35 ℃水浴20 min，室溫下1 000 r/min離心15 min，重復(fù)提取3次，最后合并取上清液于25 mL容量瓶，并用體積分數(shù)80%乙醇定容至刻度線。取1 mL提取液于1.5 mL離心管經(jīng)旋轉(zhuǎn)蒸干，加入1 mL經(jīng)過濾抽氣的超純水溶解，之后用直徑13 mm，孔徑0.44、0.22 μm的水系濾頭過濾，其中用孔徑0.22 μm過濾的濾液用于有機酸酸的測定，孔徑為0.44 μm過濾的濾液用于可溶性糖的測定。

糖組分測定的色譜條件為: 色譜柱Waters Spherisorb?5 μm NH24.6×250 mm Analytical Column；柱溫30 ℃；流動相為V(乙腈)∶V(水)=85∶15；檢測池溫度35 ℃；流速0.8 mL/min; 進樣量10 μL；RID示差檢測器檢測。使用外標法進行定量分析。

酸組分測定的色譜條件為：色譜柱YMC-PacK ODS-AQ (250×4.6 mml.D. S-5 μm, 12 nm)；柱溫30 ℃；流動相0.01 mol/L硫酸(pH=2.6)，流速0.5 mL/min；進樣量10 μL；二極管陣列檢測器檢測。使用外標法進行定量分析。

1.2.6 總酚提取和測定

總酚提取參照文獻[15]的方法；總酚含量測定參照FOLIN-CIOCALTEU比色法測定方法略有改動[16]。分別取250 μL各部位提取液于10 mL離心管中，加入超純水750 μL，搖勻，再加1.0 mL福林酚試劑，充分振蕩，暗處放置5 min，加入1 mL 50 g/L Na2CO3溶液，充分混合后，室溫放置60 min，于765 nm處測吸光值。

1.2.7 DPPH自由基清除測定

提取參照BRAND-WILLIAMS等[17]的方法，測定參照YAMAGUCHI等[18]的方法。

1.2.8 FRAP測定

提取方法同1.2.6，測定方法參照BENZIE[19]等的方法。

1.3 數(shù)據(jù)處理

所有數(shù)據(jù)采用Excel進行統(tǒng)計處理，用SPSS 20.0統(tǒng)計軟件對數(shù)據(jù)進行單因素方差分析顯著性及主成分分析；采用Graphpad prism 8.0作圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 不同成熟度金蘭柚果實外觀品質(zhì)的差異

2.1.1 果實失重率和腐爛率的變化差異

采收成熟度不同的金蘭柚果實，在常溫貯藏150 d的過程中貯藏特性差異較為明顯。每隔30 d定期檢測果實的失重率和腐爛率，結(jié)果如圖1所示。貯藏過程中3個采收期果實失重率均逐漸增加，但失重增加速率差異顯著(圖1-a)，成熟度Ⅰ果實失重率最高，在貯藏150 d時達到最大值4.53%；成熟度Ⅱ果實失重率其次，貯藏終點時達3.45%；而成熟度Ⅲ果實失重率最低，貯藏150 d后失重率僅為2.78%。說明隨著成熟度增加，果實失水失鮮程度逐漸降低，金蘭柚適當晚采有利于果實保持水分及減少貯藏物質(zhì)的消耗。

圖1 不同成熟度金蘭柚常溫貯藏中果實失重率(a)、腐爛率(b) Fig.1 Weight loss rate (a) and decay rate (b) of Jinlan pomelo fruits with different maturities during storage at ambient temperature注：折線圖上不同小寫字母表示同一貯藏時期各成熟度間差異顯著(P<0.05)(下同)

如圖1-b所示，果實腐爛率與成熟度間無明顯相關(guān)性。成熟度III的果實腐爛率最低，且在整個貯藏期均顯著低于成熟度Ⅰ和Ⅱ，至貯藏150 d時僅為10%；成熟度Ⅱ果實腐爛率在貯藏30 d內(nèi)顯著低于成熟度Ⅰ，但在60～150 d內(nèi)腐爛率最高或與成熟度Ⅰ腐爛率持平；成熟度Ⅰ腐爛率總體介于成熟度Ⅱ和III之間。在150 d時成熟度Ⅰ和Ⅱ的腐爛率分別為23%和30%。說明成熟Ⅲ較成熟度Ⅰ和Ⅱ的抗病性強，更耐采后腐爛。

2.1.2 果實著色的變化

金蘭柚果實常溫貯藏期間著色變化結(jié)果見圖2。果實著色總體差異不大，3個采收成熟度都是由黃綠色轉(zhuǎn)為淺黃色和黃色，成熟度Ⅰ轉(zhuǎn)黃色最慢，60 d完全轉(zhuǎn)黃；而成熟度Ⅱ、Ⅲ在30 d完全轉(zhuǎn)黃。在60～90 d成熟度Ⅰ、Ⅲ著色整體觀感上要好于成熟度Ⅱ，表現(xiàn)在果皮表面顏色更加鮮艷明亮，果實表面更加偏向黃色。

圖2 不同成熟度金蘭柚常溫貯藏期間果皮著色情況Fig.2 Peel color of Jinlan pomelo with different maturities during storage under ambient temperature condition

為了更精確衡量果實的著色情況，用色差計定期檢測果實色差指數(shù)，結(jié)果如表1所示。

注：不同小寫字母表示同一列數(shù)據(jù)存在顯著差異P<0.05(下同)

隨著貯藏時間的延長L*值(亮度)一直減小，其中成熟度ⅢL*值在60～120 d內(nèi)大于成熟度Ⅰ和Ⅱ，且在貯藏120 d時顯著大于成熟度Ⅰ，與肉眼觀測結(jié)果一致。貯藏過程中金蘭柚a*值逐漸增大，并由負轉(zhuǎn)正，這說明果實在貯藏中逐漸褪綠。貯藏0 d成熟度Ⅱ、Ⅲ的a*值顯著高于成熟度Ⅰ，成熟度Ⅰ在60 d完成褪綠，成熟度Ⅱ、Ⅲ金蘭柚于30 d褪綠。成熟度Ⅰ和Ⅲb*值先增加后下降，且都在第90天達到最大值[(68.54±1.06)和(68.85±1.02)]；成熟度Ⅱb*值一直呈上升趨勢，在150 d達到最大值(67.29±1.05)。貯藏60～90 d成熟度Ⅰ、Ⅲb*值大于成熟度Ⅱ。說明成熟度Ⅰ、Ⅲ著色較成熟度Ⅱ更黃。3個成熟度金蘭柚c*均逐漸增大，貯藏30～120 d成熟度Ⅰ、Ⅲc*大于成熟度Ⅱ；3個成熟度H0值在貯藏中均呈下降的趨勢，30 d后3個成熟度金蘭柚H0值低于90°，果實由黃綠色轉(zhuǎn)為黃色；60～150 d成熟度ⅢH0值最高，且在120～150 d成熟ⅢH0值顯著大于成熟度Ⅰ，說明成熟度Ⅲ較成熟度Ⅰ和Ⅱ更黃。3個成熟度CCI由負值轉(zhuǎn)向正值，說明果實色澤由藍綠色慢慢轉(zhuǎn)向紅色；成熟度Ⅲ 120～150 d CCI值最小，且顯著小于成熟度Ⅰ。金蘭柚CCI值貯藏過程中逐漸增大，表明金蘭柚貯藏后果實著色程度持續(xù)變好。

2.2 不同成熟度金蘭柚果實糖酸風味變化差異

2.2.1 果實總糖、總有機酸含量和糖酸比的變化

糖酸含量及糖酸比共同決定了柑橘類果實的風味品質(zhì)。3個成熟度的金蘭柚果實常溫貯藏過程中糖酸含量和糖酸比的變化檢測結(jié)果如圖3所示,總糖含量在整個貯藏期整體呈現(xiàn)下降趨勢，且都在5.60%～7.30%。且成熟度Ⅱ總糖含量最低。在30～150 d成熟度Ⅲ總糖含量顯著高于成熟度Ⅱ，且在60～90 d 3個成熟度總糖含量有顯著差異，表現(xiàn)為：成熟度Ⅲ>成熟度Ⅰ>成熟度Ⅱ。金蘭柚果實總有機酸含量表現(xiàn)為成熟度Ⅱ>成熟度Ⅰ>成熟度Ⅲ，整個貯藏期總有機酸含量都在0.38%～0.77%。如圖3-b所示，在貯藏30～120 d，成熟度Ⅰ和Ⅱ的總有機酸含量顯著高于成熟度Ⅲ；在150 d后成熟度Ⅱ的有機酸含量顯著高于成熟度Ⅰ和Ⅲ。3個成熟度的金蘭柚糖酸比在7.50～15.76。其中成熟度Ⅱ糖酸比最低。在0 d成熟度Ⅰ、Ⅲ的糖酸比顯著高于成熟度Ⅱ，在貯藏30～120 d成熟度Ⅲ糖酸比均顯著高于成熟度Ⅰ、Ⅱ，且基本維持在12左右，如圖3-c所示。這說明成熟度Ⅲ金蘭柚有較好的甜味口感。

圖3 不同成熟度金蘭柚常溫貯藏時果實總糖(a)、總有機酸含量(b)和糖酸比(c) Fig.3 Total sugar content (a), total organic acid content (b) and ratio of sugar/acid (c) of Jinlan pomelo fruits withdifferent maturities during storage under ambient temperature condition

2.2.2 果實糖組分的變化

貯藏過程中糖類物質(zhì)相互轉(zhuǎn)化，為了進一步了解不同采收期的金蘭柚果肉中主要糖組分變化差異，本實驗利用HPLC連續(xù)檢測了果實常溫貯藏150 d過程中3種可溶性糖含量的變化，包括蔗糖、葡萄糖和果糖，結(jié)果如圖4所示。金蘭柚可溶性糖主要以蔗糖為主，其質(zhì)量分數(shù)最高達到42.60 mg/g，貯藏過程中呈現(xiàn)先下降后升高的趨勢，貯藏90～150 d成熟度Ⅰ、Ⅲ蔗糖含量顯著高于成熟度Ⅱ，在60～90 d成熟度Ⅲ蔗糖含量顯著高于成熟度Ⅰ、Ⅱ(圖4-a)。在貯藏60～150 d金蘭柚單糖(果糖和葡萄糖)都呈顯著的下降趨勢，而雙糖(蔗糖)含量則呈上升趨勢，在貯藏60～120 d金蘭柚果糖含量成熟度Ⅰ高于成熟度Ⅱ、Ⅲ，葡萄糖含量0～60 d 3個成熟度整體無明顯差異，90～150 d成熟度Ⅲ高于成熟度Ⅰ、Ⅱ(圖4-b和圖4-c)。

2.2.3 果實酸組分的變化

為了進一步了解不同采收期的金蘭柚果肉中主要酸組分變化差異，本實驗利用HPLC連續(xù)檢測了金蘭柚果實常溫貯藏150 d過程中的5種有機酸含量的變化，包括檸檬酸、蘋果酸、草酸、奎尼酸和酒石酸，結(jié)果如圖5所示。

圖4 不同成熟度金蘭柚室溫貯藏中果實蔗糖(a)、果糖(b)、葡萄糖(c)含量Fig.4 Sucrose (a), fructose (b) and glucose (c) content of Jinlan pomelo with different maturities during storageunder ambient temperature condition

圖5 不同成熟度金蘭柚室溫貯藏中果實檸檬酸(a)、奎尼酸(b)、蘋果酸(c)、酒石酸(d)和草酸(e)含量Fig.5 Citric acid (a), quinic acid (b), malic acid(c)，tartaric acid(d) and oxalic acid(e) content of Jinlan pomelo fruitswith different maturities during storage under ambient temperature condition

金蘭柚有機酸中以檸檬酸為主，其質(zhì)量分數(shù)最高達到4.78 mg/g，最低為1.83 mg/g(圖5-a)，而其他有機酸含量均低于1.00 mg/g。成熟度Ⅰ中奎尼酸含量顯著高于成熟度Ⅱ、Ⅲ，采收初期成熟度Ⅰ奎尼酸質(zhì)量分數(shù)高達0.76 mg/g(圖5-b)。蘋果酸成熟度Ⅱ最高，呈現(xiàn)先升后降的趨勢，且采收初期顯著高于成熟度Ⅰ、Ⅲ；成熟度Ⅰ、Ⅲ蘋果酸含量在貯藏期整體表現(xiàn)為上升趨勢(圖5-c)。酒石酸含量采收初期成熟度Ⅱ顯著高于成熟度Ⅰ、Ⅲ，與蘋果酸相似(圖5-d)。成熟度Ⅲ中草酸含量顯著低于成熟度Ⅰ、Ⅱ(圖5-e)。總體而言，成熟度Ⅱ果實5種有機酸含量較高，成熟度Ⅲ果實5種有機酸含量最低。

2.3 不同成熟度金蘭柚果實抗氧化能力差異

2.3.1 果實總酚、抗壞血酸含量和DPPH自由基清除率、FRAP的變化

果實的氧化逆境是導致果實衰老的重要因素，抗氧化能力的強弱影響果實貯藏性，本實驗進一步比較了3個采收成熟度的果實貯藏過程中抗氧化物質(zhì)含量和自由基清除力的差異，如圖6所示。

圖6 不同成熟度金沙柚常溫貯藏期間果肉總酚(a)、抗壞血酸含量(b)和DPPH自由基清除率(c)和FRAP(d) Fig.6 Contents of total phenol (a), ascorbic acid(b) and DPPH free radical scavenging rate (c), FRAP (d) of Jinlan pomelowith different maturities during storage under ambient temperature condition

在貯藏30、90、120 d后，成熟度Ⅰ總酚含量顯著高于成熟度Ⅱ和Ⅲ(見圖6-a)。在0、60、90和150 d，成熟度Ⅱ抗壞血酸含量顯著高于成熟度Ⅰ、Ⅲ，并且成熟度Ⅲ抗壞血酸含量在整個貯藏期都處于較低水平(圖6-b)。貯藏前60 d成熟度Ⅱ DPPH自由基清除率顯著大于成熟度Ⅰ、Ⅲ，貯藏90～120 d成熟度Ⅰ、Ⅱ大于成熟度Ⅲ(圖6-c)。成熟度Ⅲ FRAP值在整個貯藏期都顯著高于成熟度Ⅰ、Ⅱ，且在30 d達到最高(圖6-d)。

2.4 PCA綜合分析不同成熟度金蘭柚常溫貯藏特性指標總體差異

為進一步明確不同成熟度對金蘭柚貯藏品質(zhì)及其風味的影響，利用SPSS 20.0對前文獲得的18個有統(tǒng)計差異的數(shù)據(jù)指標進行主成分分析。如表2所示，經(jīng)PCA提取的前4個主成分，其特征值均大于1，累計方差貢獻率為86.825%，基本概括反映了所有變量的初始信息。因此，選用前4個主成分作為數(shù)據(jù)分析的有效成分。

表2 主成分的特征值和貢獻率Table 2 Eigenvalue of the principal components and theircontribution and cumulative contribution

由18個指標的載荷系數(shù)及特征值計算得到18個因子的特征向量(表3)。以特征向量為系數(shù)構(gòu)建4個主成分的線性方程。

表3 主成分的載荷矩陣和特征向量Table 3 Principal loading matrix and component eigenvectors

將前4個主成分的方差貢獻率(表2)作為系數(shù)代入，得到綜合得分評價方程為：Y=0.371 79Y1+0.331 31Y2+0.087 83Y3+0.077 31Y4。將不同成熟度果實貯藏期的品質(zhì)指標測定值標準化后代入到上述方程，計算不同采收期金蘭柚在每個貯藏周期的綜合得分Y，Y值越大代表綜合品質(zhì)越高，如圖7所示。

圖7 不同成熟度金蘭柚在常溫貯藏期間品質(zhì)綜合得分Fig.7 The comprehensive quality scores of Jinlan pomelo with different maturities during storage under ambient temperature condition

3個成熟度的綜合得分均隨貯藏時間增加呈先增加達到最大值后下降趨勢。成熟度Ⅰ貯藏期綜合得分整體偏低，除30～90 d外，其他貯藏期綜合得分都為負值。成熟度Ⅱ在30 d即達到最大值(1.93)，并在貯藏60 d內(nèi)均可保持較高的得分。而成熟度Ⅲ綜合得分在整個貯藏期均明顯高于成熟度Ⅰ和Ⅱ，說明成熟度Ⅲ的總體品質(zhì)及耐貯性均優(yōu)于其他2個采收期；此外，成熟度Ⅲ金蘭柚綜合得分在60 d達到最大值2.92，隨后逐漸下降，直至貯藏90 d綜合得分均大于0，說明成熟度Ⅲ果實可以長期貯藏達90 d左右，且在貯藏60 d前后出庫上市品質(zhì)最優(yōu)。

3 結(jié)論與討論

適宜的采收成熟度有利于保持貯藏過程中果實的良好外觀品質(zhì)[7-8, 20-22]。不同采收成熟度的金蘭柚失重率和腐爛率差異顯著，在貯藏150 d內(nèi)，盛花后188 d的金蘭柚失重率和腐爛率最低，更耐貯藏。盛花后188 d，有較好果實表皮亮度；盛花后178、188 d比盛花后153 d更早褪綠，且果實色澤較好。

柑橘類果實的風味主要由糖酸含量及比例決定[23]，其可溶性糖主要為蔗糖、葡萄糖和果糖，有機酸主要是檸檬酸和蘋果酸及其他少量的奎尼酸、草酸、琥珀酸、丙二酸、富馬酸等[24]。成熟的金蘭柚可溶性糖以蔗糖為主，其含量在貯藏過程中先下降后上升，而果糖和蔗糖含量在貯藏90 d后急劇下降；有機酸以檸檬酸為主，盛花后188 d檸檬酸含量最低，且糖酸比約為12，顯著高于其他2個成熟度。盛花后188 d的金蘭柚風味最好。

采后貯藏過程中產(chǎn)生和積累過多的活性氧是誘導果實衰老的重要原因，果實成熟度、貯藏周期與抗氧化性表現(xiàn)出較強的相關(guān)性?？箟难醄25]、酚類物質(zhì)可以有效地清除果實的自由基，提高果實的抗氧化性。較高的DPPH自由基清除率、和鐵離子還原力對果實貯藏有著積極的作用[7, 26]。盛花后173和188 d的金蘭柚總酚、抗壞血酸、DPPH自由基清除率及FRAP均顯著高于盛花后158 d的果實，這2種成熟度的金蘭柚，抗氧化性更強，更耐貯藏。

利用PCA綜合分析18個指標發(fā)現(xiàn)，3個成熟度的果實在貯藏過程中的得分均先升后降，說明井岡蜜柚貯藏品質(zhì)先優(yōu)化后劣變，生產(chǎn)上需要將果實儲存一段時間才能達到最佳食用品質(zhì)。

綜上所述，盛花后188 d金蘭柚耐貯性、風味品質(zhì)均表現(xiàn)最佳且有較強的抗氧化性。因此，推薦盛花后188 d為金蘭柚最適采收成熟度，且貯藏60 d左右出庫品質(zhì)最優(yōu)。