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    沉默GDF15基因表達對高糖誘導的腎小管上皮細胞凋亡和氧化應激的影響

    2020-05-21 06:41:46郭海燕邢志華王麗麗解菊芬
    鄭州大學學報(醫(yī)學版) 2020年3期
    關(guān)鍵詞:高糖腎小管氧化應激

    郭海燕,邢志華,王麗麗,解菊芬

    1)山西醫(yī)科大學汾陽學院臨床系內(nèi)科學教研室 山西汾陽 032200 2)山西省汾陽醫(yī)院內(nèi)分泌科 山西汾陽 032200 3)山西省汾陽醫(yī)院血液內(nèi)科 山西汾陽 032200

    糖尿病腎病(diabetic nephropathy,DN)是糖尿病的主要微血管并發(fā)癥,嚴重威脅患者生命健康。研究[1]顯示,高糖可誘導腎小管上皮細胞凋亡和氧化損傷,這也是DN發(fā)生發(fā)展的機制之一。因此,抑制腎小管上皮細胞凋亡和氧化應激對于治療DN或延緩DN發(fā)展具有重要意義。生長分化因子15(growth differentiation factor 15,GDF15)是一個分泌蛋白,屬于轉(zhuǎn)化生長因子β家族成員,參與心腦血管疾病、腫瘤等的發(fā)生發(fā)展[2-3]。有研究[4]顯示,GDF15可能通過上調(diào)磷酸化的絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶B的表達,拮抗過氧化氫(H2O2)誘導的內(nèi)皮細胞凋亡。姚新豐[5]報道稱,GDF15在DN患者血清中表達升高,診斷DN的敏感度為82.2%,特異度為70.2%,可作為診斷DN的生物學指標。但目前,GDF15基因?qū)δI小管上皮細胞凋亡和氧化應激的影響還未知。本研究首先檢測了DN患者腎組織中GDF15蛋白表達水平,然后以人腎小管上皮細胞HK-2為研究對象,探討了沉默GDF15基因表達對高糖誘導的HK-2細胞凋亡和氧化應激的影響,以期為DN的分子靶向治療提供一定的思路。

    1 對象與方法

    1.1研究對象選取2017年12月至2018年5月于山西省汾陽醫(yī)院腎內(nèi)科住院并行腎活檢確診的16例DN患者為研究對象,其中男5例,女11例,年齡39~67(53.5±5.9)歲。以同期16例手術(shù)治療的腎癌患者的癌旁正常組織為對照,其中男9例,女7例,年齡42~69(56.3±7.5)歲。本研究經(jīng)醫(yī)院倫理委員會批準同意,患者自愿簽署知情同意書。

    1.2細胞和實驗試劑人腎小管上皮細胞株HK-2(中國科學院上海細胞庫),胎牛血清(FBS)和低糖DMEM培養(yǎng)基(美國Gibco公司),四甲基噻唑藍(MTT)和胰蛋白酶(美國Sigma公司),Lipofectamine 2000試劑盒(美國Invitrogen公司),膜聯(lián)蛋白V(Annexin V)-異硫氰酸熒光素(FITC)/碘化丙啶(propidium iodide,PI)細胞凋亡試劑盒、二喹啉甲酸(bicinchoninicacid,BCA)蛋白檢測試劑盒和2',7'-二氯二氫熒光素二乙酸酯(DCFH-DA)探針(上海碧云天生物技術(shù)有限公司),兔抗人Bcl-2、Bax和GDF15多克隆抗體(美國Santa Cruz公司),兔抗人Nrf2和血紅素加氧酶-1(heme oxygenase-1,HO-1)多克隆抗體(美國Abcam公司),GDF15的小干擾RNA及亂序無義陰性序列(上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司),活性氧簇(ROS)、丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)和谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)檢測試劑盒(南京建成生物工程研究所)。

    1.3實驗方法

    1.3.1 細胞培養(yǎng) 復蘇HK-2細胞,加入含體積分數(shù)10%FBS的DMEM培養(yǎng)基,于2.5 cm2細胞培養(yǎng)瓶中,置于37 ℃、體積分數(shù)5 %CO2、97 %濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每2~3 d更換一次新鮮培養(yǎng)基。當細胞生長融合至80%左右時,吸棄培養(yǎng)基。加入PBS清洗細胞后,加入2.5 g/L胰蛋白酶溶液消化,傳代培養(yǎng)。

    1.3.2 細胞轉(zhuǎn)染及效果評價 對數(shù)生長期的HK-2細胞接種于6孔細胞培養(yǎng)板中,每孔1×105個。當細胞融合至60%時,參照Lipofectamine 2000試劑盒操作說明,分別將GDF15的小干擾RNA(si-GDF15組)及亂序無義陰性序列(si-NC組)轉(zhuǎn)染至HK-2細胞。轉(zhuǎn)染12 h后,更換新鮮培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)48 h,收集細胞。Western blot法檢測兩組細胞中GDF15蛋白水平,評價轉(zhuǎn)染效果。

    1.3.3 細胞分組及處理 將HK-2細胞接種于24孔細胞培養(yǎng)板中,每孔1×104個,分為對照組(細胞正常培養(yǎng)48 h)、高糖組(用含25 mmol/L[6]葡萄糖的DMEM培養(yǎng)基作用48 h)、si-GDF15+高糖組和si-NC+高糖組(轉(zhuǎn)染si-GDF15和si-NC的細胞均用含25 mmol/L葡萄糖的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng),轉(zhuǎn)染后繼續(xù)培養(yǎng)48 h)。每組均設9個復孔。

    1.3.4 Western blot法檢測各組組織和細胞中GDF15蛋白表達 細胞分組和處理同1.3.3。細胞培養(yǎng)結(jié)束后,吸棄培養(yǎng)基,胰蛋白酶消化收集細胞。RIPA蛋白裂解液提取組織和各組細胞中總蛋白,BCA法對蛋白進行定量。取適量蛋白,100 ℃煮沸5 min,變性后,每孔30 μg上樣行PAGE電泳。電泳后,濕轉(zhuǎn)至聚偏乙烯二氟膜,于50 g/L脫脂牛奶液中封閉2 h。加入GDF15抗體(按1∶600稀釋),4 ℃孵育過夜。洗膜后,加入辣根過氧化酶標記的二抗(按1∶200稀釋),37 ℃孵育1 h。洗膜后,加入ECL,避光顯影,凝膠成像系統(tǒng)曝光拍照。以GAPDH為內(nèi)參,用Image J軟件分析蛋白條帶灰度值。

    1.3.5 流式細胞術(shù)檢測各組細胞凋亡率 細胞分組和處理同1.3.3。PBS清洗細胞,加入適量2.5 g/L胰蛋白酶消化,收集細胞。取1.0×106個細胞,PBS清洗后,加入400 μL結(jié)合緩沖液輕輕吹打;加入10 μL Annexin V-FITC,避光孵育10 min;加入5 μL PI室溫孵育5 min;再加入100 μL結(jié)合緩沖液,混勻后上流式細胞儀檢測細胞凋亡。

    1.3.6 各組細胞內(nèi)ROS含量檢測 細胞分組和處理同1.3.3。細胞培養(yǎng)結(jié)束后,按照ROS試劑盒說明書,吸棄培養(yǎng)基,加入按1∶500稀釋后的DCFH-DA,37 ℃孵育40 min;用無血清培養(yǎng)基清洗細胞3次,胰蛋白酶消化,PBS清洗。PBS重懸細胞,用多功能酶標儀檢測(激發(fā)波長488 nm,發(fā)射波長525 nm)ROS含量。

    1.3.7 各組細胞內(nèi)MDA、SOD和GSH-Px水平檢測細胞分組和處理同1.3.3。細胞培養(yǎng)結(jié)束后,用胰蛋白酶消化,PBS清洗、收集。用細胞裂解液裂解細胞,保留上清液,分別參照MDA、SOD和GSH-Px試劑盒說明書檢測上清中MDA、SOD和GSH-Px水平。

    1.3.8 各組細胞中Bcl-2、Bax、Nrf2和HO-1蛋白表達的Western blot法檢測 細胞分組和處理同1.3.3。檢測方法同1.3.4。其中Bcl-2抗體按1∶400稀釋,Bax抗體按1∶400稀釋,Nrf2抗體按1∶600稀釋,HO-1抗體按1∶600稀釋。

    1.4統(tǒng)計學處理采用Excel和PEMS 3.2進行數(shù)據(jù)分析。應用兩獨立樣本t檢驗比較正常腎組織和DN患者腎組織中GDF15蛋白表達的差異,應用單因素方差分析和SNK-q檢驗比較各組細胞凋亡率、各組細胞中GDF15、Bcl-2、Bax、Nrf2和HO-1蛋白表達以及ROS含量、MDA、SOD和GSH-Px水平的差異。檢驗水準α=0.05。

    2 結(jié)果

    2.1正常腎組織和DN患者腎組織中GDF15蛋白表達的比較見圖1。與正常腎組織(0.45±0.04)比較,DN患者腎組織(0.81±0.07)中GDF15蛋白表達水平升高(t=17.861,P<0.001)。

    1:正常腎組織;2:DN患者腎組織

    2.2高糖對HK-2細胞GDF15蛋白表達的影響見圖2。與對照組(0.43±0.02)比較,高糖組HK-2細胞(0.87±0.05)中GDF15蛋白表達水平升高(t=24.512,P<0.001)。

    1:對照組;2:高糖組

    2.3GDF15小干擾RNA轉(zhuǎn)染效果驗證結(jié)果見圖3。與si-NC組(0.45±0.05)比較,si-GDF15組(0.19±0.03)HK-2細胞中GDF15蛋白表達水平降低(t=13.377,P<0.001)。

    1:si-NC組;2:si-GDF15組

    2.4沉默GDF15表達對高糖誘導的HK-2細胞凋亡的影響見圖4。高糖組HK-2細胞凋亡率高于對照組(P<0.05)。si-GDF15+高糖組HK-2細胞凋亡率低于si-NC+高糖組(P<0.05)。高糖組與si-NC+高糖組細胞凋亡率比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

    2.5沉默GDF15表達對高糖誘導的HK-2細胞氧化應激的影響見表1。由表1可知,與對照組比較,高糖組和si-NC+高糖組MDA和ROS水平升高(P<0.05),SOD和GSH-Px水平降低(P<0.05)。與si-NC+高糖組比較,si-GDF15+高糖組MDA和ROS水平降低(P<0.05),SOD和GSH-Px水平升高(P<0.05)。高糖組與si-NC+高糖組比較,各檢測指標差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

    1:對照組;2:高糖組;3:si-NC+高糖組;4:si-GDF15+高糖組。*:與對照組比較,P<0.05;#:與si-NC+高糖組比較,P<0.05

    圖4 沉默GDF15表達對高糖誘導的HK-2細胞凋亡率的影響

    表1 各組HK-2細胞中MDA、ROS、SOD和GSH-Px水平的變化(n=9)

    *:與對照組比較,P<0.05; #:與si-NC+高糖組比較,P<0.05

    2.6沉默GDF15表達對高糖誘導的HK-2細胞凋亡相關(guān)蛋白表達的影響見圖5和表2。高糖組和si-NC+高糖組HK-2細胞中Bax蛋白水平高于對照組(P<0.05),Bcl-2蛋白水平低于對照組(P<0.05)。si-GDF15+高糖組HK-2細胞中Bax蛋白水平低于si-NC+高糖組(P<0.05),Bcl-2蛋白水平高于si-NC+高糖組(P<0.05)。高糖組與si-NC+高糖組Bax和Bcl-2蛋白水平比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

    1:對照組;2:高糖組;3:si-NC+高糖組;4:si-GDF15+高糖組

    圖5 沉默GDF15對高糖誘導的HK-2細胞中Bax和Bcl-2蛋白表達影響

    *:與對照組比較,P<0.05; #:與si-NC+高糖組比較,P<0.05

    2.7沉默GDF15表達對高糖誘導的HK-2細胞Nrf2/HO-1信號通路相關(guān)蛋白表達的影響見圖6和表3。高糖組和si-NC+高糖組細胞質(zhì)Nrf2蛋白水平低于對照組(P<0.05),HO-1和細胞核Nrf2蛋白水平高于對照組(P<0.05)。si-GDF15+高糖組HO-1和細胞核Nrf2蛋白水平高于si-NC+高糖組(P<0.05),細胞質(zhì)Nrf2蛋白水平低于si-NC+高糖組(P<0.05)。高糖組與si-NC+高糖組HO-1和細胞核Nrf2蛋白水平比較,差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

    1:對照組;2:高糖組;3:si-NC+高糖組;4:si-GDF15+高糖組

    圖6 沉默GDF15對高糖誘導的HK-2細胞Nrf2和HO-1蛋白表達的影響

    *:與對照組比較,P<0.05; #:與si-NC+高糖組比較,P<0.05

    3 討論

    隨著人們飲食習慣的改變,糖尿病的發(fā)病率呈現(xiàn)增長的趨勢,DN作為糖尿病的常見并發(fā)癥被廣泛關(guān)注。腎小管上皮細胞是腎臟的固有細胞之一,在葡萄糖、炎性因子、缺氧等因素誘導時會產(chǎn)生氧化應激和凋亡,最終導致腎小管間質(zhì)纖維化,嚴重時導致腎功能衰竭[7]。因此,腎小管上皮細胞的凋亡和氧化應激與DN的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)。

    GDF15是一種應激反應蛋白,參與調(diào)控細胞凋亡[8]。研究[9]顯示,GDF15在DN患者血清中的水平明顯高于單獨糖尿病人群和健康人群,是影響DN的獨立危險因素。目前,還未見GDF15影響腎小管上皮細胞凋亡和氧化應激的相關(guān)報道。本研究首先檢測了DN患者腎組織中GDF15蛋白表達水平,結(jié)果顯示,GDF15蛋白在DN患者腎組織中呈高表達,提示GDF15可能參與DN的發(fā)生發(fā)展。進一步使用高糖誘導人腎小管上皮細胞HK-2后,細胞中GDF15蛋白表達水平升高;通過轉(zhuǎn)染GDF15小干擾RNA沉默GDF15表達后,高糖誘導的HK-2細胞凋亡率和Bax蛋白水平明顯降低,Bcl-2蛋白水平明顯升高,提示沉默GDF15基因表達可能通過調(diào)控Bax/Bcl-2蛋白表達抑制高糖誘導的HK-2細胞凋亡。

    高糖環(huán)境下,腎小球細胞內(nèi)氧化作用增強,抗氧化與氧化平衡被打破,細胞內(nèi)產(chǎn)生大量ROS[10]。ROS進一步造成細胞膜脂質(zhì)過氧化,損傷細胞膜。MDA是脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物之一,可間接反映脂質(zhì)過氧化水平[11]。SOD是機體內(nèi)重要的抗氧化酶,可清除氧自由基,保護機體免受氧化損傷。GSH-Px也是一種抗氧化酶,可與SOD協(xié)同作用,減少活性氧自由基的產(chǎn)生,防止脂質(zhì)過氧化及其中間代謝產(chǎn)物對機體的損害,維持體內(nèi)的氧化和抗氧化平衡[12]。本研究顯示,高糖處理后HK-2細胞ROS和MDA水平升高,SOD和GSH-Px水平降低,說明高糖誘導HK-2細胞產(chǎn)生了氧化應激反應。沉默GDF15基因表達后,高糖誘導的HK-2細胞ROS和MDA水平降低,SOD和GSH-Px水平升高,提示沉默GDF15基因可減輕高糖誘導的HK-2細胞內(nèi)氧化應激反應,保護細胞免受氧化損傷。

    Nrf2/HO-1信號通路在細胞氧化應激和凋亡中發(fā)揮重要作用,是機體內(nèi)重要的抗氧化信號通路[13]。正常生理條件下,Nrf2與其抑制蛋白Keap1在細胞質(zhì)中形成復合物。當受到氧化應激刺激時,Nrf2磷酸化與Keap1發(fā)生解離,并轉(zhuǎn)移至細胞核,進而啟動HO-1基因的轉(zhuǎn)錄,發(fā)揮抗氧化作用,保護細胞免受氧化損傷[14]。本研究顯示,沉默GDF15基因表達后,高糖誘導的HK-2細胞HO-1和細胞核Nrf2蛋白水平明顯升高,細胞質(zhì)Nrf2蛋白水平明顯降低,提示沉默GDF15基因表達可激活Nrf2/HO-1信號通路,減輕高糖誘導的HK-2細胞氧化應激等損傷。

    綜上所述,高糖可促進人腎小管上皮細胞HK-2中GDF15表達,沉默GDF15基因表達可減少高糖誘導的HK-2細胞凋亡、減輕氧化應激,其可能通過激活Nrf2/HO-1信號通路,保護HK-2細胞免受損傷,為DN的靶向分子治療提供了新思路。

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