毛尖茶葉多糖的提取與活性測定研究

張瑩瑩

（山西師范大學臨汾學院，山西臨汾 041000）

茶作為一種有很悠久歷史的飲品，目前已經研究出它可以降低血糖、減少血脂、清除抗氧化劑的自由基，增強免疫力和阻斷活性等。羅祖有等還采取了其他措施證明了藤茶多糖進行抗氧化作用、減少自由基和提高免疫力，是研究和了解植物多糖藥理活性的基礎。許多研究表明，茶中的許多化學物質會產生自由基，包括抗氧化劑、多酚氨基酸鏈和多糖等，可以通過不同的方式研究茶多糖的抗氧化和自由基顯像活性。而迄今為止，還沒有關于復合多糖對多糖活性的貢獻的研究。

1 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗儀器與材料

1.1 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗儀器

CARY50全波長紫外掃描儀，自動旋光儀WZZ-2S，Agilent 7890A-5975C氣相色譜質譜儀，配備DB-5柱（30m×0.25mm，0.25mm）和質譜檢測儀器，Agilent1200液相色譜儀，配備G1352ARID檢測器，TSK5000G5000PWXL凝膠色譜柱（300mm×7.8mm），LAB-ORATA4000旋轉蒸發(fā)儀，電子秤AR224CN，TD5A-WS高速度監(jiān)控器，冷凍干燥機ZRQ30，WF2UV-2100紫外光譜儀。

1.2 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗材料與試劑

茶葉的毛尖樣品存儲在實驗室樣品庫中（編號為20150822-1）。DMEM培養(yǎng)基，胎牛血清，一氧化氮（NE）測試試劑盒（硝酸還原酶法），1,1-二苯基-2-三硝基苯基肼，多糖分子量(分別為12000,25000,50000,80,000,270000,410000,670000Da，美國Aldrich公司）透析袋，葡萄糖，木糖，半乳糖，阿拉伯糖，甘露糖，氯化鈉，氯仿，正丁醇和全乙醇等試劑。

2 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗方法

2.1 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗毛尖茶葉多糖的提取

將1250g毛尖茶葉用乙醇回流萃取兩次。按照文獻中的多糖提取方法處理殘渣，通過Sevag方法除去殘留物，直到掃描的波長280nm的地方沒有清晰的吸收峰為止。重復用乙醇和丙酮的水溶液進行洗滌，以獲得從毛尖茶葉的精制多糖。

2.2 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗毛尖茶葉多糖的分離純化

將12.74g從毛尖茶葉中提取的多糖溶解在蒸餾水中，并通過DEAEDE-52離子交換色譜法進行分離，并從蒸餾水和0.2、0.4、0.6升/lNaCl溶液洗脫，從每一批收集5.0L。將洗脫的部分濃縮，置于透析袋中進行透析、分離并純化，然后以水為流動相進行洗脫。用收集器收集洗脫的部分，每個收集管大約收集3ml，將通過高效液相色譜法檢測到的相似峰合并，得到對稱的毛尖茶葉多糖組分，將其稱為MTP。

2.3 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗MTP的特性分析

2.3.1 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗旋光度測定

把10.0mgMTP放置在25ml的容量瓶中，以水溶解，配制0.4g/l的多糖溶液。將20ml溶液加入到旋光管中，作為空白對照組，通過自動旋光儀測量MTP的光學強度。

2.3.2 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗分子量分布的測定

通過HPLC測定多糖的一般溶液和一系列MTP溶液。色譜柱為TSK G5000PWXL（300mm×7.8mm）凝膠色譜柱。柱溫為40°C，流動相在0.002mol/l磷酸氫鈉（含0.05%NaN3）下的流速為0.8ml/min，RID檢測器檢測。加入適量的分子量為12000、25000、50000、80000、270000、410000和670000Da的葡聚糖標準溶液，加入去離子水，配制成2g/l的溶液，并進行過濾。同時進行HPLC分析，用保留時間（RT）作為橫坐標x，用分子量的log10的值作為縱坐標y，得到y(tǒng)=-0.332x+10.224（r=0.9980）。稱量一定量的MTP并添加去離子水，再按照上述步驟制備質量濃度為2g/l的樣品溶液，并根據上面的標準曲線公式計算。

2.3.3 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗單糖組成的測定

根據文獻中描述的方法，對MTP進行完全水解，以減少乙?；苌?，并且使用標準單糖作為參考來測量MTP的單糖組成。氣相條件為DB-5色譜柱（30m×0.25mm×0.25μm）。該檢測器輸入溫度為250°C，檢測器的溫度為280℃，氮氣流速為0.6ML/min，分流比例為20：1，進樣量為5μL，程序溫度在200℃，2分鐘，溫度升至約2℃至245℃，然后以10°C/分鐘的速度升高至270°C，持續(xù)2分鐘。

2.4 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗MTP對小鼠巨噬細胞增殖的影響

根據文獻中描述的方法，在96孔板中測量了MTP對小鼠巨噬細胞增值能力的影響。第1組為對照組，第2-7組為藥物組。藥物治療組的多糖溶液的最終濃度為30,90,150,300,500,800mg/l，對照接受終濃度為10mg/L。施用藥物后，將細胞在5%CO2，37℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24小時，吸去培養(yǎng)液，并在每個孔中加入20μmLMTT，并在上述條件下培育4小時。棄去上清液，加入150μlDMSO混合并進行振蕩。在酶標儀570nm波長下測量吸光度，對照組的吸光度為100%，并為每個監(jiān)測組計算細胞的相對生長速率。

2.5 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗MTP對小鼠巨噬細胞吞噬能力的影響

根據文獻中描述的方法，將中性紅用作對象，并在96孔板中測量MTP對RAW264.7小鼠噬菌體吞噬作用的影響，分組管理等效于2.5。施用藥物后，在5%CO2,37°C的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24小時，加入濃度為720mg/L的100mg中性紅色溶液。再將細胞在5%CO2,37°C的培養(yǎng)箱中放置24小時。攪拌培養(yǎng)物，將50μl冰醋酸和50μl乙醇充分混合，并在4°C下在冰箱中保存2小時。將96孔板從冰箱中取出，并振蕩10分鐘以找到包括酶標儀在495nm波長的吸光度。對照組的吸光度為100%，并分別根據兩組的攝取率計算細胞增值的比率。

3 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗結果

3.1 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗MTP的旋光度及分子量

經過計算得出，MTP旋光度為20D=+42.0°。MTP的HPLC色譜圖如圖1，根據標準曲線計算出5.5×105Da的重均分子量。

3.2 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗MTP的單糖組成

測量得出，MTP由阿拉伯糖精、木糖、葡萄糖和半乳糖組成，摩爾比為2.44：1：1：1.54：1.28。

3.3 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗MTP的清除DPPH自由基活性

MTP對0.1 mmol/LDPPH自由基清除的濃度為38.26%（RSD=2.28%）。

3.4 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗MTP對小鼠巨噬細胞增殖的影響

圖2顯示了在不同質量濃度條件下吸收值的比值?？梢钥闯觯煌瑵舛鹊腗TP溶液對細胞增殖有多種作用。在30-500mg/L范圍內，給藥物組與對照組之間存在顯著差異。在500mg/L的高濃度下，擴散效果逐漸增強并達到最大值。

圖1 MTP的高效液相色譜圖

圖2 MTP對小鼠巨噬細胞RAW264.7增殖的影響

3.5 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗MTP對小鼠巨噬細胞吞噬能力的影響

圖3結果顯示了在不同質量濃度條件下每個孔中的吸收值之比。在圖3中，可以看出不同濃度的MTP溶液對細胞的吞噬作用具有不同的作用。在30-500mg/L范圍內施用多糖組和對照組之間存在顯著差異。吞噬細胞活性的發(fā)生率逐漸增加，并在500mg/L的濃度下達到峰值。

3.6 毛尖茶葉多糖的提取與活性測定實驗MTP對小鼠巨噬細胞產生NO的影響

圖4顯示了在不同質量濃度條件下產生NO的量。圖4表明，不同濃度的MTP溶液對細胞中NO產生的影響不同。在300-800mg/L的范圍內，NO產生對細胞的影響顯著不同，在500mg/ml達到最大值。

4 討論與結論

圖3 MTP對小鼠巨噬細胞RAW264.7吞噬能力的影響

圖4 MTP對小鼠巨噬細胞RAW264.7產生NO能力的影響

在本文中，主要研究了從毛尖茶中分離純化出單糖多糖成分MTP，以評估單糖的組成和分子量分布，其特征主要在于多糖結構。此外，本文通過多種提供藥理活性的方法來論述MTP的藥理活性，這些方法為多糖和其他毛尖茶葉多糖的開發(fā)和使用提供了實驗基礎。藥理實驗的結果表明，MTP具有消除DPPH自由基的特定能力。DPPH自由基可能是毛尖茶葉的有效活性來源之一，該結果與作者先前的研究結果一致，進一步表明了多糖顆粒的自由基清除活性。體外藥理模型在Raw264.7細胞活性測試中研究了不同MTP質量濃度對小鼠巨噬細胞不同生理序列的影響，在30-500mg/l的藥物輸送范圍內，隨著給藥濃度的增加促進了小鼠吞噬細胞的增殖，增加了細胞吞噬作用和NO的產生，并證明了毛尖茶葉可以顯示多糖的免疫刺激作用，為進一步研究多糖提供了實驗環(huán)境。MTP對其他模型的影響對于進一步的研究和分析是有價值的，從而可以使用更多的實驗數據，實驗結果更準確，可以正確地分析毛尖茶葉多糖。此外，當MTP的質量濃度很高時，藥物活性實驗的指標反應會減少，并且大劑量MTP對介導細胞的作用會引起細胞代謝或細胞毒性。低劑量的MTP生產活性和高劑量的線性趨勢表明，MTP對RAW264.7細胞具有明確的靶點或通路，尚需要進一步研究。本研究為毛尖茶葉的合理開發(fā)和利用提供了理論依據。