趙凱琴,羅延青,俎 峰,王敬喬*,李勁峰,陳 葦,張云云,楊清輝
(1.云南農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)與生物技術(shù)學(xué)院,云南 昆明 650201;2.云南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院經(jīng)濟作物研究所,云南 昆明 650205)
【研究意義】油菜(BrassicanapusL.)是世界上食用植物油的主要來源之一。提高油菜單位面積產(chǎn)量或產(chǎn)油量一直是中國油菜育種重點研究課題。提高油菜品種含油量是提高油菜產(chǎn)油量的最有效方式[1],是提高油菜生產(chǎn)效益的關(guān)鍵[2]和油菜育種的主要目標(biāo)[3]。通過GlgC基因在油菜胚發(fā)育前期、中后期表達,以期增加淀粉積累及油脂合成前體物質(zhì)(果糖)的含量,提高前期胚的生長速度;同時為中、后期胚發(fā)育提供最直接的碳源,達到增加種子含油量的目的。【前人研究進展】 AGPase(腺苷二磷酸葡萄糖焦磷酸化酶)是淀粉合成途徑的關(guān)鍵限速酶,其催化淀粉合成前體腺苷二磷酸葡萄糖的產(chǎn)生。GlgC是同源四聚體,單基因編碼AGPase。AGPase在細菌和植物及糖原合成中起相似作用[4]。Stark等[5]的研究證明,來源于細菌的AGPase基因GlgC在馬鈴薯球莖中過表達可增加淀粉含量30 %。Sweetlove等[6]通過抑制馬鈴薯AGPase 的活性導(dǎo)致淀粉合成的部分或全部終止。Helence[7]等利用胚特異啟動子降低了AGPase在轉(zhuǎn)基因油菜中的表達;通過同位素示蹤分析顯示,AGPase活性下降導(dǎo)致淀粉合成效率下降50 %~60 %,淀粉含量下降接近50 %~70 %;同時,通過對種子發(fā)育各個時期油含量的分析,AGPase活性下降導(dǎo)致了含油量的下降,特別是在胚發(fā)育中期以前,轉(zhuǎn)基因株系胚含油量比野生型下降50 %以上。目的基因的組織特異性及時空表達對最終產(chǎn)物的作用效果影響極大,如利用組成型的35S啟動子和維管特異啟動子4CL分別過表達蔗糖合酶基因SuSy,前者使楊樹莖干重下降,后者使莖干重上升[8]。因此,啟動子的選擇能直接影響預(yù)期結(jié)果?!颈狙芯壳腥朦c】構(gòu)建了兩個含特異表達啟動子的GlgC基因種子特異過表達載體,以農(nóng)桿菌介導(dǎo)法導(dǎo)入甘藍型油菜?!緮M解決的關(guān)鍵問題】獲得甘藍型油菜轉(zhuǎn)GlgC基因陽性株,為利用遺傳改良技術(shù)實現(xiàn)上述途徑在油菜基因工程育種中的應(yīng)用提供材料基礎(chǔ)。
1.1.1 受體 甘藍型油菜BrassicanapusL. ‘ westar’(加拿大引進)。
1.1.2 菌種 大腸桿菌(Escherichiacoli)DH5α感受態(tài)及根癌農(nóng)桿菌(Agrobacteriumtumefaciens) LB4404感受態(tài)均購于Takara 大連寶生物工程有限公司。
1.1.3 載體 克隆載體pMD18-T Vector 購于Takara 大連寶生物工程有限公司;載體pMB-TG、pMB3-14、pMB-Fad2為本實驗室保存及構(gòu)建。
1.1.4 分子試劑及化學(xué)試劑 所有酶、核酸分子量標(biāo)準(zhǔn)DNA Marker 購于Takara 大連寶生物工程有限公司;化學(xué)試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.2.1 擬南芥胚特異啟動子DOF的克隆(At4g21080) 根據(jù)Genbank 中已公布的擬南芥早期胚特異啟動子At4g21080(DOF4.5)的核苷酸序列設(shè)計引物(表1),以野生型擬南芥基因組DNA為模板,擴增985 bp啟動子片段。PCR程序: 94 ℃,5 min;94 ℃,30 s,55 ℃,1 min,72 ℃,1 min 30 s,35個循環(huán);72 ℃,10 min。將PCR產(chǎn)物連接到PMD18T上,載體命名為pMD18T-DOF。
1.2.2GlgC特異啟動子過表達載體的構(gòu)建 擬南芥胚特異啟動子DOF+ GlgC突變基因表達載體的構(gòu)建:①載體pMB-TG上有2個XbaI位點,為下一步的重組克隆要先消除3′端的XbaI位點。用XbaI部分酶切pMB-TG,klenow補平,自連,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5自連挑菌落提取質(zhì)粒進行XbaI單酶切和XbaI+KpnI雙酶切鑒定,酶切結(jié)果應(yīng)為線性和-330 bp片段。將消除3′端的XbaI位點的pMB-TG命名為pMB-TG-XbaI。②連接頭:XbaI單酶切pMB-TG-XbaI,klenow補平,膠回收,去磷酸化,連接PXhoI,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5腸桿挑菌落提取質(zhì)粒進行XhoI+KpnI雙酶切鑒定(-330 bp)。將消除5′端XbaI并連上PXhoI的pMB-TG-XbaI命名為pMB-TG-XhoI。③用SmaI+SalI雙酶切pMD18T-DOF,電泳回收~1.0 kB的擬南芥早期胚特異啟動子At4g21080(DOF4.5)片段插入到經(jīng)PmeI+XhoI雙酶切的pMB-TG-XhoI并去磷酸化的開環(huán)載體上(SmaI和PmeI為平末端;SalI和XhoI為同鏈末端),轉(zhuǎn)化后鑒定的陽性正向克隆送測序。
種子特異蛋白啟動子Cruc+GlgC突變基因表達載體的構(gòu)建:將實驗室已構(gòu)建的含Cruc啟動子的pMB3-14進行SalI酶切,切下Cruc啟動子片段,連接到經(jīng)過相同酶切,回收載體大片段的pMB-Fad2載體上,命名為pMB-Cruc。XbaI單酶切含~1.6 kBGlgC片段的pMD18T-TG,將目的片段連接到經(jīng)XbaI 酶切的pMB-Cruc上,轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,鑒定后的陽性正向克隆送測序。
1.2.3GlgC基因表達載體的甘藍型油菜遺傳轉(zhuǎn)化GlgC基因表達載體的農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化:將重組質(zhì)粒pMB-DOF-TG、pMB-Cruc-TG導(dǎo)入根癌農(nóng)桿菌LBA4404(采用凍融法)。
農(nóng)桿菌介導(dǎo)法轉(zhuǎn)化油菜及抗Kan再生植株篩選:①將轉(zhuǎn)化受體‘Wester’種子用25 %次氯酸鈉滅菌,在MS培養(yǎng)基中25 ℃暗培養(yǎng)7 d;②挑取農(nóng)桿菌單克隆,置于相應(yīng)抗性的10 mL YEP液體培養(yǎng)基,27 ℃震蕩培養(yǎng)(200 r/min)至對數(shù)生長期,OD 值0.3備用;③取上述已制備好的農(nóng)桿菌吸取0.5 mL加入20 mL MS培養(yǎng)基,將幼苗下胚軸切成0.5~1.0 cm 的小段浸入60 min,將下胚軸用濾紙吸干后轉(zhuǎn)入共培養(yǎng)基培養(yǎng)3 d,25 ℃;④轉(zhuǎn)入誘導(dǎo)培養(yǎng)基中光照培養(yǎng)14 d;其后在分化培養(yǎng)基中15 d繼代1次,至分化幼苗;再轉(zhuǎn)入篩選培養(yǎng)5~7 d繼代1次;待幼苗2~3 cm時轉(zhuǎn)入生根培養(yǎng)(培養(yǎng)基配方參考文獻[9])。
1.2.4 轉(zhuǎn)化植株的分子生物學(xué)鑒定 PCR檢測:PCR直接擴增,以轉(zhuǎn)基因kan陽性植株葉片為模板。引物為GlgC及NP TⅡ(表1)。PCR程序:98 ℃2 min;98 ℃10 s,60 ℃15 s,68 ℃1 min,40 個循環(huán);68 ℃10 min。PCR產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠水平電泳。
半定量RT-PCR檢測:取經(jīng)PCR檢測為陽性的轉(zhuǎn)基因植株葉片100 mg,提取總mRNA。按PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser說明書合成 cDNA。內(nèi)參基因為Brasicanapusactin,擴增引物為BnAc;目的片段AlgC擴增引物為GlgCsq(表1)。PCR程序:94 ℃ 5 min;94 ℃ 40 s,58 ℃ 1 min,72 ℃ 1 min,34個循環(huán);72 ℃ 延伸10 min。PCR產(chǎn)物進行瓊脂糖凝膠水平電泳。
表1 本文所涉及的引物序列
圖1 DOF克隆序列比對
1: M. DL5000 bp;2~5: pMD18T-DOF用EcoRI+SalI酶切1: M DL5000; 2-5: pMD18T-DOF digested by EcoRI+SalI
對pMD18T-DOF陽性克隆菌液測序,結(jié)果顯示成功獲得DOF基因的克隆(圖1);對pMD18T-DOF質(zhì)粒進行EcoRI+SalI雙酶切,瓊脂糖電泳得到1025 bp條帶,成功獲得連有DOF啟動子的pMD18T-DOF載體(圖2)。
2.2.1 擬南芥胚特異啟動子DOF(At4g21080)+GlgC突變基因表達載體的構(gòu)建 對轉(zhuǎn)化后鑒定的陽性正向克隆進行測序,測序驗證目標(biāo)序列與pMB-TG-XhoI(去磷酸化)載體融合表達的讀碼框正確。結(jié)果顯示成功得到重組質(zhì)粒pMB-DOF-TG(構(gòu)建流程見圖3)。
2.2.2 種子特異蛋白啟動子Cruc+GlgC突變基因表達載體的構(gòu)建 重組載體經(jīng)SacI+XbaI雙酶切驗證及測序比對,結(jié)果顯示成功構(gòu)建pMB-Cruc-TG載體(圖4)。
通過農(nóng)桿菌介導(dǎo)將GlgC基因轉(zhuǎn)入甘藍型油菜中,受體材料為油菜下胚軸,經(jīng)再生、分化及篩選,共獲得甘藍型油菜kan陽性植株228 株。
2.4.1 轉(zhuǎn)化植株的PCR鑒定 以kan陽性株DNA為模板,PCR產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠水平電泳顯示獲得750 bp NPTII及1300 bpGlgC目標(biāo)條帶。228 株kan抗性轉(zhuǎn)化株中有202 株為PCR陽性株(圖5~6)。
圖3 種子特異過表達載體pMB-DOF-TG構(gòu)建流程
2.4.2GlgC基因的RT-PCR表達與分析 結(jié)果顯示,外源導(dǎo)入的GlgC基因在PCR陽性化株內(nèi)能夠表達。圖7為部分RT-PCR產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果。
在油菜種子中淀粉與油脂都在質(zhì)體中進行合成,淀粉的降解可能為油脂的快速合成提供最近的碳源[10]。淀粉合成與環(huán)境條件、營養(yǎng)供應(yīng)密切相關(guān),淀粉在植物生長速度較慢時(如營養(yǎng)物質(zhì)缺乏,低溫等條件下)積累[11];低溫和長日照均有利于淀粉的合成與積累[12]。同樣,對油菜和擬南芥的研究顯示環(huán)境條件對種子油含量也存在相當(dāng)大的影響[13]。欒運芳等[14]的研究表明,在全國范圍內(nèi),西藏種植的油菜含油量最高,與西藏地區(qū)晝夜溫差大、日照長的環(huán)境條件密切相關(guān)。付三雄[15]在對南京(海拔8.9 m)和拉薩(海拔3652 m)2個不同海拔地區(qū)種植的甘藍型油菜高油品系H105的研究中發(fā)現(xiàn),該材料含油量在兩地分別為46.04 %±1.42 %和53.09 %±1.35 %,顯示同一品種在西藏種植時含油量更高。這一結(jié)果間接表明了淀粉與油脂合成間存在正相關(guān)關(guān)系。
另外,目的基因的組織特異性及時空表達對最終產(chǎn)物的作用效果影響極大,在過表達研究中,啟動子的選擇能直接影響預(yù)期結(jié)果。
圖4 種子特異過表達載體pMB-Cruc-TG構(gòu)建流程
1: DL15000(M);2: 陰性對照(非轉(zhuǎn)基因植株);3: 陽性對照(pMB-DOF-TG);4~25: 轉(zhuǎn)基因植株1: DL15000(M); 2: Negative control(non-transgenic plants); 3: Positive control(pMB-DOF-TG); 4-25: Transgenic plants
1:DL5000(M);2:陽性對照(pMB-Cruc-TG);3:陰性對照(非轉(zhuǎn)基因植株);4~25:轉(zhuǎn)基因植株1: DL5000(M);2: positive control(pMB-Cruc-TG); 3: Negative control(non-transgenic plants); 4-25: Transgenic plants
1:陰性對照;2:陽性對照;3~12:轉(zhuǎn)基因植株1: Transgenic lines; 2: Positive control; 3-12: Negative control
筆者在前期研究中克隆了淀粉合成途徑的關(guān)鍵酶AGPase的大腸桿菌同源基因GlgC并進行了突變,獲得突變體GlgC16基因,降低對無機磷酸鹽敏感性,并進行了質(zhì)體定位[8]。本研究在油菜AGPase小亞基導(dǎo)肽基因片段與上述GlgC突變基因構(gòu)建融合基因的基礎(chǔ)上,將GlgC突變基因分別和兩個特異表達啟動子DOF(擬南芥早期胚(球形胚階段)啟動子)、Cruc(油菜種子蛋白啟動子)重組,構(gòu)建了2個GlgC過表達載體pMB-DOF-TG和pMB-Cruc-TG,轉(zhuǎn)化農(nóng)桿菌LBA4404。通過油菜農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化體系進行轉(zhuǎn)化,并驗證了外源導(dǎo)入的GlgC基因在陽性轉(zhuǎn)基因油菜植株內(nèi)獲得表達,獲得了甘藍型油菜轉(zhuǎn)GlgC基因陽性株,為利用遺傳改良技術(shù)實現(xiàn)上述途徑在油菜育種中的應(yīng)用奠定了前期基礎(chǔ)。期望通過GlgC基因的過表達,增加淀粉含量,為胚中油脂的快速合成提供最直接的碳源,達到增加含油量的目的。