張芳娟 牛顏冰 申少斐
摘要:研究了牡丹種皮乙酸乙酯提取物對人源性乳腺癌細胞株(MCF-7)的增殖抑制率及細胞活性的影響。制備不同濃度梯度的牡丹種皮乙酸乙酯提物作用于MCF-7細胞,通過細胞形態(tài)學(xué)分析,AO/PI雙染色,MTT法和線粒體膜電位法檢測MCF-7細胞的生長活力,增殖抑制能力和線粒體膜電位變化。研究結(jié)果表明,當(dāng)牡丹種皮乙酸乙酯提物質(zhì)量濃度為5 mg/mL時,對MCF-7細胞的抑制效果最佳,細胞抑制率可達89.67%,并且在藥物作用下,細胞活性和線粒體膜電位均明顯下降。牡丹種皮乙酸乙酯提取物對乳腺癌細胞MCF-7的生長有抑制作用,能夠降低細胞活性,促使MCF-7細胞線粒體膜電位降低,誘導(dǎo)細胞產(chǎn)生凋亡現(xiàn)象。
關(guān)鍵詞:牡丹種皮;乙酸乙酯提取物;MCF-7細胞;細胞活性
中圖分類號: R284.2; R285文獻標(biāo)志碼: A
文章編號:1002-1302(2020)04-0192-05
收稿日期:2018-12-09
基金項目:山西農(nóng)業(yè)大學(xué)博士科研啟動基金(編號:2016YJ02);山西省重點研發(fā)計劃重點項目(編號:201703D211001);國家現(xiàn)代農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系(編號:CARS-21)。
作者簡介:張芳娟(1994—),女,甘肅天水人,碩士研究生,主要從事生物化學(xué)與分子生物學(xué)研究。E-mail:18306891750@163.com。
通信作者:申少斐,副教授,主要從事功能活性天然產(chǎn)物的研發(fā)和利用研究。E-mail:shenshaofei@nwafu.edu.cn。
癌癥是剝奪人類生命的重要疾病之一,全球患癌人數(shù)在不斷增加,癌癥已經(jīng)成為危害社會發(fā)展、人類生活以及健康的主要因素之一[1]。全球范圍內(nèi),每年約有120萬的女性被乳腺癌折磨,超過50%的人死亡[2],每年增加的乳腺癌患者數(shù)量達20多萬,其中青年得病率占同期患者的20%,并呈逐漸上升趨勢[3-4]。在我國癌癥排行榜中,肝癌、乳腺癌、肺癌居于前十。近年來,由于人們生活習(xí)性、飲食等方面的變化,我國乳腺癌的發(fā)生率增長近3%,對女性健康產(chǎn)生極大影響,相關(guān)部門已將其列為重點防治對象。為減弱其發(fā)病率和死亡率應(yīng)適時做一些早期檢查,同時加強女性對乳腺癌疾病的認(rèn)識[5]。
牡丹(Paeonia suffruticosa)是我國的本土花卉。2011年國家衛(wèi)生部正式將鳳丹(P.ostii T.Hong et J.X.Zhang)和紫斑牡丹(P. rockii)的籽仁油作為新資源食品應(yīng)用(中華人民共和國衛(wèi)生部2011年第9號公告)[6]。牡丹籽油中含豐富的不飽和脂肪酸[7],兼具保健和藥用價值。牡丹種皮作為牡丹榨油后的副產(chǎn)物,鮮少有關(guān)于其的應(yīng)用研究。劉普等于2014年對牡丹餅粕的化學(xué)成分進行分析,首次在該品種中分離得到10個低聚茋類化合物,并通過有機波譜分析明確了這些物質(zhì)的組成[8];Gao等于2017年對牡丹種子研究分析其10種低聚茋化合物在癌細胞中的抗增殖和抗轉(zhuǎn)移的作用,并且研究發(fā)現(xiàn)的茋類化合物(Sufffruticosol A、Sufffruticosol B、Sufffruticosol C)是牡丹種子所特有的[9]。
目前,關(guān)于牡丹種皮提取物對癌細胞作用效果的研究報道較少。本試驗以牡丹種皮乙酸乙酯提取物為研究對象,設(shè)置不同的藥物濃度梯度作用于乳腺癌MCF-7細胞,研究其對MCF-7細胞的細胞活性、增殖抑制作用等的影響,為牡丹種皮今后的藥用價值提供一定的理論依據(jù),同時增強牡丹種皮的附加價值,符合循環(huán)經(jīng)濟發(fā)展的新方向。
1?材料與方法
1.1?試驗材料
牡丹種子為山西汾河牡丹實業(yè)股份有限公司提供油用牡丹鳳丹種子;MCF-7人源性乳腺癌細胞株為中國科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院細胞資源中心提供。
DMEM培養(yǎng)基,F(xiàn)BS胎牛血清,美國GIBCO實驗室;胰蛋白酶,美國Sigma公司;雙抗,北京全式金生物技術(shù)有限公司;吖啶橙(acridine orange,簡稱AO)、碘化丙啶(propidium iodide,簡稱PI)、Hoechst33342染液、JC-1 染色劑,江蘇凱基生物技術(shù)股份有限公司;MTT、PBS緩沖液,北京索萊寶科技有限公司。其他試劑均為國產(chǎn)分析純等級。試驗所涉及細胞培養(yǎng)相關(guān)的溶液均已無菌處理。
1.2?主要儀器
CO2恒溫培養(yǎng)箱,美國Thermo公司;超凈工作臺,美國Thermo公司;移液槍,德國Eppenddorf公司;SZX16型顯微鏡,日本Olympus公司;CKX41型倒置熒光顯微鏡,日本Olympus公司;TC20自動細胞計數(shù)器,美國Thermo公司;KDC-40型離心機,安徽中科中佳科學(xué)儀器有限公司;超聲波細胞粉碎機,寧波新芝生物科技有限公司。
1.3?試驗方法
1.3.1?牡丹種皮乙酸乙酯提取物的制備
稱取適量牡丹籽粕粉末,加入60%乙醇,利用閃式提取器進行提取。將提取液離心處理后取上清,在溫度為70 ℃ 條件下減壓蒸發(fā)去除乙醇,將乙醇提取物與超純水混合,超聲完全溶解,獲得水懸液,之后放置于分液漏斗中;加適量乙酸乙酯,振蕩混勻,靜置分層,上層為乙酸乙酯層,經(jīng)一系列處理后冷凍干燥得到乙酸乙酯提取物(ZT),稱質(zhì)量。
1.3.2?細胞培養(yǎng)
采用含10%胎牛血清的DMEM高糖培養(yǎng)基,依照Song等的方法[10]在溫度為37 ℃、5% CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng),之后取對數(shù)生長期的細胞用于后續(xù)試驗研究。
1.3.3?四甲基偶氮唑鹽微量酶反應(yīng)(MTT)法檢測細胞致死率
MTT法能夠?qū)毎钚赃M行檢測[11]。MTT可使細胞線粒體中琥珀酸脫氫酶還原成較難溶的藍色結(jié)晶,之后通過二甲基亞砜(DMSO)將其溶解,在490 nm下測量吸光度(D)。本試驗通過MTT法檢測藥物作用下MCF-7細胞的致死率。
(1)取處于對數(shù)生長期的MCF-7細胞,經(jīng)胰蛋白酶消化處理后,DMEM培養(yǎng)基制成細胞懸液,接種于96孔板,每孔100 μL。(2)放入CO2恒溫培養(yǎng)箱中孵育至細胞貼壁。(3)貼壁后棄去原有培養(yǎng)液,分別加入90 μL不同質(zhì)量濃度(1、2、3、4、5 mg/mL)牡丹種皮乙酸乙酯提取物,3個重復(fù),試驗設(shè)置陰性對照組和陽性對照組,調(diào)零孔(僅含有DMEM培養(yǎng)基),放入培養(yǎng)箱培養(yǎng)。(4)藥物處理24、36、48、72 h 后,各組每孔加入MTT溶液10 μL,90 μL新鮮培養(yǎng)基,置于培養(yǎng)箱中連續(xù)孵育4~6 h。(5)棄上清,每孔加入110 μL 甲臜(formazan)溶解液,搖床上低速振蕩10 min,使結(jié)晶物完全溶解。(6)酶聯(lián)免疫檢測儀490 nm處進行每孔D值的收集,每組設(shè)定3個復(fù)孔。(7)計算相關(guān)的細胞抑制率。
細胞抑制率=(陰性對照組D值-試驗組D值)/陰性對照組D值×100%。
1.3.4?細胞染色
AO能夠透過正常細胞完整的細胞膜,在熒光顯微鏡下激發(fā)出的綠色熒光是AO與細胞中的DNA結(jié)合,而激發(fā)出的橘黃色或橘紅色熒光則是其與細胞中的RNA結(jié)合[12]。PI則無法透過正常細胞的細胞膜進入細胞內(nèi),但是能夠穿過凋亡或已經(jīng)死亡細胞破損的細胞膜進入細胞內(nèi),在熒光顯微鏡下激發(fā)出的紅色熒光是由于其嵌入到凋亡細胞雙鏈DNA中[13]。本試驗利用AO/PI雙染法[14]和Hoechst 33342染色法在顯微鏡下觀察在藥物作用下MCF-7細胞的形態(tài)變化,分析正常細胞與凋亡細胞的分布情況。
1.3.5?線粒體膜電位檢測
癌細胞內(nèi)線粒體膜電位的高低能夠表示細胞生長活性的強弱,正常的癌細胞中線粒體膜電位比較高,而細胞發(fā)生凋亡時早期的一個標(biāo)志事件即線粒體膜電位降低。JC-1熒光染料[15]通常用來檢測細胞線粒體膜電位,其以單體和多聚體的狀態(tài)與細胞結(jié)合,在顯微鏡下可呈現(xiàn)出綠色或紅色熒光。正常狀態(tài)下的細胞線粒體膜電位較高,JC-1聚集在線粒體基質(zhì)上,生成多聚體,表現(xiàn)出紅色熒光;相反,當(dāng)細胞線粒體膜電位降低時,JC-1則不能聚集,只能以單體形式存在,表現(xiàn)為綠色熒光[16]。
本試驗通過染色劑JC-1對乙酸乙酯提取物作用后的MCF-7細胞進行染色,將細胞(細胞密度為1×106 CFU/mL)接種于48孔板,次日用0、1、3 mg/mL 乙酸乙酯提取物作用于細胞。48 h后沖去原有培養(yǎng)基,加入配制好的染液,于培養(yǎng)箱中避光放置20 min。用PBS洗滌2~3次,之后在顯微鏡下觀察MCF-7細胞的線粒體膜電位變化情況。
2?結(jié)果與分析
2.1?MTT法結(jié)果
不同濃度乙酸乙酯提取物作用于MCF-7細胞72 h后細胞的形態(tài)變化情況見圖1,發(fā)現(xiàn)對照組中的細胞生長良好,呈貼壁生長狀態(tài),雜質(zhì)少,細胞輪廓較為清晰,細胞密度大;而上藥組中細胞形態(tài)發(fā)生變化,形狀變小,出現(xiàn)死亡或凋亡細胞以及細胞殘渣和廢棄物。說明乙酸乙酯提取物對MCF-7細胞有明顯的抑制作用,并且其對細胞的抑制效果隨著藥物濃度的增大而增大。
表1顯示,隨著藥物濃度和作用時間的增大,細胞抑制率呈上升趨勢,當(dāng)藥物作用72 h后,ZT質(zhì)量濃度為5 mg/mL時,藥物對細胞的抑制效率最佳,細胞抑制率為89.67%,說明牡丹種皮乙酸乙酯提取物對MCF-7細胞有明顯的抑制作用,并且抑制效果呈現(xiàn)出一定的時間依賴性和劑量依賴性。
從圖2可以看出,乙酸乙酯提取物對MCF-7細胞有較強的抑制效果,藥物質(zhì)量濃度相同時,細胞生長抑制率隨著藥物作用時間的延長而增加;藥物作用時間一定時,藥物質(zhì)量濃度越大,對細胞的抑制效果越佳。
2.2?Hoechst 33342染色
利用Hoechst 33342染液對MCF-7細胞進行活力檢測,不同濃度乙酸乙酯提取物作用下MCF-7細胞的形態(tài)變化見圖3,發(fā)現(xiàn)對照組中的細胞生長狀態(tài)正常,活性良好,細胞與染液結(jié)合,被染成均勻的藍色。而給藥組中的細胞在藥物作用下,形態(tài)產(chǎn)生變化,體積變小,與染液結(jié)合后,藍色熒光增強,并且隨著藥物濃度的增加,細胞死亡的數(shù)量越來越多。
2.3?AO/PI雙染
本試驗通過牡丹乙酸乙酯提取物對MCF-7細胞生長作用的影響來評估提取物的抗癌活性。不
同濃度乙酸乙酯提取物作用于MCF-7細胞48、72 h 后的形態(tài)變化見圖4,結(jié)果表明,對照組中激發(fā)出的綠色熒光區(qū)域較多,紅色熒光則鮮有出現(xiàn),表明細胞生長狀態(tài)良好。與對照組比較,給藥組中綠色熒光區(qū)域較少,并且變暗,而指示凋亡小體的紅色熒光則愈發(fā)明顯,隨著給藥時間的增加,紅色熒光區(qū)域不斷擴大,說明對MCF-7細胞進行給藥治療后,出現(xiàn)了細胞凋亡現(xiàn)象,且隨著作用時間和藥物濃度的增加,細胞凋亡現(xiàn)象愈加明顯。
2.4?JC-1染色
不同濃度藥物作用48 h后MCF-7細胞線粒體膜電位的變化情況見圖5,可以明顯觀察到,同正常的細胞相比,給藥組中的細胞隨著藥物濃度的增加,其熒光現(xiàn)象表現(xiàn)為紅色熒光區(qū)域逐漸變少、變暗,而綠色熒光區(qū)域增多、變亮,說明細胞內(nèi)的線粒體膜電位降低,JC-1沒有聚集于線粒體基質(zhì)內(nèi),因而被激發(fā)出綠色熒光,這種現(xiàn)象表明牡丹種皮提取物可以造成線粒體膜電位下降,誘導(dǎo)細胞產(chǎn)生凋亡,并且呈一定的劑量依賴性。
3?討論與結(jié)論
本試驗以牡丹榨油后的種皮為材料,采用乙酸乙酯溶劑對其進行提取。提取物作用于MCF-7細胞,之后通過AO/PI雙染、Hoechst 33342染色、MTT法和JC-1染色等對MCF-7細胞的細胞形態(tài)、增殖抑制率、生長活力等進行分析研究。結(jié)果發(fā)現(xiàn),乙酸乙酯提取物作用于MCF-7細胞后,細胞形態(tài)產(chǎn)生變化,形狀變小,呈渾濁狀態(tài),部分細胞死亡;細胞抑制率隨著藥物質(zhì)量濃度的增大和作用時間的延長而升高,在藥物質(zhì)量濃度為5 mg/mL,作用72 h后,細胞抑制率可達89.67%;細胞活力明顯降低。試驗結(jié)果表明,牡丹種皮乙酸乙酯提取物對MCF-7細胞的增殖作用有一定的抑制性,呈現(xiàn)出一定的劑量依賴性和時間依賴性,并且細胞線粒體膜電位也隨著藥物作用濃度的增加呈下降趨勢,綠色熒光區(qū)域增多、變亮,而紅色熒光區(qū)域逐漸變少、變暗,表明牡丹種皮乙酸乙酯提物可促使MCF-7細胞線粒體膜電位降低,誘導(dǎo)細胞產(chǎn)生凋亡。本研究為今后牡丹種皮的回收利用提供了一定的研究基礎(chǔ),可增強牡丹種皮的附加價值,符合循環(huán)經(jīng)濟發(fā)展的方向。
參考文獻:
[1]Duda D G,Duyverman A M,Kohno M,et al. Malignant cells facilitate lung metastasis by bringing their own soil[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2010,107(50):21677-21682.
[2]鄧?姍. 姜黃素及其衍生物對乳腺癌MCF-7細胞的抗腫瘤作用及其作用機制[D]. 西安:陜西師范大學(xué),2015.
[3]Rapiti E,F(xiàn)ioretta G,Vekooijen H M,et al. Surviral of young and older breast cancer patients in Geneva from 1990—2001[J]. European Journal of Cancer,2005,41(10):1446-1452.
[4]Foo C S,Su D,Chong C K,et al. Breast cancer in young Asian women:study on survival[J]. ANZ Journal of surgery,2005,75(7):566-572.
[5]陳?瑜,夏海鷗,Oakley D,等. 婦女乳腺癌及其早期篩查知識、態(tài)度、行為的相關(guān)性研究[J]. 護理研究,2007(28):34-37.
[6]中華人民共和國衛(wèi)生部. 衛(wèi)生部關(guān)于批準(zhǔn)元寶楓籽油和牡丹籽油作為新資源食品的公告[R]. 2011.
[7]劉?普,李小方,王永威,等. 油用牡丹籽餅粕中低聚茋類含量測定方法研究[J]. 中國糧油學(xué)報,2016,31(4):138-141,146.
[8]劉?普,牛亞琪,鄧瑞雪,等. 紫斑牡丹籽餅粕低聚芪類成分研究[J]. 中國藥學(xué)雜志,2014,49(12):1018-1021.
[9]Gao Y,He C. Antiproliferative and antimetastasis effects of ten oligostilbenes from the seeds of Paeonia suffruticosa on human cancer cells[J]. Oncology Letters,2017,13(6):4371-4377.
[10]Song J J,Wang Y W,Teng M Y,et al. Cordyceps militaris induces tumor cell death via the caspase-dependent mitochondrial pathway in HepG2 and MCF-7 cells[J]. Molecular Medicine Reports,2016,13(6):5132-5140.
[11]Choudhary G K,Singh S P. Cytotoxic potential of rhizome extracts of Hedychium spicatum L. in HepG2 cell line using MTT[J]. Indian Journal of Animal Sciences,2017,87(3):313-315.
[12]Liu M,Li R,Tang Y,et al. New applications of the acridine orange fluorescence staining method:screening for circulating tumor cells[J]. Oncology Letters,2017,13(4):2221-2229.
[13]Zhang N,F(xiàn)an Y X,Li C,et al. Cell permeability and nuclear DNA staining by propidium iodide in basidiomycetous yeasts[J]. Applied Microbiology and Biotechnology,2018,102(9):4183-4191.
[14]Liu W M,Li L,Wang J C,et al. Dynamic trapping and high-throughput patterning of cells using pneumatic microstructures in an integrated microfluidic device[J]. Lab on a Chip,2012,12(9):1702-1709.
[15]Wolosin J M,Zamudio A,Wang Z. Application of JC1 for non-toxic isolation of cells with MDR transporter activity by flow cytometry[J]. PLoS One,2017,12(4):e0174905.
[16]Hu C,Zhuang X,Wei Y,et al. Comparison of mitochondrial function in boar and bull spermatozoa throughout cryopreservation based on JC-1 staining[J]. Cryo Letters,2017,38(1):75-79.