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      黃芪甲苷免疫親和色譜介質(zhì)的制備及應(yīng)用

      2020-04-10 06:57:04黃陳于生蘭徐加兵
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2020年3期

      黃陳 于生蘭 徐加兵

      摘要:旨在提出1種新的具有高靈敏度、特異性抗黃芪甲苷(AST)單克隆抗體的純化方法,從而為制備具有類似活性基團(tuán)的其他天然化合物的親和層析樹脂方法提供參考。用AST與環(huán)氧活化瓊脂糖6B(EAS6B)偶聯(lián)制備的免疫親和柱從小鼠腹水中純化抗AST的高敏單克隆抗體(mAbs),與用G-葡聚糖凝膠從小鼠腹水中純化的抗AST單克隆抗體進(jìn)行比較,通過間接ELISA(酶聯(lián)免疫吸附測定)和間接競爭ELISA比較2種方法純化的單克隆抗體,評價親和培養(yǎng)基的效用。間接ELISA結(jié)果顯示,用AST-EAS6B柱純化的抗AST單克隆抗體的效價略高于用G-葡聚糖凝膠柱純化的抗體效價;間接競爭ELISA結(jié)果顯示,用AST-EAS6B柱純化的抗AST單克隆抗體的結(jié)合抑制50%濃度(IC50)為 0.005 μg/mL,用G-葡聚糖凝膠柱純化的抗AST單克隆抗體的IC50為0.05 μg/mL,用AST-EAS6B柱純化的抗AST單克隆抗體比用G-葡聚糖凝膠柱純化的抗AST單克隆抗體對AST更具有特異性。

      關(guān)鍵詞:親和色譜層析介質(zhì);黃芪甲苷;環(huán)氧活化瓊脂糖凝膠6B;ELISA;SDS-PAGE

      中圖分類號: O657.7 ?文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A ?文章編號:1002-1302(2020)03-0218-04

      目前純化抗體的方法主要包括不同組合的G蛋白純化、離子交換法和排阻色譜技術(shù)等[1]。然而,這些方法有時不能有效分離出某些特異性抗體[2]。因此,使用這些非特異性純化方法分離的抗體還不能完全滿足許多研究應(yīng)用的要求[3]。免疫親和色譜(IAC)是一種液相色譜,其中固定相由抗體或抗原試劑組成,該技術(shù)代表親和色譜的一個特殊亞類,其中的生物相關(guān)結(jié)合劑用于選擇性純化或分析目標(biāo)化合物[4]。由于抗體與它們各自的靶標(biāo)能夠選擇性和特異性結(jié)合,這使它們作為親和色譜中的固定配體多年來倍受關(guān)注。IAC使用的主要方法是利用固定化靶標(biāo)進(jìn)行抗體純化[5]。

      黃芪甲苷(astragaloside Ⅳ,簡稱AST)是中藥黃芪藥理活性的主要物質(zhì)之一,為黃芪及其制劑質(zhì)量鑒定的指標(biāo)成分。藥理研究結(jié)果表明,AST具有調(diào)節(jié)機(jī)體免疫力、保護(hù)組織器官、降低血糖、抗細(xì)胞凋亡和抗炎抗病毒等多方面的作用,具有非常廣闊的發(fā)展前景[6]。本研究以黃芪甲苷為配體,采用環(huán)氧活化瓊脂糖6B(EAS6B)親和色譜法,從小鼠腹水中純化抗AST單克隆抗體。用間接酶聯(lián)免疫吸附測定(enzyme linked immunosorbent assay,簡稱ELISA)和間接競爭ELISA對用AST-EAS6B純化的抗體與用G-葡聚糖親和色譜純化的抗體的效價和特異性進(jìn)行比較。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      AST標(biāo)準(zhǔn)品,成都曼特生物技術(shù)有限公司(成都);3,3′,5,5′-四甲基聯(lián)苯胺(TMB)底物緩沖液,北京索萊寶科技有限公司(北京);辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記山羊抗小鼠IgG+[免疫球蛋白(IgG)二抗],武漢博斯特生物科技有限公司(武漢);環(huán)氧活化瓊脂糖6B,購自Sigma-Aldrich(圣路易斯,美國);本研究所用其他化學(xué)藥品均購自中國藥品化學(xué)試劑有限公司(北京)。

      AST-卵清蛋白(AST-OVA)和含有抗AST單克隆抗體的小鼠腹水,由筆者所在實(shí)驗(yàn)室制備,前期筆者所在研究團(tuán)隊對黃芪甲苷人工抗原的合成與評價進(jìn)行了研究[7]。

      1.2 方法

      1.2.1 親和介質(zhì)的制備(AST-EAS6B) AST在固體載體上的共價偶聯(lián)是根據(jù)制造商對環(huán)氧活化的瓊脂糖凝膠6B(Sigma-Aldrich)和相關(guān)文獻(xiàn)的說明進(jìn)行的。方法如下:將0.2 g EAS6B懸浮在 50 mL 蒸餾水中,在溶脹后(1 g凍干粉末約產(chǎn)生 3.5 mL 最終體積的介質(zhì)),用200 mL蒸餾水洗滌介質(zhì)1 h;將10 mg AST溶于5.1 mL甲醇(體積分?jǐn)?shù)為80%,pH值為11.0)中,將含有AST的溶液與介質(zhì)在塞式容器中混合,并在40 ℃下于水浴中振搖 16 h,過量AST用甲醇(體積分?jǐn)?shù)為80%)洗滌。然后將培養(yǎng)基轉(zhuǎn)移至1 mol/L乙醇胺(pH值為8)中,于50 ℃過夜。最后,用 1 mol/L Tris-HCl緩沖液(pH值為8,含有 0.5 mol/L NaCl)徹底沖洗產(chǎn)品3次??瞻捉橘|(zhì)(指未用AST耦合的環(huán)氧活化瓊脂糖凝膠6B介質(zhì))的具體制備方法如下:將0.2 g EAS6B懸浮在50mL蒸餾水中,溶脹后(1 g凍干粉末產(chǎn)生約3.5 mL最終體積的介質(zhì))用200 mL蒸餾水洗滌介質(zhì)1 h;然后將培養(yǎng)基轉(zhuǎn)移至1 mol/L乙醇胺(pH值為8)中,于50 ℃過夜;最后用1 mol/L Tris-HCl緩沖液(pH值為8,含有0.5 mol/L NaCl)徹底沖洗產(chǎn)品3次。

      1.2.2 抗AST單克隆抗體的純化 為了用AST-EAS6B純化抗AST抗體,本試驗(yàn)制備了免疫親和色譜柱,從含抗AST單抗的5 mL小鼠腹水中純化了活性抗AST單抗。將AST-EAS6B介質(zhì)裝入1個普通的固相萃取柱中,上部、下部裝上篩板。對固相萃取流出液進(jìn)行收集,并利用紫外分光光度計(Huxi HD-21-2)進(jìn)行分析。用偶聯(lián)緩沖液洗滌柱子,直到流出液在280 nm處的吸光度為0。然后,用10倍柱體積的純化水沖洗,并用10倍柱體積的0.01 mol/L磷酸鹽緩沖液(NaH2PO4/Na2HPO4,pH值為7.0)平衡。用20 mL平衡緩沖液稀釋含抗AST單抗的小鼠腹水(5 mL),以0.3 mL/min的流速裝入柱中。樣品裝入后,用10倍柱體積的平衡緩沖液沖洗,然后用洗脫緩沖液(0.1 mol/L甘氨酸緩沖液,pH值為2.7)洗脫mAb(單克隆抗體,指AST單抗),直到流出液在280 nm處的吸光度為0,洗脫的抗體立即用Tris堿中和。用G-葡聚糖凝膠純化單克隆抗體時,將G-葡聚糖凝膠裝入固相萃取柱中,上部、下部裝上篩板,后續(xù)方法與上述用AST-EAS6B純化抗AST抗體的方法相同。為了比較,使用“1.2.1”節(jié)的空白介質(zhì)制備的柱純化5 mL小鼠腹水作為對照。純化后,用十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE,10%丙烯酰胺)分離,用考馬斯亮藍(lán)(CBB)染色,用微量蛋白UV定量儀測定純化的單克隆抗體濃度[8-9]。

      1.2.3 間接ELISA和間接競爭ELISA檢測抗AST單克隆抗體 用間接ELISA檢測時,將AST-OVA用0.05 mol/L碳酸鹽緩沖液(pH值為9.6)溶解成濃度為1.25 μg/mL,包裹在96孔微量滴定板(美國康寧公司)上,于4 ℃孵育過夜;用含0.05%吐溫20的磷酸鹽吐溫緩沖液沖洗3次,再用1%(m/V)脫脂奶粉在37 ℃磷酸鹽緩沖液中封閉1 h,封閉非特異性蛋白結(jié)合位點(diǎn)。將純化的單克隆抗體、陰性對照組(生理鹽水)和空白對照組(用相同方法純化的無單克隆抗體的正常小鼠腹水)在磷酸鹽緩沖液中稀釋至1 ∶ 1 000~1 ∶ 50 000,每孔加入100 μL,1式3份。將微孔滴板在37 ℃下孵育60 min,用磷酸鹽吐溫緩沖液洗滌,在每個孔中加入1 ∶ 5 000稀釋的辣根過氧化物酶(HRP)標(biāo)記山羊抗小鼠IgG+。將平板在37 ℃下孵育1 h,洗凈,加入TMB基質(zhì)溶液(含0.2 mg/mL TMB,將50 μL 30% H2O2溶解在10 mL 0.1 mol/L檸檬酸鹽-0.2 mol/L磷酸鹽緩沖液中,pH值為 5.2),將平板在室溫下孵育30 min,用50 μL 2 mol/L H2SO4終止反應(yīng),使用BioTek ELx800 ELISA閱讀器在450 nm波長下測量吸光度[10],試驗(yàn)1式3份,以平均值作為最終值。用間接競爭ELISA(idcELISA)方法檢測純化的抗AST單克隆抗體的特異性時,以50 μL連續(xù)稀釋的AST為競爭物,與50 μL最佳稀釋的純化抗AST單克隆抗體一同加入微孔中,1式2份。在陽性對照孔中,抗AST單克隆抗體沒有添加任何競爭物AST,其他步驟與間接ELISA所描述的步驟相同。

      2 結(jié)果與分析

      在抗AST單克隆抗體的純化步驟中,從加入 5 mL 小鼠腹水開始,將純化的mAb冷凍干燥、稱質(zhì)量。結(jié)果表明,用AST-EAS6B柱純化的抗AST單克隆抗體為2.9 mg,用G-葡聚糖凝膠柱純化的抗AST單克隆抗體為3.5 mg。用磷酸緩沖鹽溶液將2種方法純化的mAb稀釋到1 mg/mL的濃度,用間接ELISA法檢測抗AST抗體的效價,用間接競爭ELISA法測定抗AST抗體的敏感度。如表1、圖1所示,用AST-EAS6B柱純化的抗AST單克隆抗體的效價大于25 600,而用G-葡聚糖凝膠柱純化的抗AST單克隆抗體的效價約為18 000。由圖2可以看出,用AST-EAS6B柱純化的抗AST單克隆抗體的效價略高于用G-葡聚糖凝膠柱純化的抗體效價。間接競爭ELISA結(jié)果(表2、圖2)顯示,用 AST-EAS6B 柱純化的抗AST單克隆抗體的結(jié)合抑制50%濃度(IC50)為0.005 μg/mL,用G-葡聚糖凝膠柱純化的抗AST單克隆抗體的IC50為 0.05 μg/mL。間接ELISA、間接競爭ELISA檢測結(jié)果表明,陰性對照的D450 nm顯著低于抗AST單克隆抗體的D450 nm(P<0.05)。最終值采用3個重復(fù)的平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差。以上結(jié)果表明,用AST-EAS6B純化的抗AST單克隆抗體比用G-葡聚糖凝膠柱純化的抗AST單克隆抗體對AST更具有特異性。

      3 討論

      在筆者之前的研究中,從小鼠腹水中純化抗AST單克隆抗體是用一些非特異性的方法,如蛋白G的不同組合、離子交換和排阻色譜技術(shù)。這些用非特異性方法純化的單克隆抗體對于現(xiàn)實(shí)的研究和應(yīng)用來說不夠靈敏,而且純化耗時較長。當(dāng)有足夠量的抗原被固定時,能夠提供較強(qiáng)的結(jié)合力,基于固定抗原的親和層析技術(shù)是非常有效的[11]。在本研究中,1 mL ESA6B約耦合1.35 mg AST,并且高的耦合速率確保了AST-EAS6B柱的強(qiáng)結(jié)合能力。當(dāng)用AST與環(huán)氧活化瓊脂糖6B(EAS6B)偶聯(lián)制備的免疫親和柱制備完成后,用該方法從小鼠腹水中純化抗AST單克隆抗體能夠獲得高效價、高特異性的抗體。純化抗AST單克隆抗體的結(jié)果表明,固定化AST親和色譜可以選擇性地捕獲與AST特異結(jié)合的蛋白質(zhì),能夠有效地完成變性抗體的排除和活性抗體的特異性捕獲。本研究結(jié)果為進(jìn)一步研究高靈敏度、高效價的抗AST單克隆抗體奠定了基礎(chǔ),如ELISA檢測AST的定量檢測方法的建立。此外,基于其選擇性捕獲與AST結(jié)合的蛋白的能力,固定化AST親和層析可用于鑒定不同組織中的AST靶點(diǎn)[12]。本研究還提供了1種制備具有類似活性基團(tuán)的其他天然化合物的親和層析樹脂的方法。

      參考文獻(xiàn):

      [1]Manfredi M,Severino M,Testi S,et al. Detection of specific IgE to quinolones[J]. Journal of Allergy and Clinical Immunology,2004,113(1):155-160.

      [2]Craig A P,F(xiàn)ranca A S,Oliveira L S,et al. Application of elastic net and infrared spectroscopy in the discrimination between defective and non-defective roasted coffees[J]. Talanta,2014,128:393-400.

      [3]Dawes C C,Jewess P J,Murray D A. Thiophilic paramagnetic particles as a batch separation medium for the purification of antibodies from various source materials[J]. Analytical Biochemistry,2005,338(2):186-191.

      [4]El Khoury G,Lowe C R. A biomimetic protein G affinity adsorbent:an Ugi ligand for immunoglobulins and Fab fragments based on the third IgG-binding domain of protein G[J]. Journal of Molecular Recognition,2013,26(4):190-200.

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