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    缺血再灌注條件下內(nèi)皮祖細(xì)胞促進(jìn)單核/巨噬細(xì)胞向M1 型極化的研究

    2020-03-27 02:50:26金梅花董儉達(dá)
    關(guān)鍵詞:單核共培養(yǎng)分子

    程 華,金梅花,董儉達(dá)

    1寧夏醫(yī)科大學(xué)總醫(yī)院心血管內(nèi)科,寧夏 銀川 750000;2寧夏醫(yī)科大學(xué)病理學(xué)系,寧夏 銀川 750004

    隨著人民生活水平的提高,我國心血管疾病的發(fā)病率和死亡率均顯著升高,給社會(huì)和家庭帶來了極大的負(fù)擔(dān)[1]。血管內(nèi)支架植入疏通了堵塞的血管,顯著改善患者的臨床癥狀,然而血管再通后的缺血再灌注(ischemia reperfusion,I/R)會(huì)激活單核/巨噬細(xì)胞,促進(jìn)其向損傷部位浸潤和釋放炎癥分子,引起心律失常和心肌細(xì)胞進(jìn)一步損傷等嚴(yán)重后果[2]。因此,調(diào)控炎癥反應(yīng)對(duì)于治療I/R 損傷至關(guān)重要。炎癥反應(yīng)與血管生成緊密相關(guān),低強(qiáng)度的炎癥反應(yīng)會(huì)誘導(dǎo)內(nèi)皮祖細(xì)胞(endothelial progenitor cells,EPC)從骨髓動(dòng)員[3]。EPC 是內(nèi)皮細(xì)胞的前體干細(xì)胞,能歸巢到血管損傷部位,促進(jìn)再內(nèi)皮化和發(fā)揮細(xì)胞保護(hù)作用[4]。EPC表面則表達(dá)有3個(gè)促炎分子:細(xì)胞間黏附分子?1(intercellular adhesion molecule ?1,ICAM?1)、血管細(xì)胞黏附分子?1(vascular cell adhe?sion molecule?1,VCAM?1)和E?選擇素,介導(dǎo)了EPC與單核/巨噬細(xì)胞之間的相互作用。然而在I/R條件下,EPC與單核/巨噬細(xì)胞相互作用還未見相關(guān)報(bào)道。

    1 材料和方法

    1.1 材料

    RPMI1640 培養(yǎng)基、胎牛血清、EGM?2 完全培養(yǎng)基和胰酶(Hyclone 公司,美國);人淋巴細(xì)胞分離液(天津TBD公司);CCR7、CD206、CD14磁珠、ICAM?1、VCAM?1 和E?選擇素流式檢測(cè)抗體(BD 公司,美國);ICAM?1、VCAM?1、E?選擇素ELISA 試劑盒(深圳欣博盛生物科技公司)。

    1.2 方法

    1.2.1 細(xì)胞分離和培養(yǎng)

    取健康志愿者的外周血,通過梯度離心的方法分離出單個(gè)核細(xì)胞,一部分細(xì)胞置入EGM?2 完全培養(yǎng)基中進(jìn)行培養(yǎng),連續(xù)培養(yǎng)7 d;另一部分細(xì)胞采用CD14 磁珠進(jìn)行分選,PBS 清洗3 次后,將分選的細(xì)胞置于含有10%胎牛血清的RPMI1640 培養(yǎng)基中培養(yǎng)。

    1.2.2 體外缺血再灌注損傷模型構(gòu)建

    采用文獻(xiàn)報(bào)道的方法構(gòu)建I/R 損傷模型[5]。EPC培養(yǎng)7 d后,棄上清,PBS清洗3次。之后加入不含葡萄糖的D?Hank's 溶液,將其置于通有95%N2、5% CO2的37 ℃培養(yǎng)箱中缺氧培養(yǎng)3 h。之后更換為正常培養(yǎng)基,置于通有95%O2、5%CO2的培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)24 h,設(shè)置為I/R組。

    1.2.3 EPC促炎分子檢測(cè)

    EPC I/R 損傷處理24 h 后,用胰酶消化。加入ICAM?1、VCAM?1 和E?選擇素流式細(xì)胞檢測(cè)抗體,室溫孵育15 min,PBS 清洗3 次后,在流式細(xì)胞儀上檢測(cè)各個(gè)分子表達(dá)的平均熒光強(qiáng)度(mean fluores?cence intensity,MFI)。同時(shí)收集細(xì)胞培養(yǎng)上清,ELI?SA檢測(cè)上清中ICAM?1、VCAM?1和E?選擇素的含量。

    1.2.4 細(xì)胞共培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)

    采用Transwell 小室進(jìn)行EPC 和單核/巨噬細(xì)胞共培養(yǎng)。EPC培養(yǎng)7 d后,分為5組:對(duì)照組(EPC細(xì)胞與單核/巨噬細(xì)胞共培養(yǎng))、I/R組(I/R損傷EPC細(xì)胞與單核/巨噬細(xì)胞共培養(yǎng))、ICAM?1阻斷組(I/R 損傷EPC 細(xì)胞與單核/巨噬細(xì)胞共培養(yǎng),同時(shí)加入ICAM?1 中和抗體)、VCAM?1 阻斷組(I/R 損傷EPC細(xì)胞與單核/巨噬細(xì)胞共培養(yǎng),同時(shí)加入VCAM?1中和抗體)和E?選擇素阻斷組(I/R 損傷EPC 細(xì)胞與單核/巨噬細(xì)胞共培養(yǎng),同時(shí)加入E?選擇素中和抗體)。共培養(yǎng)48 h 后,收集上室的單核/巨噬細(xì)胞,加入CCR7 和CD206 流式細(xì)胞檢測(cè)抗體,室溫孵育15 min,PBS 清洗3 次后,在流式細(xì)胞儀上檢測(cè)CD14+CCR7+M1單核/巨噬細(xì)胞和CD14+CD206+M2單核/巨噬細(xì)胞比例。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

    使用SPSS 22.0 進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,結(jié)果用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤()表示,兩組之間的比較采用t檢驗(yàn),P≤0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 缺血再灌注條件下EPC細(xì)胞表面促炎分子E?選擇素表達(dá)增加

    流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果顯示對(duì)照組EPC 表面ICAM?1 和VCAM?1 平均熒光強(qiáng)度分別為1 214 和3.380,I/R 組為1 282 和5.023,兩組之間沒有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(t=0.354,P=0.742;t=1.322,P=0.257);對(duì)照組EPC 表面E?選擇素平均熒光強(qiáng)度為10.89,缺血再灌注組為33.93,兩組之間具有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(t=3.895,P=0.018,圖1)。

    2.2 缺血再灌注條件下EPC 促炎分子E?選擇素分泌增加

    ELISA 檢測(cè)結(jié)果(圖2)顯示對(duì)照組EPC 上清中ICAM?1 和VCAM?1 濃度分別為178.0、0.740 ng/mL,I/R 組為199.3、0.903 ng/mL,兩組之間沒有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(t=0.518,P=0.632;t=0.409,P=0.704);對(duì)照組EPC 上清中E?選擇素濃度為3.69 ng/mL,I/R 組為18.17 ng/mL,兩組之間具有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(t=4.568,P=0.010)。

    2.3 缺血再灌注條件下EPC促進(jìn)單核/巨噬細(xì)胞向M1型極化

    流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果(圖3)顯示對(duì)照組CD14+CCR7+M1 型單核/巨噬細(xì)胞比例為58.83%,I/R 組為81.43%,兩組之間具有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(t=5.394,P=0.006);ICAM?1 阻斷組和VCAM?1 阻斷組M1 型單核/巨噬細(xì)胞比例分別為79.10%和76.93%,相對(duì)于I/R 組,沒有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(t=0.531,P=0.622;t=1.061,P=0.348);E?選擇素阻斷組M1 型單核/巨噬細(xì)胞比例為59.70%,相對(duì)于I/R 組,結(jié)果具有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(t=5.950,P=0.004)。

    2.4 缺血再灌注條件下EPC 抑制單核/巨噬細(xì)胞向M2型極化

    流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果(圖4)顯示對(duì)照組CD14+CD206+M2型單核/巨噬細(xì)胞比例為60.57%,I/R組為35.30%,兩組之間具有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(t=6.424,P=0.003);ICAM?1 阻斷組和VCAM?1 阻斷組M2 型單核/巨噬細(xì)胞比例分別為42.47%和42.03%,相對(duì)于I/R 組,沒有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(t=2.676,P=0.055;t=1.838,P=0.140);E?選擇素阻斷組M2 型單核/巨噬細(xì)胞比例為59.07%,相對(duì)于I/R 組,結(jié)果具有顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(t=4.179,P=0.014)。

    3 討論

    心血管疾病是威脅我國人民生命和健康的最大殺手,據(jù)統(tǒng)計(jì)目前我國心血管疾病患病人數(shù)近3億,死亡率居首位,高于腫瘤和其他疾病,占居民疾病死亡構(gòu)成的40%以上。近十年,藥物洗脫支架在臨床廣泛應(yīng)用,使得很多患者能夠得到及時(shí)救治,顯著緩解其臨床癥狀[6]。然而血管再通后的I/R 損傷會(huì)釋放大量的氧自由基,損傷的細(xì)胞則會(huì)釋放大量的炎癥分子,誘導(dǎo)單核/巨噬細(xì)胞向I/R 損傷部分浸潤[7]。單核/巨噬細(xì)胞分為M1型和M2型2種,M1型為促炎型單核/巨噬細(xì)胞,能夠分泌大量的炎癥分子,包括腫瘤壞死因子?α(tumor necrosis factor?α,TNF?α)和IL?6等,這些升高的炎癥分子能夠損傷血管內(nèi)皮細(xì)胞,加劇炎癥反應(yīng);M2 型為組織修復(fù)型單核/巨噬細(xì)胞,能夠分泌血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)和轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子?β(transforming growth factor,TGF?β)等,促進(jìn)組織損傷的修復(fù)和血管生成[8]。本研究發(fā)現(xiàn)在I/R條件下,EPC 能夠促進(jìn)單核/巨噬細(xì)胞向M1 型極化,引起缺血組織的進(jìn)一步損傷,這為I/R 損傷提供了一個(gè)新的機(jī)制。

    炎癥反應(yīng)與血管生成緊密相關(guān),EPC和單核/巨噬細(xì)胞之間相互作用。低強(qiáng)度的炎癥反應(yīng)能夠誘導(dǎo)血管生成,過度或者持續(xù)的炎癥反應(yīng)則會(huì)損傷血管內(nèi)皮細(xì)胞[9]。M2 型單核/巨噬細(xì)胞能夠分泌大量促血管生成分子,比如VEGF 和TGF?β等。通過誘導(dǎo)單核/巨噬細(xì)胞向M2型極化能夠促進(jìn)損傷血管內(nèi)皮細(xì)胞層的修復(fù)和組織的再生修復(fù)[10]。EPC表面則表達(dá)有3個(gè)促炎分子:ICAM?1、VCAM?1和E?選擇素,介導(dǎo)了EPC與單核/巨噬細(xì)胞之間的相互作用[11]。本研究發(fā)現(xiàn)在I/R 損傷條件下,E?選擇素表達(dá)和分泌會(huì)顯著升高,而ICAM?1和VCAM?1 則沒有顯著的差異。在損傷的情況下,內(nèi)皮細(xì)胞會(huì)高表達(dá)和大量分泌E?選擇素進(jìn)入外周血,誘導(dǎo)動(dòng)脈粥樣硬化的發(fā)生[11]。本研究發(fā)現(xiàn)EPC能夠通過高表達(dá)和分泌E?選擇素,促進(jìn)單核/巨噬細(xì)胞向M1 型極化,加劇局部的炎癥反應(yīng),這說明I/R 條件下,EPC 和單核/巨噬細(xì)胞之間的相互作用是通過E?選擇素來介導(dǎo)的。因此,在I/R 損傷治療中,應(yīng)該注意調(diào)控EPC 表面E?選擇素的表達(dá)。

    綜上,本研究發(fā)現(xiàn)在I/R 損傷條件下,EPC 能夠通過高表達(dá)和分泌E?選擇素,促進(jìn)單核/巨噬細(xì)胞向M1型極化,為I/R損傷的治療提供了新靶點(diǎn)。

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