符可芯, 楊葉, 曾耿狄
(1.海南大學(xué)生命科學(xué)與藥學(xué)院, ???570228; 2.海南大學(xué)植物保護學(xué)院, 海南省熱帶生物資源可持續(xù)利用重點實驗室, ???570228)
銅(Cu)是生物體必需的微量元素,Cu 缺乏或過量都會影響動植物和人類的生長發(fā)育[1-2]。在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)中,為了提高作物產(chǎn)量大量使用含銅化肥和農(nóng)藥,其不合理使用導(dǎo)致土壤中Cu濃度增加[3-4],土壤中銅的含量過高導(dǎo)致生態(tài)環(huán)境發(fā)生惡化[5]。在污染土壤中的Cu經(jīng)植物吸收后,可抑制植物的光合作用,導(dǎo)致其生長遲緩和葉萎黃[1,6-7]。銅污染食品經(jīng)人類食用后可在人體內(nèi)過量累積導(dǎo)致人體機能受到損傷,引發(fā)疾病[4]。研究表明,在人體內(nèi)高濃度銅可損傷其消化道引起急性胃腸炎,損傷呼吸道引起肺部感染等疾病[8]。土壤重金屬污染危及生態(tài)環(huán)境安全以及人類健康,因此,對其進行修復(fù)具有重大意義。
目前,利用微生物修復(fù)土壤重金屬污染是土壤治理的研究熱點,具有廣闊的發(fā)展前景。微生物具代謝途徑豐富多樣性,并進化出多種抵抗重金屬毒性的機制,如微生物可通過生物累積、生物礦化、生物吸附和生物轉(zhuǎn)化等機制對重金屬進行吸附、沉淀、氧化和還原,因此,可以利用微生物對重金屬的抗性機制對環(huán)境中的重金屬污染進行修復(fù)[9]。在微生物修復(fù)重金屬污染的研究中,細菌類微生物以芽孢桿菌為主。該類細菌產(chǎn)芽孢,好氧或兼性厭氧,抗逆性強,可在極端環(huán)境下生存[10]。研究報道,芽孢桿菌對Cu2+、Cd2+、Cr3+、Cu2+、Pb2+等多種重金屬具有抗性,在含有重金屬的培養(yǎng)基中可正常生長[11-12]。Kumari等[13]從我國新疆一個酸性銅礦尾礦分離得到三株芽孢桿菌,對Cu、Cr、Pb、Cd、Sb 和Ni六種重金屬都具有較強的抗性。康薇等[14]分離得到一株芽孢桿菌TLSB-2-K,對銅的最高耐受濃度為700 mg·L-1,該菌株分別在銅濃度為200和300 mg·L-1的培養(yǎng)基中脅迫培養(yǎng)30 h后,菌體銅含量分別為2 078.2 mg·kg-1和2 188.4 mg·kg-1,具有較高的銅吸附能力。芽孢桿菌在土壤環(huán)境中廣泛存在,是被廣泛研究的生防微生物之一,也是重金屬污染的微生物修復(fù)技術(shù)中的重要微生物資源。
微生物修復(fù)法具有來源廣、成本低、操作簡單、無二次污染等優(yōu)點[9,15-16]。由于微生物本身的性質(zhì)特點,微生物修復(fù)法也存在局限性。微生物受環(huán)境溫度、pH及營養(yǎng)物質(zhì)等條件的影響,在土壤環(huán)境中不易存活及繁殖,導(dǎo)致微生物對重金屬污染土壤的修復(fù)效果不穩(wěn)定。如何提供微生物菌種適宜的營養(yǎng)物質(zhì)及生存環(huán)境條件在微生物修復(fù)法技術(shù)存在著重要地位。筆者在前期工作中分離得到1株銅富集細菌HNU1菌株,采用生理生化和分子生物學(xué)鑒定HNU1菌株為解淀粉芽孢桿菌。以HNU1菌株的生物量為評估指標(biāo),對該菌的培養(yǎng)基成分和搖瓶發(fā)酵條件進行優(yōu)化,確定該菌的最適培養(yǎng)基成分及最適培養(yǎng)條件,為進一步開發(fā)為微生物肥料及其應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。
1.1.1菌種和質(zhì)粒 HNU1菌株由海南大學(xué)熱帶農(nóng)林學(xué)院微生物實驗室從海南儋州分離并保存。大腸桿菌感受態(tài)DH5α菌株和pMD18-T載體均購自TaKaRa公司。
1.1.2主要試劑和儀器 DNA 凝膠回收純化試劑盒(Ver 2.0)、PCR 反應(yīng)用的各種試劑均購自大連TaKaRa公司(日本);DNA 提取用試劑盒購自天根生化科技(北京)有限公司。
LB基礎(chǔ)培養(yǎng)基(1 L):蛋白胨10 g、酵母提取物5 g、氯化鈉10 g、pH 7.0~7.2。
全自動生物顯微鏡(LEICA DM6B),廣東省中科進口有限公司(德國);紫外分光光度計(T6新世紀(jì)),北京普析通用儀器有限責(zé)任公司。
在LB平板上對HNU1菌株的菌落邊緣、形狀和顏色等形態(tài)特征進行觀察,進行革蘭氏染色、淀粉水解反應(yīng)、甲基紅反應(yīng)、V-P反應(yīng)、吲哚反應(yīng)、糖類發(fā)酵試驗、脲酶反應(yīng)、硝酸鹽還原反應(yīng)和檸檬酸鹽利用反應(yīng)等生理生化試驗[17]。
將HNU1菌株接種至LB液體培養(yǎng)基,在30 ℃、160 r·min-1震蕩培養(yǎng)18 h,用1.5 mL離心管吸取1 mL菌液,12 000 r·min-1離心2 min,棄上清,獲得菌體沉淀。利用TIANGEN細菌基因組DNA 提取試劑盒提取HNU1菌株的基因組DNA。以基因組DNA為模板,用正向引物27F(5′-AGAGTTTGATCCTGGCTGGCTCAG-3′)和反向引物1492R(5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′)進行PCR反應(yīng),擴增菌株的16S rDNA序列[18]。PCR擴增產(chǎn)物經(jīng)0.8%瓊脂糖凝膠電泳 后,用DNA 膠回收試劑盒進行純化回收。回收產(chǎn)物連接到18T載體并轉(zhuǎn)化到大腸桿菌的感受態(tài)細胞中。將轉(zhuǎn)化后的感受態(tài)細胞進行恢復(fù)培養(yǎng)后,吸取微量菌液涂布在含有氨芐抗生素的LB平板上,在37 ℃下培養(yǎng)12~24 h。待平板上長出菌落后,挑取形態(tài)較大的菌落進行菌落PCR反應(yīng),1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,挑取具有陽性電泳條帶的菌落,在含有氨芐抗生素的LB液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)12 h后,吸取適量菌液送至測序公司進行測序。測序由賽默飛世爾科技(中國)有限公司完成。從EzTaxon-server(http://eztaxon-e.ezbiocloud)獲得與HNU1菌株親緣關(guān)系相近的菌株16S rDNA序列,利用Mega 7.0 軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹[19]。
1.3.1溫度 以LB液體培養(yǎng)基為發(fā)酵培養(yǎng)基,裝液量為20 mL(錐形瓶容量為50 mL),121 ℃滅菌 20 min。以1%(體積分數(shù))的接種量接種至培養(yǎng)液中,設(shè)定溫度為20、25、30、37、40、45、50 ℃,180 r·min-1振蕩培養(yǎng)24 h,每個處理3次重復(fù),用紫外可見分光光度計測定菌液在600 nm處的OD值。
1.3.2pH 用滅菌的0.1 mol·L-1HCl和 0.1 mol·L-1NaOH 將培養(yǎng)基的pH分別調(diào)至4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0、10.0,在最適溫度、180 r·min-1振蕩培養(yǎng)24 h,每個處理3次重復(fù),測定OD600值。
1.3.3接種量 將培養(yǎng)基調(diào)至最適pH,在培養(yǎng)基中分別加入0.1%、0.5%、0.7%、1%、1.5%、2%的種子液,在最適溫度、180 r·min-1振蕩培養(yǎng)24 h,每個處理3次重復(fù),測定OD600值。
1.3.4轉(zhuǎn)速 將培養(yǎng)基調(diào)至最適pH,按最適的接種量接種,分別調(diào)節(jié)搖床轉(zhuǎn)速為 120、150、180、210、240 r·min-1,在最適溫度下震蕩培養(yǎng)24 h,每個處理3次重復(fù),測定OD600值。
1.3.5裝液量 將培養(yǎng)基調(diào)至最適pH,用50 mL的錐形瓶依次裝有 10、20、25、30、40 mL培養(yǎng)液,按最適接種量接種,在最適溫度、最適轉(zhuǎn)速的條件下振蕩培養(yǎng)24 h,每個處理3次重復(fù),測定OD600值。
選用LB培養(yǎng)基作為基礎(chǔ)培養(yǎng)基,進行培養(yǎng)基成分優(yōu)化的單因素篩選試驗。
1.4.1碳源及其濃度 分別添加1%的葡萄糖、玉米淀粉、馬鈴薯淀粉、麥芽糖、蔗糖作為LB培養(yǎng)基中的碳源,以不加碳源為對照,將上述處理的培養(yǎng)基 pH 調(diào)至7.0,裝液量為20 mL(錐形瓶容量為50 mL),121℃滅菌 20 min。以0.1%的接種量接種至錐形瓶中,置于37 ℃、180 r·min-1振蕩培養(yǎng)24 h,每個處理3次重復(fù),測定OD600值。
確定培養(yǎng)基的最佳碳源之后,改變基礎(chǔ)培養(yǎng)基中最佳碳源的濃度,氮源和無機鹽組分不變,來進一步研究不同濃度的碳源對菌株生長的影響,每個處理重復(fù)3次。
1.4.2氮源及其濃度 分別添加1.5%的KNO3、(NH4)2SO4、牛肉浸膏、胰蛋白胨、酵母粉、酵母粉+胰蛋白胨(兩種氮源的比例為1∶2)等氮源,替換LB培養(yǎng)基中的氮源,以不加氮源為對照,其他條件和測定方法同1.4.1。
確定培養(yǎng)基的最佳氮源之后,改變基礎(chǔ)培養(yǎng)基中最佳氮源的濃度,碳源和無機鹽組分不變,來進一步研究不同濃度的氮源對菌株生長的影響,每個處理重復(fù)3次。
1.4.3無機鹽及其濃度 分別以 1%的 CaCl2、KH2PO4、MgSO4、NaCl作為培養(yǎng)基中的無機鹽,以不添加無機鹽為對照,其他條件和測定方法同1.4.1。
確定培養(yǎng)基的最佳無機鹽之后,改變基礎(chǔ)培養(yǎng)基中最佳無機鹽的濃度,碳源和氮源組分不變,來進一步研究不同濃度的無機鹽對菌株生長的影響,每個處理重復(fù)3次。
以單因素試驗中篩選出的蔗糖為碳源,酵母粉和蛋白胨為氮源,MgSO4為無機鹽,根據(jù) L9(34)正交表進行4因素3水平的正交試驗(表1),獲得HNU1菌株生長的最優(yōu)培養(yǎng)基組合,并驗證優(yōu)化培養(yǎng)基組合對菌株生物量的提高效果。
表1 正交試驗因素與水平
采用SAS9.2軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析,用origin2018軟件作圖。
2.1.1分子生物學(xué)鑒定 HNU1菌株的16S rDNA基因序列測序結(jié)果表明,其大小為1 472 bp。將測序得到的16S r DNA基因序列上傳至NCBI中,獲得GenBank序列登記號為 MK583944。將測序獲得的序列在EzTaxon-server(http://eztaxon-e.ezbiocloud)進行相似性分析,結(jié)果表明,菌株HNU1與暹羅芽孢桿菌(Bacillussiamensis)的相似性為99.73%,與枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilissubsp.subtilis)的相似性為99.73%,與解淀粉芽孢桿菌(Bacillusamyloliquefaciens)的相似性為99.59%。利用 MEGA7.0 軟件,采用鄰接法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,結(jié)果顯示菌株HNU1與B.siamensis和B.amyloliquefaciens親緣關(guān)系最近(圖1)。
圖1 菌株HNU1的16S rDNA系統(tǒng)發(fā)育樹
2.1.2形態(tài)學(xué)和生理生化鑒定 通過菌落形態(tài)觀察發(fā)現(xiàn),菌株在37 ℃培養(yǎng)24 h后,在LB平板上形成圓形或近似圓形菌落,菌落前期表面光滑濕潤、邊緣整齊、稍有光澤的乳白色,后期表面粗糙、邊緣不整齊;在顯微鏡下觀察的菌體形態(tài)為短桿狀,兩端鈍圓。根據(jù)HNU1菌株的系統(tǒng)發(fā)育樹分析結(jié)果顯示B.siamensis和B.amyloliquefaciens與HNU1菌株的親緣關(guān)系最近,對比HNU1菌株與B.siamensis和B.amyloliquefaciens[20]的生理生化特性(表2),結(jié)果顯示HNU1菌株的生理生化特征與B.amyloliquefaciens一致,根據(jù)以上結(jié)果判斷HNU1菌株為解淀粉芽孢桿菌(B.amyloliquefaciens)。
表2 菌株HNU1的生理生化特性
2.2.1初始pH對菌株生長的影響 由圖2可知,在初始pH<5和pH>9時,HNU1菌株生長緩慢。初始pH在5~8之間,OD值均達到2.30以上,說明菌株在pH 5~8之間都能很好的生長。初始pH 8.0時,菌株的OD值顯著高于其他pH,因此HNU1菌株的最適pH為8.0。
注:圖中不同字母表示差異在P<0.05水平具有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.2.2溫度對菌株生長的影響 由圖3可知,菌株在20~50 ℃的溫度范圍內(nèi)均可生長,說明菌株對溫度的適應(yīng)性較寬。在30~40 ℃時菌體生長良好,在37 ℃時菌株的生長最好,其OD值顯著高于其他溫度。高于45 ℃時,菌體生長緩慢,OD值迅速下降。由此可以得出,菌株生長的最適溫度為37 ℃。
注:圖中不同字母表示差異在P<0.05水平具有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.2.3接種量對菌株生長的影響 由圖4可知,在0.1%~3%范圍內(nèi),隨著接種量的增加菌株的生物量逐漸降低,接種量超過3%之后,菌株生物量的差異趨于平穩(wěn),以0.1%接種量處理時,菌株的生物量最高,顯著高于其他接種量,因此最佳接種量為0.1%。
注:圖中不同字母表示差異在P<0.05水平具有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.2.4轉(zhuǎn)速對菌株生長的影響 如圖5所示,轉(zhuǎn)速在120~240 r·min-1之間菌株均可以正常生長。隨著轉(zhuǎn)速的增加,菌株的生物量呈先上升后下降的趨勢。轉(zhuǎn)速為180 r·min-1時,菌株的生物量與其他轉(zhuǎn)速無顯著性差異,為了節(jié)約成本,以180 r·min-1為最適轉(zhuǎn)速。
注:圖中不同字母表示差異在P<0.05水平具有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.2.5裝液量對菌株生長的影響 如圖6所示,隨著裝液量的增加,菌株的生物量呈下降趨勢,試驗結(jié)果表明,菌株發(fā)酵的最佳搖瓶裝液量為50 mL搖瓶中裝液20 mL,即50 mL搖瓶中最佳裝液量為20 mL。
注:圖中不同字母表示差異在P<0.05水平具有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.3.1碳源及其濃度對菌株生長的影響 從圖7可以看出,HNU1菌株均能利用葡萄糖、蔗糖、麥芽糖、玉米淀粉、馬鈴薯淀粉等碳源,以麥芽糖為碳源時菌體生長最旺盛,蔗糖次之,以玉米淀粉為碳源時菌株的生物量最小,說明玉米淀粉不利于菌株的生長。麥芽糖市場價較高,考慮到以后工業(yè)化生產(chǎn)的成本,選擇蔗糖為碳源。隨著蔗糖濃度的增加,菌株的生物量逐漸降低,以蔗糖濃度為1 g·L-1時,菌株的生物量達到最大。
注:圖中不同字母表示差異在P<0.05水平具有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.3.2氮源及其濃度對菌株生長的影響 從圖8可以看出,以無機氮源為培養(yǎng)基氮源時菌株生長量低,與對照組無顯著差異。以酵母粉+胰蛋白胨(1∶2)組合的氮源為培養(yǎng)基氮源時菌株的生長量顯著高于其他氮源。另外,在以酵母粉、蛋白胨、牛肉膏三種有機氮源兩兩組合為培養(yǎng)基氮源時,以A2組合為氮源時,菌株生物量最大,且顯著高于其他組合,選擇該組合為培養(yǎng)基的最適氮源。當(dāng)?shù)礉舛葹? g·L-1時,菌株生長量最高,且顯著高于其他濃度,氮源濃度高于9 g·L-1時,菌株的生長量趨向于平穩(wěn),因此氮源的最適濃度為9 g·L-1。
注:A1、A2、A3分別表示酵母粉與胰蛋白胨的比例為1∶1、1∶2、2∶1;B1、B2、B3分別表示酵母粉與牛肉膏的比例為1∶1、1∶2、2∶1;C1、C2、C3分別表示牛肉膏與胰蛋白胨的比例為1∶1、1∶2、2∶1。圖中不同字母表示差異在P<0.05水平具有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.3.3無機鹽及其濃度對菌株生長的影響 從圖9可以看出,以MgSO4為培養(yǎng)基的無機鹽時菌株的生物量最大,顯著高于其他無機鹽,選擇MgSO4作為最佳無機鹽。當(dāng)MgSO4的濃度為5 g·L-1時,菌株的生物量顯著高于其他濃度,確定優(yōu)化培養(yǎng)基中MgSO4的最適濃度為5 g·L-1。
注:圖中不同字母表示差異在P<0.05水平具有統(tǒng)計學(xué)意義。
根據(jù)單因素試驗結(jié)果,采用L9(34)正交試驗對碳源、氮源和無機鹽等組分的配比進行優(yōu)化。正交試驗統(tǒng)計結(jié)果見表3。由表3可知,各組分影響HNU1菌株生物量的主次順序為D>B>C>A,最優(yōu)的培養(yǎng)組合為A2B3C2D2。結(jié)合單因素試驗結(jié)果得出,HNU1菌株的最優(yōu)培養(yǎng)基配比為蔗糖2.0 g·L-1、酵母粉4.0 g·L-1、蛋白胨6.0 g·L-1、MgSO45.0 g·L-1。利用優(yōu)化培養(yǎng)基對HNU1菌株進行液體發(fā)酵培養(yǎng)后,測定發(fā)酵液的OD600值為2.398,顯著高于正交試驗中的9種組合,說明該優(yōu)化培養(yǎng)基能顯著提高HNU1菌株生物量。
表3 培養(yǎng)基各組分配比優(yōu)化的正交試驗統(tǒng)計結(jié)果
化肥、農(nóng)藥的大規(guī)模使用不僅導(dǎo)致土壤中的重金屬濃度增加,同時也出現(xiàn)土壤肥力降低,生態(tài)環(huán)境惡化,產(chǎn)品質(zhì)量下降等問題[21]。大多數(shù)重金屬(鎘、鉻、鉛等)在低濃度時對生物體具有很高的毒性,在環(huán)境中不易被降解,能通過食物鏈在生物體內(nèi)累積并危害其健康[9]。芽孢桿菌內(nèi)產(chǎn)芽孢,抗逆性強,是廣泛存在自然界中的非致病細菌,對人畜及環(huán)境安全無害,對多種病原菌均有抑制作用。解淀粉芽孢桿菌在防治植物病害中的研究報道較多,解SD-32對黃瓜白粉病菌和灰霉病菌具有良好的抑制作用[22],Kc-38對芒果炭疽病菌和枯萎病菌具有良好的抑制作用[23],SH-27對辣椒疫霉病菌有較強的抑制作用。但其在重金屬污染修復(fù)中的研究報道較少,龐亞琴等[25]利用解淀粉芽孢桿菌發(fā)酵液處理受鎘脅迫的小麥幼苗5 d后,其發(fā)酵液對小麥幼苗遭受的鎘脅迫具有緩解作用。目前用于重金屬污染修復(fù)的芽孢桿菌主要有枯草芽孢桿菌、巨大芽孢桿菌、蠟狀芽孢桿菌、膠質(zhì)芽孢桿菌等[26]。本課題組在前期研究中分離到一株對Cu2+具有良好富集作用的細菌菌株HNU1,通過形態(tài)觀察、生理生化試驗以及16S rDNA同源性分析,確定該菌株為解淀粉芽孢桿菌。為了提高HNU1菌株的生物量及找出其最適培養(yǎng)條件,采用單因素試驗和正交試驗對HUN1菌株的培養(yǎng)條件和培養(yǎng)基組分進行優(yōu)化,為該菌在土壤修復(fù)中的進一步研究奠定基礎(chǔ)。
大多數(shù)研究認為芽孢桿菌屬的最佳發(fā)酵pH在6.0~7.0左右,解淀粉芽孢桿菌15-1-1的最適初始pH為7.0[27],短小芽孢桿菌的最佳初始pH為7.2[28],枯草芽孢桿菌NJ-18的最適初始pH為6.8[29],解淀粉芽孢桿菌FS6最適培養(yǎng)pH為6.0[30],解淀粉芽孢桿菌HF-01的最佳初始pH為6.0~6.5[31]。與前人研究結(jié)果不同,本研究中HNU1菌株的最適初始pH為8.0,且菌株在pH 5~8的范圍內(nèi)生長良好,其OD值均在2.30以上,說明該菌在偏酸以及偏堿的環(huán)境中均可良好生長,適應(yīng)范圍廣。HNU1菌株的最適pH偏堿性,在大規(guī)模發(fā)酵時可添加適量的堿液,既能滿足菌株生長的pH條件,也能在發(fā)酵過程中抑制其他雜菌生長,保證發(fā)酵菌液的純度。
多數(shù)研究結(jié)果表明,芽孢桿菌的最適培養(yǎng)溫度在30~37 ℃左右,如解淀粉芽孢桿菌HF-01的最佳培養(yǎng)溫度為28 ℃[31],BAB-1為30 ℃[32],TB2菌株為35 ℃[33]。HNU1菌株在30~40 ℃均可良好生長,在37 ℃時菌株的生物量最高,與前人研究報道一致。但HNU1菌株在40~50 ℃下的生物量顯著高于20~30 ℃下的生物量,說明該菌可耐高溫環(huán)境,在土壤中具有更強的存活能力。在大規(guī)模發(fā)酵時可高溫發(fā)酵,既能達到菌量的要求,也能降低發(fā)酵過程中用于冷卻降溫的成本。在大多數(shù)的菌種優(yōu)化培養(yǎng)研究中,菌種的最佳接種量均在1%以上。如郭龍濤等[33]以3%接種量為解淀粉芽孢桿菌TB2的最佳接種量。魏立娟等[34]以14%接種量為解淀粉芽孢桿菌262AG6菌株的最佳接種量。與前人研究結(jié)果不同,HNU1菌株的最佳接種量為0.1%,說明HNU1菌株對培養(yǎng)條件的要求較低,在大規(guī)模發(fā)酵過程中可降低成本。HNU1菌株的生長量隨著轉(zhuǎn)速的升高而成先上升后下降的趨勢,與魏嬌洋等[35]研究結(jié)果一致。
在碳源優(yōu)化結(jié)果中,HNU1菌株以麥芽糖為碳源時生物量最高,蔗糖次之。兩者的生物量差異不顯著,麥芽糖的市場價較高,選取蔗糖為HUN1菌株的最適碳源。與趙曉燕等[36]研究解淀粉芽孢桿菌XLA03的最佳碳源為玉米淀粉不同,HNU1菌株以玉米淀粉為碳源時的生物量最低,可能是由菌株間的生物學(xué)特性差異所致。在氮源優(yōu)化結(jié)果中,HNU1菌株以(NH4)2SO4、KNO3等無機氮源為培養(yǎng)基氮源時菌株基本不生長,與劉文波等[37]研究結(jié)果一致。在單一有機氮源中,HNU1菌株以酵母粉為氮源時生物量最高,牛肉膏次之,最后是胰蛋白胨。在復(fù)合氮源中,以酵母粉+胰蛋白胨組合為氮源時菌株的生物量最高,其次是牛肉膏+胰蛋白胨組合,最后是酵母粉+胰蛋白胨組合。因此推測胰蛋白胨在HNU1菌株的發(fā)酵過程中的主要作用是提供生長因子,其具體作用需進一步研究。
本研究鑒定的解淀粉芽孢桿菌HNU1菌株對Cu2+具有良好的富集作用,可開發(fā)為銅污染土壤的修復(fù)菌種。為了使HNU1菌株土壤環(huán)境中可以穩(wěn)定生存及繁殖,可根據(jù)本研究結(jié)果將HNU1菌株發(fā)酵制成微生物肥料,并在肥料中添加菌株的最適營養(yǎng)物質(zhì),為菌株在土壤環(huán)境中的生存和定殖提供營養(yǎng)。本研究鑒定的解淀粉芽孢桿菌HNU1菌株可為開發(fā)重金屬污染修復(fù)菌種提供參考,對重金屬污染土壤修復(fù)和改良具有重大意義。