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    不同預(yù)冷時間下鮰魚能量代謝和加工品質(zhì)的相關(guān)性分析

    2020-03-01 21:27:30熊光權(quán)吳文錦丁安子
    食品科學(xué) 2020年3期
    關(guān)鍵詞:預(yù)冷糖酵解糖原

    章 蔚,石 柳,熊光權(quán),吳文錦,李 新,喬 宇,丁安子,廖 李,汪 蘭,*

    (1.湖北省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工與核農(nóng)技術(shù)研究所,湖北 武漢 430064;2.湖北工業(yè)大學(xué)生物工程與食品學(xué)院,湖北 武漢 430068)

    鮰魚,原產(chǎn)于美洲,又稱美洲鯰,學(xué)名斑點叉尾鮰,屬鯰形目鮰科。鮰魚因生長迅速、產(chǎn)卵率高、飼料轉(zhuǎn)化率高,深受養(yǎng)殖者的喜愛,是目前最主要的淡水養(yǎng)殖品種之一[1]。鮰魚肉質(zhì)鮮嫩、營養(yǎng)豐富、食用價值高,含有較多的人體必需氨基酸,F(xiàn)e、Cu等礦物質(zhì)以及大量的不飽和脂肪酸,深受消費者的喜愛[2]。

    由于鮰魚體內(nèi)蛋白和脂肪含量較高,在加工過程中易氧化,進(jìn)而導(dǎo)致魚體品質(zhì)變差,所以我國鮰魚仍以鮮活售賣為主,少量的加工研究主要集中在鮰魚的保鮮技術(shù)方面[3]。低溫可以一定程度地抑制魚體內(nèi)的生化反應(yīng)速率和微生物反應(yīng)速率,所以目前被廣泛應(yīng)用于水產(chǎn)品保鮮技術(shù),常用的低溫保鮮技術(shù)有冷藏、冰藏、微凍、凍藏[4]。目前這幾種低溫保鮮技術(shù)均有一定的缺點,魚肉在流通和加工過程中的品質(zhì)控制依然存在諸多問題。Koral通過測定理化和感官指標(biāo),發(fā)現(xiàn)鯡魚在4 ℃冷藏3 d后品質(zhì)劣化[5]。Li Kaifeng等通過研究鯽魚在宰殺后冰藏48 h內(nèi)的品質(zhì)及三磷酸腺苷(adenosine-5’-triphosphate,ATP)關(guān)聯(lián)物的變化規(guī)律,得出鯽魚較佳食用時間為宰后2~4 h[6]。Kaale等通過研究大西洋鮭魚在微凍條件下內(nèi)部冰晶形成的變化,發(fā)現(xiàn)凍結(jié)速率會對冰晶的生長產(chǎn)生影響,從而降低魚肉的持水性[7]。因此還需要進(jìn)一步的研究以期能更大程度地控制鮰魚在流通和加工過程中的品質(zhì)。

    本實驗通過測定鮰魚在4 ℃下預(yù)冷48 h的能量物質(zhì)含量變化、代謝酶活力、pH值、蒸煮損失率和加壓失水率、K值、質(zhì)構(gòu)特性、色澤,對鮰魚在不同預(yù)冷時間下代謝酶活力和加工品質(zhì)的相關(guān)性進(jìn)行分析,旨在為鮰魚在流通過程中的品質(zhì)控制和加工提供相關(guān)理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    新鮮鮰魚購于湖北省武漢市白沙洲水產(chǎn)品批發(fā)市場,平均質(zhì)量約為1.8~2.0 kg,身長約為46~48 cm。

    ATP、二磷酸腺苷(adenosine-5’-diphosphate,ADP)、一磷酸腺苷(adenosine-5’-monophosphate,AMP)、肌苷酸(inosine-5’-monophosphate,IMP)、肌苷(inosine,HxR)、次黃嘌呤(hypoxanthine,Hx)標(biāo)準(zhǔn)品(均為色譜純) 美國Sigma公司;糖原、乳酸、丙酮酸激酶(pyruvate kinase,PK)、己糖激酶(hexokinase,HK)、乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)、肌酸激酶(creatine kinase,CK)測定試劑盒 南京建成試劑有限公司;其余試劑均為分析純 國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    EXL800酶標(biāo)儀 美國伯騰食品有限公司;UV-1000分光光度計 上海天美科學(xué)儀器有限公司;K-15高速冷凍離心機(jī) 德國Sigma公司;CXTH-3000高效液相色譜儀 北京創(chuàng)新通恒科技有限公司;FG2-B便攜式pH計 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;HH-ZK2恒溫水浴鍋 鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;YYW-2型應(yīng)變控制式無側(cè)限壓力儀 南京土壤儀器有限公司;TA.XT 2i/50質(zhì)構(gòu)儀 英國Stable Micro Systems公司;CR-400/410色彩色差 日本美能達(dá)投資有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 樣品處理

    在4 ℃的冷庫中將鮰魚敲擊致暈,立即去除內(nèi)臟,用流動自來水清洗干凈,放置4 ℃環(huán)境中進(jìn)行預(yù)冷。分別在預(yù)冷1、4、8、24、48 h隨機(jī)選取三條魚進(jìn)行指標(biāo)測定。

    1.3.2 糖原、乳酸及代謝酶水平的測定

    糖原、乳酸及PK、HK、LDH、CK 4 種代謝酶的活力均采用相應(yīng)試劑盒進(jìn)行測定,用酶標(biāo)儀測定吸光度。糖原測定波長為620 nm,乳酸測定波長為530 nm,代謝酶測定波長為450 nm[8],實驗具體操作和結(jié)果計算參照各試劑盒的說明進(jìn)行。

    1.3.3 ATP及其關(guān)聯(lián)物含量及K值的測定

    ATP及其關(guān)聯(lián)物含量的測定采用反相高效液相色譜法,測試條件及K值計算參考Zhu Sichao等的方法[9]。高效液相色譜測試條件:色譜柱為COSMOSIL 5C18-PAQ(250 mmh4.6 mm,5 μm);流動相為pH 6.8的磷酸鹽緩沖液;流速1 mL/min、進(jìn)樣量50 μL、檢測波長254 nm、室溫。ATP關(guān)聯(lián)物的濃度按照標(biāo)準(zhǔn)曲線來定量。

    1.3.4 pH值的測定

    使用便攜式pH計,將其探頭插入鮰魚魚肉中測定pH值。

    1.3.5 蒸煮損失率的測定

    取待測鮰魚背部魚肉10 g左右,稱質(zhì)量(m1)后裝入保鮮袋中,置于85 ℃水浴鍋中蒸煮25 min取出,冷卻至室溫后用濾紙擦去魚肉表面水分再次稱質(zhì)量(m2)。蒸煮損失率按公式(1)計算。

    式中:m1為蒸煮前樣品的總質(zhì)量/g;m2為蒸煮后樣品的總質(zhì)量/g。

    1.3.6 加壓失水率的測定

    準(zhǔn)備大小為4 cmh4 cm的紗布,稱量紗布質(zhì)量m1,取待測鮰魚背部魚肉2 g左右置于紗布上,稱量紗布與樣品的總質(zhì)量m2,將樣品包裹好后置于上下各8 層濾紙的中心位置,然后放在YYW-2型應(yīng)變控制式無側(cè)限壓力儀的加壓板中心,手動加壓直至測力計的百分表讀數(shù)為145,開始計時并維持此數(shù)值5 min,測試結(jié)束后,取下樣品并剝?nèi)V紙,稱量加壓后紗布與樣品的總質(zhì)量m3。加壓失水率按公式(2)計算。

    式中:m1為紗布質(zhì)量/g;m2為加壓前紗布與樣品的總質(zhì)量/g;m3為加壓后紗布與樣品的總質(zhì)量/g。

    1.3.7 質(zhì)構(gòu)特性的測定

    將待測鮰魚背部魚肉切成1 cmh1 cm的塊狀后置于質(zhì)構(gòu)儀A/CKB探頭下進(jìn)行韌性(剪切力)測定,力臂25 kg、壓縮形變50%、測前速率5.0mm/s、測中速率1.0 mm/s、測后速率5.0 mm/s。

    1.3.8 色澤的測定

    將待測鮰魚背部魚肉切成1 cmh1 cm的塊狀,去皮,用色度測定儀測定樣品的色度。白度按公式(3)計算。

    式中:L*值表示樣品的亮度;a*值為正表示樣品偏紅,為負(fù)表示表示樣品偏綠;b*值為正表示樣品偏黃,為負(fù)表示樣品偏藍(lán)。

    1.4 數(shù)據(jù)處理與分析

    實驗數(shù)據(jù)使用Excel軟件進(jìn)行處理,采用SPSS 20.0軟件分別通過Duncan法和Pearson法進(jìn)行差異顯著性分析和相關(guān)性分析,用GraphPad Prism 5.0軟件作圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 不同預(yù)冷時間對鮰魚能量物質(zhì)含量的影響

    圖 1 不同預(yù)冷時間對鮰魚糖原(A)、乳酸(B)、ATP及其關(guān)聯(lián)物(C)含量的影響Fig. 1 Effects of different prechilling duration on contents of glucose (A),lactate (B), ATP-related compounds (C) in channel catfish

    如圖1所示,鮰魚預(yù)冷24 h后的糖原和乳酸含量分別從4.09 mg/g、2.56 mmol/g顯著下降至0.89 mg/g、0.80 mmol/g,然后在隨后的24 h預(yù)冷過程中分別顯著上升至2.03 mg/g、1.71 mmol/g。預(yù)冷48 h后,鮰魚中ADP、AMP、IMP的含量分別從初始的0.46、1.07、4.42 μmol/g顯著下降至0.32、0.16、2.80 μmol/g,Hx、HxR的含量分別從初始的0.25、0.13 μmol/g顯著上升至1.39、0.91 μmol/g,而在這整個過程中,ATP幾乎檢測不到。

    魚體被宰殺后,血液循環(huán)停止,氧氣供應(yīng)不足,無氧糖酵解和磷酸肌酸代謝是這期間發(fā)生的主要生化反應(yīng)。糖原會通過酵解產(chǎn)生乳酸,但乳酸不能再重新轉(zhuǎn)化為糖原,因此魚體在宰殺后糖原會逐漸消耗。乳酸也不能再通過血液循環(huán)排出體外,因此會伴隨著乳酸的積累[10]。同時,這期間ATP會依次分解為ADP、AMP、IMP、HxR、Hx[11]。鮰魚在宰殺后,隨著預(yù)冷時間的延長,魚體內(nèi)糖原和乳酸的含量先下降后上升,且預(yù)冷48 h后糖原和乳酸的含量均顯著低于初始含量。曹麗通過研究牛宰后不同部位的能量代謝情況,發(fā)現(xiàn)里脊部位的糖原顯著下降后輕微上升然后趨于穩(wěn)定,這可能是由于微生物的生長所致[12]。劉曉暢等通過研究發(fā)現(xiàn),長豐鰱在宰殺2 h后ATP含量顯著提高[13],但在本實驗中幾乎檢測不到ATP,這可能是因為宰殺后鮰魚體內(nèi)的磷酸肌酸含量較少。魚體在宰殺后的磷酸肌酸含量會極大地影響ATP的形成,當(dāng)其含量較低時,ATP的形成主要依靠產(chǎn)能少的糖酵解途徑,且ATP分解的速率較快,因此ATP的含量較低。同時,隨著預(yù)冷時間的延長,AMP、ADP、IMP的含量顯著下降,而Hx、HxR的含量顯著提高,說明在48 h的預(yù)冷時間里,ATP、ADP、AMP、IMP快速降解為Hx、HxR。IMP對魚肉的增鮮效果明顯,其含量與降解速率決定了魚肉的整體品質(zhì)[14]。劉焱等通過研究發(fā)現(xiàn)草魚的IMP在冷藏2 d內(nèi)快速下降,這與本研究中IMP的變化基本一致[15]。吳依蒙通過研究不同魚種的ATP關(guān)聯(lián)物的含量變化,發(fā)現(xiàn)IMP的降解均經(jīng)歷了積累-快速降解這個過程,這是因為不同魚種和取樣方法下IMP的代謝速率不同[16]。

    2.2 不同預(yù)冷時間對鮰魚代謝酶活力的影響

    圖 2 不同預(yù)冷時間對鮰魚HK(A)、PK(B)、LDH(C)、CK(D)活力的影響Fig. 2 Effects of different prechilling durations on HK (A), PK (B),LDH (C) and CK (D) activities of channel catfish

    如圖2所示,鮰魚預(yù)冷4 h內(nèi)的HK活力無顯著差異,在預(yù)冷8 h后HK活力顯著下降并在隨后的16 h內(nèi)保持穩(wěn)定,最終在預(yù)冷48 h后顯著下降至39.9 U/g。鮰魚的PK活力在預(yù)冷8 h后達(dá)到最高值2 345.1 U/g,然后在預(yù)冷48 h后顯著下降至915.1 U/g。鮰魚的LDH和CK在預(yù)冷48 h后分別從初始的28 901.7、37.1 U/g顯著下降至7 671.1、9.8 U/g。

    糖酵解過程中生化反應(yīng)的方向和速率受多種因素影響,其中,HK、PK、LDH、CK均可以對其進(jìn)行調(diào)控。鮰魚在宰殺后,隨著預(yù)冷時間的延長,HK活力不斷下降,PK活力先上升后下降,LDH和CK活力呈波動式下降。HK是糖酵解過程中的第一限速酶,宰殺后鮰魚體內(nèi)的葡萄糖在其作用下轉(zhuǎn)變?yōu)槠咸烟?6-磷酸并積累。當(dāng)葡萄糖-6-磷酸濃度較高時,會對HK產(chǎn)生一定的抑制作用[17],從而使得HK活力下降。PK是糖酵解過程中重要的限速酶,能夠催化磷酸烯醇式丙酮酸轉(zhuǎn)變?yōu)楸?。鮰魚在宰后體內(nèi)開始發(fā)生糖代謝和ATP降解,AMP含量在該酶作用下不斷上升,使得ATP/AMP不斷降低,從而使PK被激活且活力上升至最大值。隨著糖酵解的進(jìn)行,糖原含量不斷下降,ATP不斷降解,使得PK活力開始下降。LDH和CK是與能量代謝有關(guān)的重要酶,其較高活力有助于糖酵解的順利進(jìn)行和延緩pH值的下降速率[18],其波動變化可能與糖及乳酸的波動變化有關(guān)。

    2.3 不同預(yù)冷時間對鮰魚pH值的影響

    如圖3所示,鮰魚預(yù)冷8 h內(nèi)的pH值無顯著變化,預(yù)冷24 h后,鮰魚的pH值顯著下降,并在隨后的24 h內(nèi)保持穩(wěn)定。隨著預(yù)冷時間的延長,鮰魚的pH值緩慢下降,這與上述乳酸的變化情況是基本一致的。魚體在宰殺后,魚肉會通過糖酵解和磷酸肌酸途徑積累乳酸和磷酸[19],但在本實驗中,宰殺后的魚體可能存在微生物生長,導(dǎo)致乳酸含量先下降,而在此過程中ATP分解產(chǎn)生磷酸,所以在前期pH值變化不明顯。隨后乳酸下降速率減慢并開始積累,ATP進(jìn)一步分解,同時魚體內(nèi)的脂肪分解產(chǎn)生游離脂肪酸[20],導(dǎo)致魚體的pH值下降。另外,pH值的變化與魚體內(nèi)的蛋白質(zhì)分解也有一定的關(guān)系[21],蛋白質(zhì)分解會產(chǎn)生一些游離氨基酸和堿性含氮物質(zhì),當(dāng)堿性氨基酸和堿性含氮物質(zhì)的含量小于酸性氨基酸時,pH值下降,反之則會上升。

    圖 3 不同預(yù)冷時間對鮰魚pH值的影響Fig. 3 Effects of different prechilling durations on pH of channel catfish

    2.4 不同預(yù)冷時間對鮰魚持水性的影響

    圖 4 不同預(yù)冷時間對鮰魚蒸煮損失率(A)、加壓失水率(B)的影響Fig. 4 Effects of different prechilling durations on cooking loss rate (A)and expressible moisture rate (B) of channel catfish

    如圖4所示,鮰魚預(yù)冷24 h內(nèi)的蒸煮損失率和加壓失水率間無顯著差異,分別為18.2%、38.9%,預(yù)冷48 h后,鮰魚的蒸煮損失和加壓失水率分別顯著上升至23.2%、43.3%。蒸煮損失率和加壓失水率是衡量持水性的重要指標(biāo),對魚肉的出品率和感官品質(zhì)均有影響。鮰魚在預(yù)冷24 h內(nèi)的持水性沒有明顯變化,而預(yù)冷48 h后,鮰魚的持水性顯著下降,說明預(yù)冷24 h后魚肉的汁液流失嚴(yán)重,魚肉品質(zhì)明顯下降。盧涵通過研究發(fā)現(xiàn)鳙魚肉在貯藏2 d后汁液流失率顯著上升[22],這與本實驗的結(jié)果是基本一致的。魚肉的持水性與蛋白特性的變化有很大關(guān)系,在預(yù)冷過程中,蛋白質(zhì)的等電點會隨著pH值的下降而偏離[23],從而導(dǎo)致蛋白質(zhì)的持水性下降。同時,隨著預(yù)冷時間的延長,蛋白質(zhì)氧化變性的程度加劇,使得蛋白形成網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)的能力減弱,肌纖維溶脹受到抑制,使得魚體內(nèi)的自由水被慢慢擠出。

    2.5 不同預(yù)冷時間對鮰魚剪切力的影響

    圖 5 不同預(yù)冷時間對鮰魚剪切力的影響Fig. 5 Effects of different prechilling durations on shear force of channel catfish

    如圖5所示,鮰魚預(yù)冷4 h的剪切力從初始的71.34 g顯著下降至47.06 g,然后在隨后的20 h內(nèi)穩(wěn)定在(46.64f0.62)g,最終在預(yù)冷48 h后顯著下降至34.30 g,較預(yù)冷1 h時下降了51.9%。剪切力是模擬魚肉被牙齒咬斷所需的作用力,其大小與肌肉組織的緊密程度呈正相關(guān),是魚肉感官品質(zhì)的直觀表達(dá)[24]。隨著預(yù)冷時間的延長,鮰魚的剪切力顯著下降,說明肌纖維間的緊密程度降低,魚肉出現(xiàn)軟化現(xiàn)象。這是因為鮰魚被宰殺后,體內(nèi)的糖原和ATP快速消耗,內(nèi)源組織蛋白酶被激活從而水解蛋白組分,使得細(xì)胞間隙增大,細(xì)胞結(jié)構(gòu)變得不規(guī)則。同時,在預(yù)冷后期,微生物開始生長,蛋白質(zhì)逐漸變性,肌肉持水性下降,魚肉汁液流失加劇,組織結(jié)構(gòu)松散,從而導(dǎo)致質(zhì)地變軟,剪切力下降[25]。

    2.6 不同預(yù)冷時間對鮰魚K值的影響

    圖 6 不同預(yù)冷時間對鮰魚K值的影響Fig. 6 Effects of different prechilling durations on K value of channel catfish

    如圖6所示,鮰魚預(yù)冷1、4、8、24、48 h的K值分別為2.86%、7.27%、12.73%、15.16%、24.56%。K值代表了魚體內(nèi)ATP的降解程度,與魚肉的新鮮度有關(guān)[15]。隨著預(yù)冷時間的延長,鮰魚的K值顯著上升,說明魚肉的新鮮度在不斷下降。一般認(rèn)為,K值低于20%為新鮮,20%~40%為二級鮮度,高于60%為初期腐敗[26]。按此標(biāo)準(zhǔn),鮰魚在預(yù)冷24 h內(nèi)始終保持在高新鮮度范圍內(nèi)。

    2.7 不同預(yù)冷時間對鮰魚色澤的影響

    圖 7 不同預(yù)冷時間對鮰魚白度的影響Fig. 7 Effects of different prechilling durations on whiteness of channel catfish

    如圖7所示,鮰魚預(yù)冷24 h內(nèi)的白度無顯著差異,為51.7f1.7,預(yù)冷48 h后,鮰魚的白度顯著上升至55。色澤是用于評判魚肉品質(zhì)的一個重要指標(biāo),不同處理條件下魚肉中發(fā)生的生物和化學(xué)變化都能導(dǎo)致色澤的改變[27]。鮰魚在預(yù)冷24 h內(nèi)的白度沒有明顯變化,而預(yù)冷48 h后,鮰魚的白度顯著提高,這與上述持水性以及鮮度的結(jié)果是一致的。隨著時間的延長,魚體內(nèi)的脂肪和蛋白開始氧化,新鮮度和持水性開始下降,魚體內(nèi)水分滲出導(dǎo)致光的折射以及反射增強(qiáng),使得鮰魚白度有了一定的提高。

    2.8 不同預(yù)冷時間對鮰魚各指標(biāo)的相關(guān)性影響

    表 1 宰后鮰魚在預(yù)冷過程中各指標(biāo)的相關(guān)性Table 1 Correlation coefficients between various indicators of postmortem channel catfish during prechilling

    如表1所示,糖原含量和乳酸含量呈顯著正相關(guān)(R2=0.950);K值與HK活力呈顯著負(fù)相關(guān)(R2=-0.921),K值與白度呈極顯著正相關(guān)(R2=0.965);LDH活力與CK活力呈顯著正相關(guān)(R2=0.881),LDH活力與剪切力呈顯著正相關(guān)(R2=0.939),LDH活力與白度呈顯著負(fù)相關(guān)(R2=-0.916);加壓失水率與蒸煮損失率呈顯著正相關(guān)(R2=0.880)。

    無氧糖酵解是宰后鮰魚的主要代謝途徑。糖原含量與乳酸含量顯著正相關(guān),說明它們在能量代謝過程中關(guān)系密切,糖原和乳酸的含量反映了宰后鮰魚的能量代謝水平。LDH是一種重要的氧化還原酶,其活力與CK活力相關(guān)性顯著,說明這兩種酶在調(diào)控糖酵解過程中關(guān)系密切,與剪切力和白度的顯著相關(guān)性說明肌纖維結(jié)構(gòu)的緊密性與體內(nèi)的生化反應(yīng)有一定的關(guān)系。加壓失水率和蒸煮損失率的顯著相關(guān)性說明它們在肌肉的持水性方面關(guān)系緊密。K值與白度的極顯著相關(guān)性說明魚肉的色澤與新鮮度間聯(lián)系密切。通過分析各指標(biāo)間的相關(guān)性,可以為進(jìn)一步研究其機(jī)理提供相關(guān)理論參考。

    3 結(jié) 論

    宰后鮰魚在4 ℃下預(yù)冷48 h,隨著預(yù)冷時間的延長,鮰魚中糖原和乳酸含量先下降后上升,且糖原含量和乳酸含量顯著正相關(guān);ADP、IMP、AMP含量逐漸降低,Hx、HxR含量逐漸升高,ATP幾乎檢測不到;HK、LDH、CK活力總體呈下降趨勢,PK活力在預(yù)冷8 h上升至最大值,隨后下降,其中LDH活力與CK活力顯著正相關(guān);pH值和剪切力逐漸下降,且剪切力與LDH活力顯著正相關(guān);加壓失水率、蒸煮損失以及色澤在24 h內(nèi)保持穩(wěn)定,在48 h后顯著上升,魚肉的持水性下降,且加壓失水率與蒸煮損失率顯著正相關(guān);K值不斷上升,魚肉的鮮度不斷下降,但在24 h內(nèi)保持在20%的高鮮度范圍內(nèi),且K值與白度顯著正相關(guān)。宰后鮰魚在預(yù)冷24 h內(nèi)品質(zhì)比較穩(wěn)定,應(yīng)盡量在這段時間內(nèi)對鮰魚進(jìn)行加工處理。

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