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    紫紅曲霉M-4液態(tài)發(fā)酵產孢子工藝優(yōu)化

    2020-01-18 07:47:14騰軍偉周芷寒劉振民蘇米亞鄭遠榮劉景焦晶凱
    乳業(yè)科學與技術 2019年6期
    關鍵詞:紫紅干酪氮源

    騰軍偉,周芷寒,劉振民,蘇米亞,鄭遠榮,劉景,焦晶凱

    (1.光明乳業(yè)股份有限公司乳業(yè)研究院,上海乳業(yè)生物工程技術研究中心,乳業(yè)生物技術國家重點實驗室,上海200436;2.上海商學院酒店管理學院,上海200235)

    紅曲霉在中國有著相當悠久的歷史,古籍中有關于紅曲霉用于發(fā)酵與保藏食物的記載[1]。近年來,國內外學者研究發(fā)現,紅曲霉的主要次級代謝產物包括Monacolin K[2-3]、紅曲色素[4-6]、γ-氨基丁酸[7]等,這些次級代謝產物大多對人體有益,被廣泛用于食品、醫(yī)藥、化妝品等領域中[8-10]。

    霉菌成熟干酪是通過直投、浸泡或噴灑等形式接種霉菌成熟劑后,干酪內部和(或)表面的特征霉菌生長從而促進其成熟的干酪,霉菌干酪中較著名的有青紋干酪、卡門貝爾干酪和布里干酪[11-12]等,它們利用其獨特的霉菌發(fā)酵制作而成。在干酪成熟過程中,霉菌一直被認為是輔助性培養(yǎng)物,因為它們具有發(fā)酵代謝乳糖、產生特定質地和風味的能力[13-15]。隨著我國對外貿易的發(fā)展,國人對干酪文化的認知也逐漸擴大,其中霉菌干酪作為一種特別品類的干酪逐步被消費者接受,其市場消費量逐年提升。利用紅曲霉發(fā)酵制作的紅曲霉干酪不僅具有中國特色,還有較高的營養(yǎng)和功能價值,紅曲霉的發(fā)酵代謝產物具有降低膽固醇水平[16-17]、調節(jié)心血管[18]、抗衰老等功能[19-20]。紅曲霉干酪的開發(fā)與研究具有很強的中國特色,且更容易被中國消費者接受。紅曲霉干酪的制作需要較高濃度的紅曲霉孢子液,但是由于工業(yè)生產發(fā)酵紅曲霉的產量低、成本高等問題,阻礙了與之相關的產業(yè)發(fā)展;且工藝上選擇直投式加入紅曲霉發(fā)酵劑較適合工業(yè)化生產,因此提高紅曲霉單位體積的產孢子數顯得尤為重要,產孢子數能夠直接影響紅曲霉干酪的質量[21-22]。因此,如何提高紅曲霉液態(tài)發(fā)酵時的產孢子數具有較大的實際意義。

    本研究選取不產桔霉毒素[23-24]且有較高色階的紅曲霉菌株紫紅曲霉(Monascus purpureus)M-4,此外,液態(tài)發(fā)酵不容易受到污染、發(fā)酵情況好控制、生產效率高,與固態(tài)發(fā)酵相比較適合大規(guī)模工業(yè)化生產,采用單因素試驗對紫紅曲霉M-4的培養(yǎng)基成分和培養(yǎng)條件等因素進行優(yōu)化,以期提高液態(tài)發(fā)酵紫紅曲霉M-4的產孢子數,為中國特色功能性霉菌成熟干酪的順利開發(fā)提供理論依據和技術支撐。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    紫紅曲霉M-4(保藏編號CGMCC No.9712)乳業(yè)生物技術國家重點實驗室;馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)肉湯、馬鈴薯葡萄糖肉湯(potato dextrose broth,PDB)上海盛思生化科技有限公司;馬鈴薯浸粉、酵母浸粉、蛋白胨北京陸橋技術股份有限公司;葡萄糖、蔗糖、碳酸鈣、氯化鈣、氯化鈉、氯化鎂、硫酸鋅、氯化鉀國藥集團化學試劑有限公司;大米粉華聯超市;乳酸上海明富食品科技有限公司。

    1.2 儀器與設備

    ZWY-2112B水平搖床天津津立儀器設備科技發(fā)展有限公司;MJ-250-Ⅱ恒溫培養(yǎng)箱杭州藍天儀器有限公司;DW-40L188醫(yī)用低溫保存箱海爾集團;Thermo1389生物安全柜美國Thermo公司;ME2002E/02電子天平、FE20實驗室pH計梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 培養(yǎng)基的制備及培養(yǎng)

    基礎液體培養(yǎng)基:PDB培養(yǎng)基(葡萄糖20 g/L、馬鈴薯浸粉4 g/L),pH值自然;固體培養(yǎng)基:PDA肉湯培養(yǎng)基,pH值自然;種子保存液:50%基礎液體培養(yǎng)基+50%甘油(質量分數80%),pH值自然。以上培養(yǎng)基均在121 ℃條件下滅菌20 min。

    種子培養(yǎng)液制備:在500 mL錐形瓶中裝入100 mL的PDB培養(yǎng)基,進行接種,在30 ℃、90 r/min的水平搖床上培養(yǎng)3 d后,從中取20 mL倒入另一瓶裝有300 mL PDB培養(yǎng)基的錐形瓶中,在30 ℃、90 r/min的水平搖床中培養(yǎng)1 d后,用無菌4 層紗布對320 mL PDB發(fā)酵液進行過濾。在1 mL離心管中裝入0.5 mL甘油(質量分數80%)和0.5 mL過濾后的PDB發(fā)酵液作為種子液,并將離心管放入-30 ℃低溫保存箱中冷凍保存。

    液體發(fā)酵培養(yǎng)制備:將培養(yǎng)好的種子液按體積分數3%的接種量接種于裝有100 mL PDB的500 mL錐形瓶中,用8 層紗布封好,在30 ℃、90 r/min的水平搖床上培養(yǎng)3 d。

    1.3.2 培養(yǎng)方法和菌落計數

    根據GB 4789.15—2016《食品國家安全標準 食品微生物學檢驗 霉菌和酵母計數》中的標準,采用梯度稀釋和涂布平板法進行孢子數測定。

    在已編號的5 0 0m L錐形瓶中裝入配制好的100 mL PDB液體培養(yǎng)基,每個錐形瓶中放入玻璃珠10 顆,在高溫高壓滅菌鍋中121 ℃滅菌20 min;待液體培養(yǎng)基溫度降至常溫時使用種子液進行接種,每瓶接種量3%,不同條件下的液體培養(yǎng)基在接種完成后于30 ℃、90 r/min水平搖床上培養(yǎng)3 d,3 d后在無菌操作臺進行梯度稀釋和平板涂布。

    將90 mL質量濃度0.9 g/100 mL的生理鹽水加入10 mL接種培養(yǎng)后的PDB液體培養(yǎng)基,進行10 倍稀釋;取1 mL稀釋10 倍的菌液,置于裝有9 mL生理鹽水的試管中進一步稀釋,以此類推,本研究具體稀釋倍數根據涂布平板菌落計數情況而定。稀釋后用固體培養(yǎng)基進行平板涂布,取每個稀釋倍數的溶液100 μL進行涂布,并做3 個平行樣。涂布完成將平板置于30 ℃恒溫恒濕培養(yǎng)箱培養(yǎng)3 d后進行平板計數,根據平行樣品的平板計數結果計算平均值。

    1.3.3 單因素試驗設計

    1.3.3.1 氮源種類及添加量對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響

    氮源種類的選擇:選用葡萄糖為固定碳源(添加量2.0 g/100 mL),查閱參考文獻[2,8,17],選擇馬鈴薯浸粉、蛋白胨和酵母浸膏為氮源(添加量均為0.4 g/100 mL),考察氮源種類對產孢子數的影響。

    氮源添加量的選擇:選用葡萄糖為固定碳源(添加量2.0 g/100 mL),根據氮源種類試驗結果選擇氮源,添加量分別取0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 g/100 mL,考察氮源添加量對產孢子數的影響。

    1.3.3.2 碳源種類及添加量對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響

    碳源種類的選擇:固定氮源為每100 mL中添加0.4 g馬鈴薯浸粉,查閱參考文獻[16,20],選擇大米粉、甘油、蔗糖和葡萄糖為碳源(添加量均為2.0 g/100 mL),考察碳源種類對產孢子數的影響。

    碳源添加量的選擇:固定氮源為每100 mL中添加0.4 g馬鈴薯浸粉,根據碳源種類試驗結果選擇碳源,碳源添加量分別取1.6、1.8、2.0、2.2、2.4 g/100 mL,考察碳源添加量對產孢子數的影響。

    1.3.3.3 pH值對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響

    在基礎液體培養(yǎng)基基礎上,測定不同pH值條件對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響。首先對自然狀態(tài)下的pH值進行測定;在已編號的500 mL錐形瓶中各加入100 mL基礎液體培養(yǎng)基,用pH計測定后用乳酸和氫氧化鈉將pH值分別調至5.42、5.72、6.02、6.32、6.72、7.02、7.32、7.62,考察pH值對產孢子數的影響。

    1.3.3.4 裝液量對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響

    在已編號的500 mL錐形瓶中分別加入80、100、120、140、160 mL基礎液體培養(yǎng)基,考察裝液量對產孢子數的影響。

    1.3.3.5 金屬離子對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響

    在已編號的500 mL錐形瓶中各加入100 mL基礎液體培養(yǎng)基,然后分別加入CaCl2、CaCO3、NaCl、MgCl2、ZnSO4和KCl 6 種金屬離子化合物(添加量均為2 g/L),考察金屬離子對產孢子數的影響。

    1.3.3.6 傳代次數對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響

    根據上述試驗所得最優(yōu)條件進行實驗。菌株接種培養(yǎng)基發(fā)酵3 d后為第1代,進行梯度稀釋和平板涂布,從第1代結束時的培養(yǎng)基中抽取發(fā)酵液,按照3%接種量接種到新配制的培養(yǎng)基中,培養(yǎng)3 d即為第2代,進行梯度稀釋和平板涂布,以此類推得到第3代、第4代和第5代,考察傳代次數對產孢子數的影響。

    1.3.3.7 培養(yǎng)時間對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響

    根據上述試驗所得最優(yōu)條件進行實驗,培養(yǎng)完成后發(fā)酵液分別在培養(yǎng)第3、4、5、6、7、8、9、10天后進行梯度稀釋,考察培養(yǎng)時間對產孢子數的影響。

    1.3.4 響應面試驗設計

    根據單因素試驗結果,選取馬鈴薯浸粉添加量(A)、葡萄糖添加量(B)和培養(yǎng)時間(C)3 個因素,以紫紅曲霉M-4產孢子數(R)為響應值,根據Box-Behnken軟件進行中心組合設計,設計3因素3水平的響應面試驗,試驗因素及水平如表1所示。每組實驗重復3 次。

    表1 響應面試驗因素及水平Table 1 Codes and levels of independent variables used for response surface methodology

    1.4 數據處理

    采用Excel軟件統(tǒng)計實驗數據,采用Origin 9.0軟件作圖,并用SPSS 22.0和Design-Expert 8.0.6軟件對數據進行處理和差異顯著性分析。

    2 結果與分析

    2.1 氮源種類及添加量對紫紅曲霉M-4產孢子數影響的試驗結果

    2.1.1 氮源種類的確定

    表2 氮源種類對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響Table 2Effect of nitrogen sources on spore number of Monascus purpureus M-4

    由表2可知,在碳源種類和添加量相同的條件下,以馬鈴薯浸粉作為氮源時,紫紅曲霉M-4產孢子數最多,明顯高于蛋白胨作氮源時的產孢子數。而以酵母浸膏作為氮源時,計數平板上并沒有菌落生長,可能由于酵母浸膏無法被紫紅曲霉M-4消化利用,導致菌株無法生長繁殖。蛋白胨中雖然有許多蛋白質及游離多肽,但是馬鈴薯浸粉中也含有大量蛋白質,以及一些生長因子[25],用于培養(yǎng)霉菌的PDA培養(yǎng)基均以馬鈴薯浸粉作為氮源,因此紫紅曲霉M-4的最佳氮源種類是馬鈴薯浸粉。

    2.1.2 氮源添加量的確定

    圖1 氮源添加量對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響Fig. 1Effect of nitrogen source concentration on spore number of Monascus purpureus M-4

    氮源是紫紅曲霉生長代謝過程中必不可少的,氮源過多或過少均對菌株產孢子數有一定影響。由圖1可知:在馬鈴薯浸粉添加量較低時,逐漸增加馬鈴薯浸粉添加量,紫紅曲霉M-4產孢子數也會逐漸增加,當馬鈴薯浸粉添加量為0.4 g/100 mL時,紫紅曲霉M-4產孢子數最多;繼續(xù)提高氮源添加量時,反而會抑制紫紅曲霉M-4的產孢子情況,表明紫紅曲霉M-4在營養(yǎng)充足的情況下,菌體會大量繁殖,而產孢子等途徑被抑制。因此馬鈴薯浸粉的最佳添加量為0.4 g/100 mL。

    2.2 碳源種類及添加量對紫紅曲霉M-4產孢子數影響的試驗結果

    2.2.1 碳源種類的確定

    傳統(tǒng)發(fā)酵多為固態(tài)發(fā)酵,固態(tài)發(fā)酵大都選用大米為碳源,而液態(tài)發(fā)酵選用的碳源種類較多,有大米粉、葡萄糖、蔗糖、甘油、麥芽糖等[22,25-26]。

    在微生物生長期間,紫紅曲霉M-4能快速消耗碳源,消耗過程中產生的一些代謝產物累積在培養(yǎng)基中,會對紫紅曲霉M-4的生長代謝起到一定的抑制作用。在培養(yǎng)期間,肉眼可觀察到用葡萄糖作為碳源的培養(yǎng)基中菌絲體較蔗糖與大米粉作為碳源時多,但是以蔗糖和葡萄糖作為碳源的培養(yǎng)基中菌絲體數量大致相同。

    表3 碳源種類對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響Table 3Effect of carbon sources on spore number of Monascus purpureus M-4

    由表3可知,當氮源確定為馬鈴薯浸粉且添加量為0.4 g/100 mL時,以葡萄糖作為碳源,同等培養(yǎng)條件下紫紅曲霉M-4產孢子數明顯多于用大米粉、甘油和蔗糖作為碳源時的產孢子數。因此,選用葡萄糖作為紫紅曲霉M-4的最佳碳源種類。

    2.2.2 碳源添加量的確定

    圖2 碳源添加量對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響Fig. 2 Effect of carbon source concentration on spore number of Monascus purpureus M-4

    葡萄糖作為能被快速利用的單糖,經常被用來作為霉菌、酵母菌和真菌等微生物的碳源。由圖2可知,葡萄糖添加量在1.6~2.0 g/100 mL范圍時,紫紅曲霉M-4產孢子數逐漸增多,當葡萄糖添加量為2.0 g/100 mL時,紫紅曲霉M-4產孢子數達到最大值,之后繼續(xù)增加葡萄糖添加量,紫紅曲霉M-4產孢子數反而降低。葡萄糖雖然是本研究中紫紅曲霉M-4的最優(yōu)碳源,但是葡萄糖添加量過多或過少都對菌株產孢子不利。葡萄糖添加量較少時,由于營養(yǎng)不充足,導致紫紅曲霉M-4無法大量繁殖,產孢子數也較少;但當葡萄糖添加量過多時,紫紅曲霉M-4生長過程中產生的一些代謝物不斷累積,可能會對其生長起到抑制作用,也不利于產生更多孢子。因此葡萄糖添加量為2.0 g/100 mL時最有利于紫紅曲霉M-4產生孢子。

    2.3 pH值對紫紅曲霉M-4產孢子數影響的試驗結果

    紫紅曲霉是嗜酸性菌,大多數菌株的最適pH值在3.5~7.5之間,在偏酸的環(huán)境中生長情況更好,特別是在含乳酸的環(huán)境中[27]。所有微生物都有適合生長的最適pH值范圍,選擇最適的pH值更有利于紫紅曲霉M-4的生長繁殖。

    圖3 pH值對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響Fig. 3 Effect of medium pH value on spore number of Monascus purpureus M-4

    由圖3可知,初始pH值對紫紅曲霉M-4的生長有一定影響,紫紅曲霉M-4雖然是嗜酸性菌,但是過酸環(huán)境還是會影響其生長代謝及產孢子情況,培養(yǎng)基堿性pH值條件也不利于菌株的產孢子情況。當培養(yǎng)基pH值為5.42~6.32時,隨著pH值逐漸提高,紫紅曲霉M-4產孢子數逐漸增多;培養(yǎng)基自然條件下pH值(6.72)時,紫紅曲霉M-4產孢子數達到最大值;之后繼續(xù)提高培養(yǎng)基pH值,紫紅曲霉M-4產孢子數迅速降低。這可能是由于過高的pH值鈍化了紫紅曲霉M-4產孢子代謝過程中的酶類,使得菌體產孢子數迅速降低[28]。因此培養(yǎng)基自然pH 6.72條件下最有利于紫紅曲霉M-4代謝產生孢子。

    2.4 裝液量對紫紅曲霉M-4產孢子數影響的試驗結果

    氧元素不僅是大多數微生物生存的必要條件,同時也是生物體重要代謝過程中不可缺少的元素,在好氧微生物的生長代謝中極其重要。紫紅曲霉是好氧微生物,在培養(yǎng)過程中,溶氧量也是影響菌株產孢子數的因素。

    圖4 裝液量對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響Fig. 4 Effect of medium volume on spore number of Monascus purpureus M-4

    由圖4可知,在上述各因素較適值條件下,隨著裝液量的增加,紫紅曲霉M-4產孢子數先上升然后緩慢下降。當裝液量為80 mL時,紫紅曲霉M-4產孢子數最少;當裝液量在80~120 mL之間時,紫紅曲霉M-4產孢子數逐漸上升;當裝液量為120 mL時,紫紅曲霉M-4產孢子數高于其他裝液量時的產孢子數,達到最大值;當裝液量大于120 mL后,紫紅曲霉M-4產孢子數開始緩慢下降。由此可以推測,裝液量太多可能不利于培養(yǎng)基中氧氣的擴散,會導致菌株發(fā)酵供氧量不足,對紫紅曲霉M-4的生長和代謝產孢子不利;但裝液量太少,氧含量會過多,導致菌株產生大量菌絲體,而產孢子數偏少??紤]到時間和效率綜合因素,最有利于紫紅曲霉M-4代謝產孢子的裝液量為120 mL(500 mL錐形瓶)。

    2.5 金屬離子對紫紅曲霉M-4產孢子數影響的試驗結果

    金屬離子通常只有在低添加量條件下才能對微生物的生長起到一定的促進作用,在高添加量條件下反而會抑制其生長代謝[29],因此設置金屬離子添加量僅為2 g/L。

    由圖5可知,加入不同的金屬離子對紫紅曲霉M-4產孢子數影響較大。鋅離子雖然是多種酶的輔酶,但是在培養(yǎng)基中添加ZnSO4后反而完全抑制了紫紅曲霉M-4產生孢子,產孢子數為0;而加入CaCO3的培養(yǎng)基中紫紅曲霉M-4產孢子數最大,其次是加入KCl的培養(yǎng)基,再次是加入CaCl2和NaCl的培養(yǎng)基,但2 組的產孢子數較為相近。與不添加金屬離子的培養(yǎng)基相比,加入合適的金屬離子能明顯提高紫紅曲霉M-4的代謝產孢子數。因此,對紫紅曲霉M-4產孢子數有顯著提高作用的金屬離子來源是CaCO3。

    圖5 金屬離子對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響Fig. 5 Effect of metal ions on spore number of Monascus purpureus M-4

    2.6 傳代次數對紫紅曲霉M-4產孢子數影響的試驗結果

    圖6 傳代次數對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響Fig. 6Effect of number of passages on spore number of Monascus purpureus M-4

    檢測紫紅曲霉M-4傳代后的活性是否優(yōu)于不經傳代的紫紅曲霉M-4,同時考察紫紅曲霉M-4傳代后是否具有穩(wěn)定性。由圖6可知,紫紅曲霉M-4從第1代傳代到第2代時,產孢子數大幅度提高,從第2代到第5代,菌株產孢子數幾乎持平,沒有明顯增加或減少。說明紫紅曲霉M-4經第1代培養(yǎng)后,培養(yǎng)基中已有較多的孢子,再接種到新的培養(yǎng)基時,在營養(yǎng)充足的條件下,菌株開始迅速生長繁殖和代謝產生孢子,之后再接種到新的培養(yǎng)基時,相較于第2代無明顯變化。與不經傳代比較,紫紅曲霉M-4傳代1 次后產孢子數明顯升高。因此,紫紅曲霉M-4產孢子數較高的傳代次數為2 代。

    2.7 培養(yǎng)時間對紫紅曲霉M-4產孢子數影響的試驗結果

    圖7 培養(yǎng)時間對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響Fig. 7 Effect of culture time on spore number of Monascus purpureus M-4

    由圖7可知:培養(yǎng)3~6 d時,隨著時間的延長,紫紅曲霉M-4產孢子數逐漸增多,其中4~6 d的增長量最大,第6天時菌落計數最多;但培養(yǎng)6 d后紫紅曲霉M-4產孢子數不但沒有上升,反而開始緩慢下降,從第9天開始大量減少。由此可見,發(fā)酵前期處于紫紅曲霉M-4的生長繁殖產孢子階段,培養(yǎng)第6天時紫紅曲霉M-4產孢子數達到最大值,之后開始減少,這可能是由于在發(fā)酵后期,營養(yǎng)底物減少、pH值上升、生長空間減少等原因造成菌株產孢子數下降,同時孢子之間競爭營養(yǎng)物質和生存空間,使部分孢子失活,菌落計數減少。

    2.8 響應面試驗結果及分析

    2.8.1 響應面試驗結果

    根據Box-Behnken試驗設計方法進行3因素3水平響應面試驗,共設計17 個試驗組,其中12 組為分析點,5 組為零點試驗,用以估計誤差。試驗設計方案及結果如表4所示。

    表4 Box-Behnken試驗設計方案及結果Table 4 Box-Behnken design with experimental results

    2.8.2 回歸模型的建立及顯著性分析

    根據Design-Expert(Version 8.0.6)軟件對表4數據及結果進行多元回歸擬合分析,得到紫紅曲霉M-4液態(tài)發(fā)酵產孢子數(R)對馬鈴薯浸粉添加量(A)、葡萄糖添加量(B)和培養(yǎng)時間(C)3 個因素的二次多項式回歸模型為R=-0.025A+0.075B+0.550C-0.400AB+0.800AC+0.300BC-0.850A2-0.750B2-0.850C2。

    由表5可知,模型的P值遠遠小于0.01,說明該模型極顯著,與實際試驗擬合較好。決定系數R2=0.963 3,說明優(yōu)化所得試驗值與模型回歸值有良好的一致性。校正系數R2Adj=0.916 0,說明該模型能夠很好地解釋91.60%的響應值變化,失擬項F值為0.63,P值為0.631 4,大于0.05,表明模型失擬項不顯著,能很好地說明該方程充分反映了紫紅曲霉M-4的實際產孢子數情況。因此,該模型擬合程度良好,可以用此模型來分析和預測營養(yǎng)和培養(yǎng)條件對提高紫紅曲霉M-4產孢子數的影響。

    表5 Box-Behnken試驗設計結果的方差分析Table 5 Analysis of variance of quadratic polynomial model

    2.8.3 各因素交互作用分析

    圖8 馬鈴薯浸粉添加量和葡萄糖添加量對紫紅曲霉M-4產孢子數影響的響應面圖及等高線圖Fig. 8 Response surface and contour plots showing the interactive effects of potato and glucose concentration on spore production of Monascus purpureus M-4

    圖9 馬鈴薯浸粉添加量和培養(yǎng)時間對紫紅曲霉M-4產孢子數影響的響應面圖及等高線圖Fig. 9Response surface and contour plots showing the interactive effects of potato concentration and incubation time on spore production of Monascus purpureus M-4

    圖10 葡萄糖添加量和培養(yǎng)時間對紫紅曲霉M-4產孢子數影響的響應面圖及等高線圖Fig. 10Response surface and contour plots showing the interactive effects of glucose concentration and incubation time on spore production of Monascus purpureus M-4

    采用Design-Expert(Version 8.0.6)軟件對表4數據進行二次多元回歸擬合分析,得到各因素交互作用的響應曲面和等高線圖,可以直觀地看出不同營養(yǎng)因素和培養(yǎng)條件對紫紅曲霉M-4產孢子數的影響。由8~10可知:從等高線圖可以看出,馬鈴薯浸粉添加量與葡萄糖添加量、馬鈴薯浸粉添加量與培養(yǎng)時間的交互作用均顯著;從響應面圖可以看出,培養(yǎng)時間對紫紅曲霉M-4產孢子的促進作用最大,表現為曲面最陡;馬鈴薯浸粉添加量的促進作用最小,曲面最為平緩。

    2.8.4 最優(yōu)組合及驗證實驗結果

    由等高線圖和響應面圖可知,回歸模型存在最大值。通過響應面軟件分析得到紫紅曲霉M-4液態(tài)發(fā)酵產孢子數的優(yōu)化條件為馬鈴薯浸粉添加量0.38 g/100 mL、葡萄糖添加量2.2 g/100 mL、培養(yǎng)時間6.5 d,此條件下理論預測紫紅曲霉M-4最大產孢子數為(7.53±0.31)×106CFU/mL。為驗證結果的可靠性,采用響應面分析法得到的優(yōu)化條件進行3次平行實驗,結果表明,紫紅曲霉M-4產孢子數為(7.47±0.15)×106CFU/mL,與理論預測值的平均誤差為0.79%,表明響應面法優(yōu)化得到的模型參數準確可靠。

    3 結論

    在紅曲霉干酪制作中,二級發(fā)酵劑中的孢子數是紅曲霉干酪發(fā)酵與成熟的重要影響因素,直接影響最終的干酪品質。為提高紅曲霉干酪發(fā)酵菌種紫紅曲霉M-4的產孢子數,對紫紅曲霉M-4進行液態(tài)發(fā)酵,通過優(yōu)化培養(yǎng)基成分及培養(yǎng)條件,達到提高菌株產孢子數的目的。

    在基礎液體培養(yǎng)基的基礎上,進行單因素試驗,結果表明:最佳氮源為馬鈴薯浸粉,進一步確定其最優(yōu)添加量為0.4 g/100 mL;最佳碳源為葡萄糖,最優(yōu)添加量為2.0 g/100 mL;pH 6.72時(自然狀態(tài)下)紫紅曲霉M-4產孢子情況較好;最佳裝液量為120 mL(500 mL錐形瓶);CaCO3為培養(yǎng)基的最佳金屬離子來源;菌株培養(yǎng)產孢子的最佳傳代次數為2 代,此條件下連續(xù)培養(yǎng)6 d,菌株產孢子數可達到最高值。通過響應面方法分析得到紫紅曲霉M-4液態(tài)發(fā)酵產孢子數的優(yōu)化條件為馬鈴薯浸粉添加量0.38 g/100 mL、葡萄糖添加量2.2 g/100 mL、培養(yǎng)時間6.5 d,此條件下紫紅曲霉M-4最大產孢子數為(7.47±0.15)×106CFU/mL,較優(yōu)化前提高30.13 倍,效果較顯著,菌株單位體積的產孢子能力得到大幅度提升。

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