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    右美托咪定對(duì)大鼠心肌缺血再灌注損傷程度、炎性因子及Toll 樣受體4/核因子кB 信號(hào)通路的影響研究

    2020-01-17 05:15:34任小鵬孫春喜李建成高彥霞潘龍飛
    實(shí)用心腦肺血管病雜志 2019年12期
    關(guān)鍵詞:存活率咪定心肌細(xì)胞

    任小鵬,孫春喜,李建成,高彥霞,潘龍飛

    心肌缺血再灌注損傷是心肌組織和細(xì)胞缺血后血液復(fù)流引起的心肌組織損傷現(xiàn)象[1],研究表明,多種病理生理機(jī)制參與心肌缺血再灌注損傷的發(fā)生發(fā)展,其中炎性反應(yīng)與心肌缺血再灌注損傷的關(guān)系是近年研究熱點(diǎn)[2]。Toll 樣受體4/核因子κB(TLR4/NF-κB)信號(hào)通路在抗炎和細(xì)胞凋亡調(diào)控過(guò)程中均發(fā)揮著重要作用[3]。有研究表明,缺血再灌注損傷與TLR4/NF-κB信號(hào)通路的激活有關(guān)[4]。右美托咪定可通過(guò)TLR4/NF-κB 信號(hào)通路而調(diào)節(jié)炎性反應(yīng),但其對(duì)心肌缺血再灌注損傷保護(hù)機(jī)制的研究鮮有報(bào)道。本研究旨在探討右美托咪定對(duì)大鼠心肌缺血再灌注損傷程度、炎性因子、TLR4/NF-κB 信號(hào)通路的影響,現(xiàn)報(bào)道如下。

    1 材料與方法

    1.1 心肌細(xì)胞及其培養(yǎng) 2018 年2—12 月,選取大鼠源性H9C2 心肌細(xì)胞系,購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院細(xì)胞中心。心肌細(xì)胞系于37 ℃、含5%二氧化碳環(huán)境下的DMEM 培養(yǎng)基(含10%胎牛血清、100 U/ml 青霉素和鏈霉素)中培養(yǎng),隔天更換培養(yǎng)基,細(xì)胞貼壁80%后采用胰蛋白酶消化,取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期狀態(tài)良好的心肌細(xì)胞,并隨機(jī)分為對(duì)照組、心肌細(xì)胞損傷組、預(yù)處理組。

    1.2 主要試劑與儀器

    1.2.1 主要試劑 胎牛血清(Gibco 公司,美國(guó)),胰蛋白酶(Sigma 公司,美國(guó)),反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)試劑盒〔生工生物工程(上海)有限公司〕,TLR4 siRNA、TLR4 過(guò)表達(dá)載體(上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司),細(xì)胞核蛋白提取試劑盒、BCA 蛋白測(cè)定試劑盒、SDS-PAGE 凝膠試劑盒(上海碧云天生物科技有限公司),抗NF-κB p65 抗體ab7970(Abcam 公司,英國(guó)),抗TLR-4 抗 體sc-10741(Santa Cruz Biotechnology,美國(guó)),超敏ECL 發(fā)光液(蘇州新賽美生物科技有限公司),PVDF 膜(Millipore 公司,美國(guó)),甲基噻唑藍(lán)(MTT)比色法試劑盒、二甲基亞砜(DMSO)(南京建成生物工程研究所)。

    1.2.2 主要儀器 光鏡(OLYMPUS BX50,日本),熒光化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)(培清生物科技有限公司),低溫離心機(jī)(Eppendorf 公司,德國(guó)),電泳槽、轉(zhuǎn)移槽及其配件(Bio-rad 公司,美國(guó)),恒溫二氧化碳培養(yǎng)箱(Thermo fisher,美國(guó)),離心機(jī)(MD spectraMax 190,美國(guó)),水浴箱(東臺(tái)市躍進(jìn)電器廠),普通聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)儀(Thermo fisher,美國(guó))。

    1.3 方法

    1.3.1 對(duì)照組 對(duì)照組心肌細(xì)胞進(jìn)行常規(guī)培養(yǎng):將心肌細(xì)胞于37 ℃、含5%二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng),1~2 d 傳代1 次,取2~4 代細(xì)胞。

    1.3.2 心肌細(xì)胞損傷組 心肌細(xì)胞損傷組心肌細(xì)胞建立缺血再灌注損傷模型:將心肌細(xì)胞置于適宜濃度種板,細(xì)胞融合度在80%~90%時(shí)使用4 mmol/L 連二亞硫酸鈉清除培養(yǎng)基內(nèi)的氧氣導(dǎo)致缺氧1 h,后轉(zhuǎn)換為正常培養(yǎng)基培養(yǎng)12 h。

    1.3.3 預(yù)處理組 預(yù)處理組心肌細(xì)胞先給予右美托咪定(江蘇恒瑞醫(yī)藥股份有限公司生產(chǎn),國(guó)藥準(zhǔn)字H20090248)1 μmol/L 預(yù)處理1 h,后建立缺血再灌注損傷模型,方法同心肌細(xì)胞損傷組。

    1.4 觀察指標(biāo)

    1.4.1 心肌細(xì)胞形態(tài) 將三組心肌細(xì)胞分別接種于6孔培養(yǎng)板(2 ml),于37 ℃、含5%二氧化碳環(huán)境下DMEM 培養(yǎng)基中培養(yǎng)4 h,使用光鏡(×200)觀察心肌細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化。

    1.4.2 細(xì)胞存活率 三組心肌細(xì)胞分別接種于96 孔培養(yǎng)板中,加入5 g/L MTT 溶液20 μl,于37 ℃、5%二氧化碳環(huán)境下DMEM 培養(yǎng)基中培養(yǎng)4 h,吸凈培養(yǎng)液后加入DMSO 150 μl,采用酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)檢測(cè)490 nm 處光密度值(OD),各組均重復(fù)3 次并取平均值,計(jì)算細(xì)胞存活率。

    1.4.3 炎性因子mRNA 相對(duì)表達(dá)量 采用RT-PCR 檢測(cè)三組心肌細(xì)胞腫瘤壞死因子α(TNF-α)、白介素6(IL-6)、白介素1β(IL-1β)mRNA 相對(duì)表達(dá)量,嚴(yán)格按照RT-PCR 試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行操作。

    1.4.3.1 總RNA 提取 調(diào)整細(xì)胞密度并接種于6 孔板,每組3 個(gè)復(fù)孔,孵育24 h,按實(shí)驗(yàn)分組進(jìn)行藥物預(yù)處理,建立缺氧/復(fù)氧模型,使用PBS 徹底清洗,給予1 ml Trizol 進(jìn)行消化、裂解5 min,12 000 ×g 離心5 min,按照200 μl 氯仿/ml Trizol 加入氯仿,室溫放置15 min。4 ℃ 12 000 ×g 離心15 min,取上層水相置于另一離心試管內(nèi),按照0.5 ml 異丙醇/ml Trizol 加入異丙醇,室溫放置15 min。4 ℃ 12 000 ×g 離心10 min,棄上清,加入1 ml 75%乙醇,4 ℃ 8 000 ×g 離心5 min,置于室溫5~10 min。20 μl DEPC H2O 溶解,55~60 ℃,5~10 min。酶標(biāo)儀檢測(cè)260 nm 和280 nm 的OD 及其比值,檢測(cè)RNA 濃度和純度,1.9~2.0 表示RNA 純度較高。

    1.4.3.2 反轉(zhuǎn)錄 根據(jù)檢測(cè)RNA 濃度計(jì)算RNA 模板反轉(zhuǎn)錄的上樣量:模板上樣量=1 000 μg/C,按5×All-In-One RT MasterMix 說(shuō)明書(shū)進(jìn)行,反應(yīng)條件:42 ℃,60 min;70 ℃,5 min;4 ℃終止反應(yīng)。

    1.4.3.3 PCR 引物由生工生物工程(上海)有限公司合成完成。熒光定量PCR 反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性5 min,95 ℃變性5 min,60 ℃退火20 s,72 ℃延伸45 s,80 ℃讀板1 s,共40 個(gè)循環(huán)后繪制熔解曲線,72 ℃再延伸5 min。

    1.4.3.4 目的基因mRNA 相對(duì)表達(dá)量 內(nèi)參基因均為β-actin,熒光定量PCR 檢測(cè)離心試劑管內(nèi)熒光強(qiáng)度達(dá)到所設(shè)定閾值的循環(huán)數(shù)即CT 值,目的基因的mRNA 相對(duì)表達(dá)量=2-ΔΔCT×100%;ΔΔCT=目的基因CT 值-內(nèi)參基因CT 值。

    1.4.4 TLR4、NF-κB 蛋白相對(duì)表達(dá)量 采用Western blot 法檢測(cè)各組心肌細(xì)胞TLR4、NF-κB 蛋白相對(duì)表達(dá)量,具體如下:提取蛋白:使用細(xì)胞裂解液充分裂解心肌細(xì)胞,采用細(xì)胞核蛋白抽提試劑抽提細(xì)胞核蛋白,采用BCA 蛋白試劑盒檢測(cè)蛋白濃度,后水浴鍋煮,80 ℃,10 min;配置濃縮膠:恒壓80 V,Marker 分層后升至120 V 進(jìn)行電泳;轉(zhuǎn)膜:恒流200 mA,時(shí)間90~120 min,保持低溫;封閉:PVDF 膜置于5%的脫脂牛奶中進(jìn)行封閉,搖床70 次/min,室溫封閉2 h 或4 ℃過(guò)夜;剪膜+洗膜:根據(jù)目的蛋白分子量和Marker 指示將膜剪開(kāi),TBST 液洗3 次,15 min/次;孵育Ⅰ抗,室溫4 h 或4 ℃過(guò)夜;洗膜后孵育Ⅱ抗,室溫2 h;洗膜后經(jīng)超敏ECL 發(fā)光液處理,采用JS-8608 凝膠成像分析儀分析目的蛋白和內(nèi)參蛋白。

    1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS 22.0 統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計(jì)量資料以(± s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用SNK-q 檢驗(yàn)。以P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 心肌細(xì)胞形態(tài)學(xué) 對(duì)照組心肌細(xì)胞排列整齊,細(xì)胞膜表明光滑;心肌細(xì)胞損傷組心肌細(xì)胞形態(tài)不一,存在心肌細(xì)胞凋亡、脫落、漂浮現(xiàn)象;預(yù)處理組心肌細(xì)胞由缺氧-復(fù)氧損傷引起的形態(tài)學(xué)改變減輕,見(jiàn)圖1。

    2.2 心肌細(xì)胞存活率 對(duì)照組心肌細(xì)胞存活率為(1.00±0.52)%,心肌細(xì)胞損傷組為(0.48±0.09)%,預(yù)處理組為(0.67±0.10)。三組心肌細(xì)胞存活率比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=13.451,P<0.01);心肌細(xì)胞損傷組、預(yù)處理組心肌細(xì)胞存活率均低于對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);預(yù)處理組心肌細(xì)胞存活率高于心肌細(xì)胞損傷組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。

    2.3 炎性因子mRNA 的相對(duì)表達(dá)量 三組心肌細(xì)胞TNF-α、IL-6、IL-1β mRNA 相對(duì)表達(dá)量比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);心肌細(xì)胞損傷組、預(yù)處理組心肌細(xì)胞TNF-α、IL-6、IL-1β mRNA 相對(duì)表達(dá)量均高于對(duì)照組,預(yù)處理組心肌細(xì)胞TNF-α、IL-6、IL-1β mRNA 相對(duì)表達(dá)量低于心肌細(xì)胞損傷組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,見(jiàn)表1)

    圖1 光學(xué)顯微鏡下三組大鼠心肌細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化(標(biāo)尺100 μm,×200)Figure 1 Morphological changes of cardiomyocytes in the three groups of rats under optical microscope

    表1 三組心肌細(xì)胞TNF-α、IL-6、IL-1β mRNA 相對(duì)表達(dá)量比較(x± s)Table 1 Comparison of relative mRNA expression quantity of TNF-α,IL-6 and IL-1β in three groups

    2.4 心肌細(xì)胞TLR4、NF-κB 蛋白相對(duì)表達(dá)量 三組心肌細(xì)胞TLR4、NF-κB 蛋白相對(duì)表達(dá)量比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F 值分別為13.665、18.045,P 值<0.01);心肌細(xì)胞損傷組、預(yù)處理組心肌細(xì)胞TLR4、NF-κB 蛋白相對(duì)表達(dá)量高于對(duì)照組,預(yù)處理組心肌細(xì)胞TLR4、NF-κB 蛋白相對(duì)表達(dá)量低于心肌細(xì)胞損傷組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,見(jiàn)圖2~3)。

    3 討論

    研究表明,氧自由基釋放增多、鈣超載、心肌細(xì)胞凋亡、炎性反應(yīng)、心肌細(xì)胞能量代謝障礙等均參與心肌缺血再灌注損傷的發(fā)生發(fā)展[5-7]。TLR4 是參與機(jī)體固有免疫的主要特異性受體,能夠識(shí)別革蘭陰性菌脂多糖(LPS)誘導(dǎo)的細(xì)胞信號(hào)傳導(dǎo)通路,從而上調(diào)炎性因子表達(dá)。研究表明,心肌細(xì)胞膜上廣泛存在TLR4,并與心肌細(xì)胞功能相關(guān)[8]。有動(dòng)物實(shí)驗(yàn)表明,敲除小鼠心肌細(xì)胞上TLR4 基因后缺血再灌注損傷所致炎性反應(yīng)明顯減輕[9],提示心肌細(xì)胞膜上TLR4 受體與心肌缺血再灌注損傷有關(guān)。右美托咪定為腎上腺素受體激動(dòng)劑,其能夠減輕內(nèi)毒素誘導(dǎo)的炎癥,分析其原因可能與下調(diào)TLR4/NF-κB 信號(hào)通路有關(guān)[10]。

    圖2 三組心肌細(xì)胞TLR4、NF-κB 蛋白電泳結(jié)果Figure 2 Protein electrophoresis results of TLR4 and NF-κB in the three groups

    圖3 三組心肌細(xì)胞TLR4、NF-κB 蛋白相對(duì)表達(dá)量比較Figure 3 Comparison of relative protein expression quantity of TLR4 and NF-κB in the three groups

    XU 等[11]研究表明,缺氧-復(fù)氧會(huì)降低大鼠心肌細(xì)胞存活率。本研究結(jié)果顯示,心肌細(xì)胞損傷組、預(yù)處理組心肌細(xì)胞存活率低于對(duì)照組,提示經(jīng)缺血再灌注后心肌細(xì)胞損傷程度加重。但本研究結(jié)果顯示,預(yù)處理組心肌細(xì)胞由于缺氧-復(fù)氧損傷引起的形態(tài)學(xué)改變減輕,且預(yù)處理組心肌細(xì)胞存活率高于心肌細(xì)胞損傷組,提示右美托咪定能減輕缺血再灌注后心肌細(xì)胞損傷程度。

    TNF-α、IL-6、IL-1β 均是缺血再灌注損傷過(guò)程中的重要炎性因子,其中TNF-α 能促使炎性細(xì)胞向缺血區(qū)浸潤(rùn)[11];IL-6 在炎性反應(yīng)中具有調(diào)控作用,其能加重機(jī)體炎性損傷程度[12];IL-1β 具有誘導(dǎo)中性粒細(xì)胞黏附和聚集等作用[13]。多項(xiàng)研究結(jié)果表明,TNF-α、IL-6、IL-1β 參與急性心肌梗死、缺血再灌注損傷等[14-15],分析其原因可能與參與多種信號(hào)傳導(dǎo)通路如GPR37/JNK/PPAR-γ、TLR4/NF-κB 信號(hào)通路有關(guān)[16-17]。本研究結(jié)果顯示,心肌細(xì)胞損傷組、預(yù)處理組心肌細(xì)胞TNF-α、IL-6、IL-1β mRNA 相對(duì)表達(dá)量高于對(duì)照組,預(yù)處理組心肌細(xì)胞TNF-α、IL-6、IL-1β mRNA 相對(duì)表達(dá)量低于心肌細(xì)胞損傷組,提示右美托咪定能有效減輕心肌缺血再灌注損傷過(guò)程中炎性反應(yīng)。本研究結(jié)果顯示,心肌細(xì)胞損傷組、預(yù)處理組心肌細(xì)胞TLR4、NF-κB 蛋白相對(duì)表達(dá)量高于對(duì)照組,預(yù)處理組心肌細(xì)胞TLR4、NF-κB 蛋白相對(duì)表達(dá)量低于心肌細(xì)胞損傷組,提示右美托咪定能通過(guò)下調(diào)心肌細(xì)胞TLR4/NF-κB信號(hào)通路而減輕心肌缺血再灌注損傷程度。

    綜上所述,右美托咪定能有效改善大鼠缺血再灌注損傷心肌細(xì)胞存活率,減輕炎性反應(yīng),其可能通過(guò)下調(diào)心肌細(xì)胞TLR4/NF-κB 信號(hào)通路而減輕大鼠心肌缺血再灌注損傷程度。

    作者貢獻(xiàn):任小鵬、潘龍飛進(jìn)行文章的構(gòu)思與設(shè)計(jì),研究實(shí)施與可行性分析,對(duì)結(jié)果分析與解釋,負(fù)責(zé)文章的質(zhì)量控制及審校;孫春喜、李建成進(jìn)行數(shù)據(jù)收集及整理;高彥霞進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理;任小鵬負(fù)責(zé)撰寫(xiě)論文并修訂;潘龍飛對(duì)文章整體負(fù)責(zé),監(jiān)督管理。

    本文無(wú)利益了沖突。

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