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      玉米大斑病菌StCHS6的基因結(jié)構(gòu)及表達(dá)規(guī)律分析

      2020-01-07 09:59:12畢歡歡張曉雅王小敏劉玉衛(wèi)鞏校東谷守芹韓建民董金皋
      華北農(nóng)學(xué)報(bào) 2019年6期
      關(guān)鍵詞:大斑幾丁質(zhì)內(nèi)含子

      畢歡歡,張曉雅,王小敏,劉玉衛(wèi),鞏校東, 谷守芹,韓建民,董金皋

      (1.河北省植物生理與分子病理學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河北 保定 071001;2.泊頭職業(yè)學(xué)院,河北 泊頭 062150)

      玉米大斑病(Northern corn leaf blight)是一種常見的玉米葉部病害,在我國的東北、華北北部以及南方冷涼山區(qū)常有發(fā)生[1]。引起該病害的病原菌為玉米大斑病菌(Setosphaeriaturcica)。該病害直接影響玉米葉片的光合作用從而導(dǎo)致玉米減產(chǎn),嚴(yán)重時(shí)減產(chǎn)可達(dá)50%[2-3],目前在生產(chǎn)上種植抗病玉米品種是最重要的防控措施,但近年來由于該病菌變異頻繁,使得抗病玉米品種的抗性頻頻喪失[4]。因此,研發(fā)新型殺真菌制劑已成為目前研究的熱點(diǎn)之一。

      研究表明,真菌細(xì)胞壁是由糖蛋白、葡聚糖和幾丁質(zhì)所構(gòu)成,其中幾丁質(zhì)在賦予細(xì)胞壁剛性、物理強(qiáng)度和特定形狀中發(fā)揮重要作用[5-6]。幾丁質(zhì)是由膜蛋白幾丁質(zhì)合成酶通過催化N-乙酰葡糖胺單體聚合形成[7]。在釀酒酵母(Saccharomycescerevisiae)中發(fā)現(xiàn)了3個(gè)編碼幾丁質(zhì)合成酶的Scchs基因。Scchs1p在出芽過程中作為一種修復(fù)酶,修補(bǔ)酵母子細(xì)胞脫離母體后脆弱的細(xì)胞壁;Scchs2p參與初級隔膜的形成;Scchs3p參與芽痕和側(cè)壁的幾丁質(zhì)合成[8-9]。在禾谷鐮刀菌(Fusariumgraminearum)中,F(xiàn)gChs2和其他的幾丁質(zhì)合成酶基因共同調(diào)控病菌的營養(yǎng)發(fā)育和毒力[10]。在稻瘟病菌(Magnaportheoryzae)中,MoCHS1、MoCHS6和MoCHS7對于植物侵染是必需的,MoCHS5和MoCHS6在維持菌絲的極化生長過程中共同發(fā)揮作用[11]。另外,對釀酒酵母(S.cerevisiae)、禾谷鐮刀菌(F.graminearum)、小巢狀麴菌(Aspergillusnidulans)、灰葡萄孢菌(Botrytiscinerea)、粗糙脈孢菌(Neurosporacrassa)和稻瘟病菌(M.oryzae)等真菌進(jìn)行系統(tǒng)進(jìn)化分析表明,這些真菌中的幾丁質(zhì)合成酶基因可為7類(Class Ⅰ~Class Ⅶ)[10]。河北省植物生理與分子病理學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室植物病原信號轉(zhuǎn)導(dǎo)課題組前期研究中在玉米大斑病菌中已鑒定得到8個(gè)幾丁質(zhì)合成酶基因(StCHS1~StCHS8),將這些幾丁質(zhì)合成酶基因同樣分為7類(Ⅰ~Ⅶ),其中StCHS7屬于Class Ⅰ,StCHS8屬于Class Ⅱ,StCHS6屬于Class Ⅲ,StCHS2屬于Class Ⅳ,StCHS5屬于Class Ⅴ,StCHS1屬于Class Ⅵ,StCHS3、StCHS4屬于Class Ⅶ。

      本研究擬從玉米大斑病菌中克隆其關(guān)鍵的幾丁質(zhì)合成酶基因StCHS6(Class Ⅲ),并利用SMART、GSDS、Expasy、SOMPA和WoLF PSORT等軟件對其基因結(jié)構(gòu)及其所編碼的蛋白進(jìn)行分析,進(jìn)一步利用RNA-Seq技術(shù)分析StCHS6在病菌不同發(fā)育時(shí)期的表達(dá)模式,旨在明確玉米大斑病菌幾丁質(zhì)合酶基因StCHS6的結(jié)構(gòu)特征及表達(dá)模式,闡明該基因在病菌的生長發(fā)育及致病過程中的作用及研發(fā)以幾丁質(zhì)合成酶基因?yàn)榘袠?biāo)的新型抗真菌藥物奠定基礎(chǔ)。

      1 材料和方法

      1.1 供試菌株

      玉米大斑病菌1號小種菌株01-23,由河北農(nóng)業(yè)大學(xué)河北省植物生理與分子病理學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室保存。

      1.2 主要試劑

      dNTP Mixture、10×PCR Buffer、TaqDNA聚合酶及PrimeScriptTMRT Reagent Kit with gDNA Eraser均購于寶生物工程(大連)有限公司;便捷型植物RNA快速提取試劑盒購于天津華力科析科技有限公司;膠回收試劑盒購于北京全式金生物技術(shù)有限公司;引物由上海生工生物工程有限公司合成。

      1.3 試驗(yàn)方法

      1.3.1 RNA的提取 玉米大斑病菌野生型菌株于25 ℃黑暗條件培養(yǎng)12 d后,收集病菌氣生菌絲。RNA提取方法參照便捷型植物RNA快速提取試劑盒說明書。

      1.3.2 第一鏈cDNA的合成 以1.3.1提取的病菌總RNA為模板,參照PrimeScriptTMRT Reagent Kit with gDNA Eraser試劑盒使用說明書合成第一鏈cDNA,并將反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物保存于-20 ℃?zhèn)溆谩?/p>

      1.3.3 玉米大斑病菌StCHS6基因的克隆 對玉米大斑病菌中幾丁質(zhì)合成酶的鑒定結(jié)果表明,StCHS6的蛋白ID為133408。利用該蛋白ID于玉米大斑病菌基因組數(shù)據(jù)庫(http://genome.jgi.doe.gov/Settu1/Settu1.home.html)中下載StCHS6的CDS序列[12-13]。利用Primer 5.0軟件設(shè)計(jì)引物CHS6-F/R用于StCHS6的CDS序列擴(kuò)增(表1)。PCR反應(yīng)體系為:模板cDNA(300 ng/μL) 1 μL,CHS6-F/R(10 μmol/L)各1 μL,TaKaRaTaqDNA聚合酶(5 U/μL) 0.25 μL,dNTP Mixture(2.5 mmol/L) 2 μL,10×PCR Buffer 2.5 μL,ddH2O 17.25 μL。PCR反應(yīng)程序?yàn)椋?5 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性30 s,60 ℃退火30 s,72 ℃延伸3 min,35個(gè)循環(huán),72 ℃再延伸10 min。擴(kuò)增產(chǎn)物于1%的瓊脂糖凝膠上進(jìn)行檢測。

      表1 基因克隆引物序列Tab.1 Primer sequences used in gene cloning

      1.3.4StCHS6基因及編碼產(chǎn)物的生物信息學(xué)分析StCHS6基因的結(jié)構(gòu)特征及其所編碼蛋白的保守結(jié)構(gòu)域、理化性質(zhì)、二級結(jié)構(gòu)和亞細(xì)胞定位分析參考文獻(xiàn)[14]。

      1.3.5 玉米大斑病菌不同發(fā)育時(shí)期材料的收集 病菌不同發(fā)育時(shí)期材料的收集方法參考文獻(xiàn)[14]。

      1.3.6StCHS6在玉米大斑病菌不同發(fā)育時(shí)期的表達(dá)模式分析 基于已經(jīng)獲得的玉米大斑病菌RNA-Seq數(shù)據(jù)庫,分析StCHS6在病菌菌絲、分生孢子、芽管、附著胞和侵入釘5個(gè)典型的發(fā)育時(shí)期的表達(dá)情況。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 玉米大斑病菌StCHS6基因的克隆及結(jié)構(gòu)分析

      利用StCHS6的蛋白ID從玉米大斑病菌基因組數(shù)據(jù)庫進(jìn)行搜索,結(jié)果表明其位于病菌基因組scaffold_1:2066293-2069876(-)的位置,基因全長為3 584 bp,CDS序列大小為2 703 bp。以玉米大斑病菌cDNA為模板,對StCHS6的CDS序列進(jìn)行擴(kuò)增,得到的PCR產(chǎn)物大小與預(yù)期相符(圖1)。對目的條帶進(jìn)行回收測序,擴(kuò)增產(chǎn)物序列與數(shù)據(jù)庫所下載序列一致,表明在該病菌中克隆得到了StCHS6的CDS序列。

      利用Gene Structure Display Server (GSDS)在線軟件對StCHS6的基因結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析,結(jié)果表明,StCHS6含有4個(gè)內(nèi)含子,5個(gè)外顯子(圖2)。內(nèi)含子相位通常用于分析基因結(jié)構(gòu)的進(jìn)化,0、1和2代表內(nèi)含子在密碼子中的位置。0代表內(nèi)含子位于第1個(gè)堿基之前,1代表內(nèi)含子位于第1個(gè)堿基之后,2代表內(nèi)含子位于第2個(gè)堿基之后[15]。根據(jù)2個(gè)相鄰內(nèi)含子的組合是否引起移碼突變定義了兩類外顯子:不對稱外顯子和對稱外顯子[16]。本研究發(fā)現(xiàn),StCHS6基因不含有0相位,2個(gè)相鄰內(nèi)含子相位的組合分別為(1-2),(2-2)和(2-1),表明在StCHS6中不對稱外顯子和對稱外顯子均存在。

      M.DNA Marker(100~5 000 bp); 1, 2.StCHS6基因擴(kuò)增產(chǎn)物。 M.DNA Marker(100-5 000 bp); 1, 2.Amplification products of StCHS6.

      圖2 StCHS6基因結(jié)構(gòu)特征Fig.2 The structure characteristics of StCHS6 gene

      2.2 玉米大斑病菌StCHS6蛋白的理化性質(zhì)分析及亞細(xì)胞定位

      利用Expasy在線軟件對StCHS6蛋白的理化性質(zhì)進(jìn)行分析,推測StCHS6蛋白的分子式為C4586H6985N1203O1309S30,編碼900個(gè)氨基酸殘基,分子質(zhì)量為100.877 98 ku,等電點(diǎn)(PI)為8.36,表明StCHS6蛋白為堿性蛋白。該蛋白的脂肪指數(shù)為81.86,親水性平均值為-0.178,不穩(wěn)定指數(shù)為36.94,屬于穩(wěn)定型蛋白。利用SOMPA對StCHS6蛋白的二級結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測,結(jié)果表明在該蛋白中,無規(guī)則卷曲(Random coil)占43.56%,α-螺旋(Alpha helix)占38.44%,延伸鏈(Extended strand)占13.44%,β-轉(zhuǎn)角(Beta turn)占4.56%。利用SMART對StCHS6的保守結(jié)構(gòu)域進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)StCHS6包含幾丁質(zhì)合酶催化結(jié)構(gòu)域Chitin_synth_1(682-694aa)和多個(gè)跨膜結(jié)構(gòu)域(圖3)。利用WoLF PSORT對該蛋白進(jìn)行亞細(xì)胞定位分析,推測其位于細(xì)胞膜上。

      藍(lán)色長方形代表跨膜結(jié)構(gòu)域;粉色長方形代表幾丁質(zhì)合酶催化結(jié)構(gòu)域Chitin_synth_1。 The blue rectangle represents transmembrane region; The pink rectangle represents the chitin synthase catalytic domain Chitin_synth_1.

      2.3 StCHS6在玉米大斑病菌不同發(fā)育時(shí)期的表達(dá)模式

      基于RNA-Seq數(shù)據(jù)對StCHS6在菌絲、分生孢子、芽管、附著胞及侵入釘5個(gè)發(fā)育時(shí)期的表達(dá)模式進(jìn)行分析。結(jié)果表明,StCHS6在以上5個(gè)發(fā)育時(shí)期均有表達(dá),但其表達(dá)量有所差異(圖4)。以芽管時(shí)期的表達(dá)量為1,菌絲、分生孢子、附著胞和侵入釘時(shí)期的表達(dá)量分別為菌絲時(shí)期的3.80,4.97,3.40,2.60倍,說明StCHS6在分生孢子時(shí)期表達(dá)量最高,在芽管時(shí)期表達(dá)量最低。以上結(jié)果表明,StCHS6在玉米大斑病菌生長發(fā)育及侵染過程中均發(fā)揮作用,但在各個(gè)發(fā)育時(shí)期的重要程度有所不同。

      不同小寫字母表示在0.05水平上差異顯著。 Different small letters indicate significant difference at the 0.05 level.

      3 討論與結(jié)論

      前人研究表明,真菌中的幾丁質(zhì)合成酶在維持細(xì)胞完整性、菌絲生長和寄主侵染等過程中均發(fā)揮重要作用[17-18]。在小巢狀麴菌(A.nidulans)中,Class Ⅲ的幾丁質(zhì)合成酶對于菌絲生長是必需的[19];在禾谷鐮刀菌(F.graminearum)中沒有獲得Fgchs3b(Class Ⅲ)的缺失突變體,表明該基因的缺失可能是致命的[20];在稻瘟病菌(M.oryzae)中,Class Ⅲ中的幾丁質(zhì)合成酶的缺失會導(dǎo)致超過90%的分生孢子形態(tài)異常[11];而在灰葡萄孢菌(B.cinerea)中,Class Ⅲ幾丁質(zhì)合成酶(Bcchs3a)的缺失導(dǎo)致病菌毒力顯著降低[21];在構(gòu)巢曲霉(Aspergillusnidulans)中,Class Ⅲ類幾丁質(zhì)合成酶基因AnchsB在其整個(gè)發(fā)育過程中都表達(dá),當(dāng)AnchsB敲除后,出現(xiàn)了菌株生長速率減慢、不產(chǎn)孢子、菌絲尖端膨大和側(cè)壁異常等表型缺陷[22]。以上結(jié)果表明,真菌中ClassⅢ幾丁質(zhì)合成酶通過影響細(xì)胞壁的合成從而對病菌的生長發(fā)育及侵染和致病過程造成影響。本研究中,RNA-Seq數(shù)據(jù)表明StCHS6在病菌生長發(fā)育的各個(gè)時(shí)期都表達(dá),但在菌絲和分生孢子時(shí)期表達(dá)量較高,由此推測,StCHS6可能參與玉米大斑病菌的菌絲生長及產(chǎn)孢過程,但需要進(jìn)一步通過創(chuàng)制StCHS6基因敲除突變體進(jìn)行驗(yàn)證。

      前人研究表明,幾丁質(zhì)是植物病原真菌細(xì)胞壁的特有組分,該物質(zhì)不存在于植物細(xì)胞壁中,因此,研發(fā)以抑制或干擾病原真菌幾丁質(zhì)合成酶合成或降低該酶活性的新型殺菌劑是目前植物病理學(xué)界研究的熱點(diǎn)之一[23]。本研究只是分析了玉米大斑病菌幾丁質(zhì)合成酶家族中的1個(gè)關(guān)鍵基因StCHS6的表達(dá)模式,尚沒有對整個(gè)基因家族的表達(dá)規(guī)律及功能進(jìn)行系統(tǒng)分析。因此,在后續(xù)研究中,應(yīng)利用基因敲除和過表達(dá)技術(shù),明確該基因在病菌致病性方面的功能,進(jìn)一步通過比較突變體與野生型菌株對細(xì)胞壁類殺真菌制劑的敏感性,明確殺真菌制劑的作用機(jī)制,并篩選創(chuàng)制新型殺真菌制劑。

      本研究通過克隆得到了玉米大斑病菌幾丁質(zhì)合成酶基因StCHS6的CDS序列,發(fā)現(xiàn)該基因含有4個(gè)內(nèi)含子,5個(gè)外顯子。對其所編碼的蛋白進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)該基因編碼900個(gè)氨基酸,屬于堿性穩(wěn)定型蛋白。該蛋白含有幾丁質(zhì)合成酶催化結(jié)構(gòu)域Ⅰ和多個(gè)跨膜結(jié)構(gòu)域,定位于細(xì)胞膜上。對StCHS6在病菌菌絲、分生孢子、芽管、附著胞和侵入釘時(shí)期的表達(dá)量分析表明,該基因在分生孢子時(shí)期表達(dá)量最高,在芽管時(shí)期表達(dá)量最低,說明StCHS6可能在分生孢子時(shí)期發(fā)揮重要作用。

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