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    miR-210 介導(dǎo)CH25H 免疫信號(hào)通路調(diào)控骨關(guān)節(jié)炎軟骨細(xì)胞增殖和凋亡新機(jī)制研究①

    2022-07-25 04:03:56吳福順金京春延邊大學(xué)附屬醫(yī)院免疫科延邊133000
    中國(guó)免疫學(xué)雜志 2022年9期
    關(guān)鍵詞:染液結(jié)果顯示孵育

    吳福順 宋 瑤 張 雪 金京春 (延邊大學(xué)附屬醫(yī)院免疫科,延邊 133000)

    骨關(guān)節(jié)炎(osteoarthritis,OA)是一種與年齡相關(guān)的退行性疾病,主要表現(xiàn)為軟骨組織遭到破壞、滑膜炎癥、骨贅形成等,同時(shí)伴有疼痛、短暫晨僵和骨擦音等臨床癥狀,嚴(yán)重影響患者生活和工作[1]。目前研究表明骨關(guān)節(jié)形成由多因素導(dǎo)致,microRNAs(miRNAs)在多種疾病中均發(fā)揮重要生理調(diào)控作用,其在OA 發(fā)生發(fā)展過程中既有上調(diào)表達(dá)又有下調(diào)表達(dá),最新一項(xiàng)研究已經(jīng)證實(shí)miRNA-138-5p可促進(jìn)軟骨細(xì)胞增殖改善OA 炎癥環(huán)境[2]。OA 同時(shí)由免疫信號(hào)調(diào)節(jié)失衡造成大量炎癥因子分泌所導(dǎo)致[3]。miR-210已被證實(shí)有調(diào)控細(xì)胞增殖作用,但其是否通過調(diào)控免疫相關(guān)信號(hào)通路發(fā)揮抗炎促增殖作用鮮有報(bào)道。本研究旨在明確miR-210 對(duì)OA 軟骨細(xì)胞增殖和凋亡調(diào)控的新機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 材料 12 只10 周齡SD 雄性大鼠購(gòu)自延邊大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心;0.25%胰酶(03-052-1A/B)購(gòu)自Biological 公司;0.2%Ⅱ型膠原酶混合液(BJ-X0541)購(gòu)自邦景公司;胎牛血清(F8318)、DMEM(D6429)購(gòu)自Sigma公司;Weigert染液(JA1021)、番紅O染液(JA1987)購(gòu)自佳維斯公司;IL-6(ab233706)、MMP-3(ab285407)、CH25H(ab214295)、山 羊 抗 兔IgG(ab150077)、DAB(ab64238)購(gòu)自Abcam 公司;TRIzol(15596026)、氯仿(10296028)購(gòu)自Thermo公司。

    1.2 方法

    1.2.1 動(dòng)物分組 12 只SD 大鼠隨機(jī)分為sham 組和OA 組,每組6 只。所有大鼠均飼養(yǎng)于23 ℃、相對(duì)濕度55%、噪音85 分貝以下環(huán)境中,每12 h 通風(fēng)換氣1 次。每天加水2 次,每天更換1 次墊料,室內(nèi)光線陰暗。所有大鼠均按照延邊大學(xué)動(dòng)物倫理委員會(huì)要求規(guī)范飼養(yǎng)和操作。

    1.2.2 Hulth 法構(gòu)建OA 大鼠模型 3%戊巴比妥(30 mg/kg)麻醉大鼠,后肢膝關(guān)節(jié)處采用Hulth 法造模[4]。具體步驟:OA組大鼠后肢兩側(cè)切開2 cm左右切口,剝離并切斷交叉韌帶和內(nèi)側(cè)副韌帶,剝離整個(gè)半月板,不損傷膝關(guān)節(jié)軟骨面,隨后縫合消毒。sham 組大鼠僅進(jìn)行皮膚切開術(shù)后立即縫合。術(shù)后均注射青霉素抗感染,連續(xù)注射3 d,分籠單獨(dú)飼養(yǎng)。

    1.2.3 分離原代軟骨細(xì)胞 取大鼠后肢膝關(guān)節(jié)消毒,超凈臺(tái)內(nèi)剪碎膝關(guān)節(jié)軟骨,采用含0.25%胰酶和0.2%Ⅱ型膠原酶混合液玻璃皿內(nèi)消化4 h。無菌濾網(wǎng)過濾,4 ℃、1 000 r/min 離心5 min,采用含10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)液重懸,細(xì)胞培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),觀察細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)。

    1.2.4 HE染色 取SD大鼠后肢關(guān)節(jié)脫鈣處理,石蠟包埋,切片,脫蠟,蘇木素染色10 min,0.7%鹽酸乙醇分化5 s;去離子水洗片、氨水處理后水洗,伊紅染色5 min,水洗,乙醇、二甲苯處理,烘干樹脂封片。

    1.2.5 番紅O-固綠染色 取SD 大鼠后肢關(guān)節(jié)脫鈣處理,石蠟包埋,切片后脫蠟。Weigert 染液染色5 min,酸性乙醇分化液分化15 s,洗片后固綠染液染色5 min,洗片,番紅O染液染色2 min,洗片、乙醇脫水,二甲苯透明,樹脂封片。

    1.2.6 免疫熒光 將軟骨細(xì)胞鋪至含0.1%膠原涂層的玻璃蓋玻片,待細(xì)胞密度達(dá)60%左右采用預(yù)冷的甲醇和丙酮混合液(1∶1)進(jìn)行固定,1%TritonX-100/PBS 中透化,洗片擦干后加入IL-6 和MMP-3(1∶1 000)抗體4 ℃孵育過夜。次日4%多聚甲醛固定4 h,含15%蔗糖的PBS孵育4 h,去離子水清洗玻片,激光共聚焦掃描分析切片。

    1.2.7 CCK-8檢測(cè)細(xì)胞增殖 細(xì)胞按5 000個(gè)/孔接種至96孔板,設(shè)3個(gè)復(fù)孔。sh-miR-210、NC-miR-210、mimics-miR-210 Lipofectamine3000 轉(zhuǎn)染軟骨細(xì)胞成功后,分別在0 h、12 h、24 h、36 h 和48 h 時(shí)20μl/孔加入CCK-8反應(yīng)液37 ℃孵育2 h,酶標(biāo)儀測(cè)定450 nm處吸光度。

    1.2.8 流式細(xì)胞術(shù) 按照1.2.7轉(zhuǎn)染細(xì)胞。軟骨細(xì)胞接種至6 孔板,細(xì)胞密度生長(zhǎng)至60%左右收集細(xì)胞,加入5μl Annexin V-FITC 避光孵育10 min,再加入10μl碘化丙啶染液避光孵育15 min,流式細(xì)胞儀分析。

    1.2.9 免疫組化 關(guān)節(jié)脫鈣處理,石蠟切片脫蠟至水,修復(fù)抗原,阻斷內(nèi)源性過氧化物酶,血清封閉,加入CH25H一抗、二抗,DAB顯色,細(xì)胞核復(fù)染,脫水,切片掃描儀掃描分析。

    1.2.10 RT-PCR 采用TRIzol和氯仿用提取RNA,RNA 逆轉(zhuǎn)錄試劑盒將RNA 逆轉(zhuǎn)錄為性質(zhì)穩(wěn)定的cDNA,qRT-PCR儀檢測(cè)目的基因相對(duì)表達(dá),以β-actin為內(nèi)參。反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性10 min,95 ℃退化10 s,60 ℃退火20 s,72 ℃延伸35 s。2-ΔΔCt法計(jì)算目的基因相對(duì)表達(dá)。引物序列見表1。

    表1 PCR引物序列Tab.1 PCR primer sequences

    1.2.11 Western blot 調(diào)整細(xì)胞密度為5×104個(gè)/ml,細(xì)胞匯合度達(dá)70%時(shí)收集細(xì)胞,冰上裂解30 min,4 ℃、8 000 g 離心吸取上清,提取總蛋白,蛋白定量后計(jì)算,加入上樣緩沖液,100 ℃煮5 min,SDS-PACE凝膠電泳,電泳結(jié)束后將目的蛋白轉(zhuǎn)至PVDF 膜,脫脂牛奶封閉,加入IL-6、MMP-13 和CH25H 一抗孵育過夜,次日加入二抗孵育,PBS 清洗,ECL 發(fā)光儀發(fā)光拍照。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 數(shù)據(jù)應(yīng)用SPSS20.0軟件進(jìn)計(jì)分析,計(jì)量資料以±s表示,組間比較采用t檢驗(yàn),多組間比較采用F檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 miR-210 在OA 體內(nèi)外模型中表達(dá)下調(diào) HE染色結(jié)果顯示,與sham 組相比,OA 組大鼠軟骨細(xì)胞顯著肥大且排列無序(圖1A);番紅O-固綠染色結(jié)果顯示,OA 組大鼠軟骨組織出現(xiàn)明顯骨侵蝕(圖1A)。免疫熒光鑒定軟骨細(xì)胞標(biāo)志物Ⅱ型膠原表達(dá),結(jié)果顯示,軟骨細(xì)胞胞漿和胞膜處分布Ⅱ型膠原(P<0.05,圖1B)。RT-PCR 結(jié)果顯示,OA 組大鼠軟骨組織和IL-1β 的刺激軟骨細(xì)胞內(nèi)miR-210 表達(dá)均顯著降低(P<0.05,圖1C、D)。體內(nèi)外實(shí)驗(yàn)結(jié)果均提示miR-210與OA密切相關(guān)。

    圖1 大鼠軟骨組織染色及miR-210表達(dá)Fig.1 Staining of cartilage and miR-210 expression of rats

    2.2 miR-210 促進(jìn)軟骨細(xì)胞增殖 sh-miR-210、NC-miR-210 和mimics-miR-210 分別轉(zhuǎn)染軟骨細(xì)胞,RT-PCR 結(jié)果顯示,sh-miR-210 顯著降低軟骨細(xì)胞miR-210 表達(dá),mimics-miR-210 顯著增加軟骨細(xì)胞miR-210 表達(dá)(P<0.05,圖2A);CCK-8 結(jié)果顯示,軟骨細(xì)胞增殖能力隨著miR-210 表達(dá)沉默而降低,隨著miR-210 過表達(dá)而增強(qiáng)(P<0.05,圖2B);細(xì)胞凋亡趨勢(shì)則與之相反(P<0.05,圖2C)。

    圖2 miR-210對(duì)大鼠軟骨細(xì)胞增殖的影響Fig.2 Effects of miR-210 on proliferation of chondrosto?cytes of rats

    2.3 miR-210 抑制免疫細(xì)胞因子IL-6 和MMP-13 表達(dá) 免疫熒光結(jié)果顯示,IL-6 和MMP-13 在IL-1β 刺激的軟骨細(xì)胞內(nèi)表達(dá)均顯著增加,mimics-miR-210轉(zhuǎn)染后可抑制軟骨細(xì)胞IL-6 和MMP-13 表達(dá),sh-miR-210 顯著增加IL-6 和MMP-13 表達(dá)(P<0.05,圖3A、B);RT-PCR 和Western blot 結(jié)果提示IL-6 和MMP-13 在OA 模型組軟骨組織中顯著增高(P<0.05,圖3C、D)。提示miR-210 通過抑制細(xì)胞因子IL-6和MMP-13表達(dá)對(duì)OA軟骨細(xì)胞發(fā)揮保護(hù)作用。

    圖3 miR-210對(duì)大鼠軟骨細(xì)胞IL-6和MMP-13表達(dá)的影響Fig.3 Effects of miR-210 on IL-6 and MMP-13 expressions in chondrocyte of rats

    2.4 miR-210 抑制軟骨細(xì)胞CH25H 表達(dá) CH25H可導(dǎo)致代謝紊亂參與OA 發(fā)生,Western blot 證實(shí)CH25H 在IL-1β 刺激的軟骨細(xì)胞內(nèi)表達(dá)顯著增高(P<0.05,圖4A);Western blot(圖4A、B)和RT-PCR(圖4C)結(jié)果顯示,CH25H 表達(dá)隨著miR-210 沉默而增加,隨著miR-210 過表達(dá)而降低(P<0.05)。提示CH25H在OA發(fā)生過程中受miR-210調(diào)控。

    圖4 miR-210對(duì)大鼠軟骨細(xì)胞CH25H蛋白表達(dá)的影響Fig.4 Effects of miR-210 on CH25H protein expression in chondrocyte of rats

    2.5 CH25H 部分抵消miR-210 對(duì)軟骨細(xì)胞的促增殖作用 為探索CH25H作用于miR-210的位置,采用IL-1β 刺激軟骨細(xì)胞,隨后共同轉(zhuǎn)染mimics-miR-210和CH25H 過表達(dá)質(zhì)粒,結(jié)果發(fā)現(xiàn)miR-210 對(duì)軟骨細(xì)胞的促增殖作用被部分抵消(P<0.05,圖5A);共同轉(zhuǎn)染sh-miR-210和shRNA-CH25H質(zhì)粒后,sh-miR-210抑制細(xì)胞增殖的作用可被shRNA-CH25H 部分恢復(fù)(P<0.05,圖5B)。

    圖5 CH25H 可部分抵消miR-210 對(duì)大鼠軟骨細(xì)胞增殖能力的影響Fig.5 CH25H partially counteracts effect of miR-210 on proliferation capacity of chondrocytes of rats

    3 討論

    軟骨細(xì)胞是軟骨組織中維持關(guān)節(jié)軟骨穩(wěn)態(tài)的重要因素,研究證實(shí)軟骨細(xì)胞大量凋亡和免疫因子異常表達(dá)是OA 發(fā)生的重要因素[5]。OA 是老年人常見的一類骨科疾病,同時(shí)好發(fā)于運(yùn)動(dòng)員等運(yùn)動(dòng)量大導(dǎo)致關(guān)節(jié)損傷的人群[6]。研究報(bào)道m(xù)RNA 在多種細(xì)胞調(diào)控過程中發(fā)揮重要作用,同時(shí)參與OA 發(fā)生發(fā)展,但其具體調(diào)控機(jī)制尚不明確[7]。mRNA 通過調(diào)控細(xì)胞增殖分化和凋亡等作用參與多種疾病發(fā)生發(fā)展,是治療多種疾病的熱門候選靶點(diǎn)[8]。大量研究證實(shí),多種mRNA參與OA發(fā)生過程,如miR-31-5p在OA 患者外周血中表達(dá)顯著增高,體外實(shí)驗(yàn)表明miR-31-5p 對(duì)軟骨細(xì)胞增殖和分化起負(fù)調(diào)控作用,說明miR-31-5p 可促進(jìn)OA 發(fā)生[9]。此外,miR-495通過抑制PI3K/AKT 信號(hào)通路促進(jìn)軟骨細(xì)胞凋亡和老化而發(fā)揮促OA 發(fā)生作用,同時(shí)miR-27a 在OA 中的表達(dá)與上述mRNA 相反,呈下降趨勢(shì),體外實(shí)驗(yàn)證實(shí)增加miR-27a 表達(dá)可促進(jìn)軟骨細(xì)胞增殖,抑制其凋亡[10-12]。提示mRNA 在OA 發(fā)生發(fā)展過程中發(fā)揮重要作用。

    本研究發(fā)現(xiàn)miR-210 在OA 大鼠關(guān)節(jié)軟骨組織和IL-1β 誘導(dǎo)的體外軟骨細(xì)胞中表達(dá)均顯著降低。miR-210 已被證實(shí)對(duì)多種細(xì)胞起促增殖作用,但其對(duì)軟骨細(xì)胞增殖的影響如何尚不清楚。本研究通過增殖活力實(shí)驗(yàn)和流式檢測(cè)觀察轉(zhuǎn)染sh-miR-210、mimics-miR-210 對(duì)軟骨細(xì)胞增殖和凋亡能力的影響,發(fā)現(xiàn)軟骨細(xì)胞增殖能力隨著miR-210 表達(dá)沉默而降低,隨著miR-210過表達(dá)而增強(qiáng)。IL-6和MMP-13是促進(jìn)OA 發(fā)生的免疫細(xì)胞因子,在OA 中大量分泌和表達(dá)[13]。本研究發(fā)現(xiàn),miR-210 能夠顯著降低OA標(biāo)志細(xì)胞因子IL-6和MMP-13表達(dá),證實(shí)miR-210參與OA 發(fā)生并發(fā)揮負(fù)調(diào)控作用,但并未明確其具體作用方式。進(jìn)一步查閱文獻(xiàn)發(fā)現(xiàn),CH25H 是參與OA 發(fā)生的經(jīng)典免疫因子,可通過影響CH25HCYP7B1-RORα信號(hào)軸調(diào)控OA代謝,誘發(fā)OA[14]。

    CH25H 是一類重要免疫調(diào)控因子,在多種疾病中異常表達(dá)可導(dǎo)致患者機(jī)體代謝紊亂,為疾病發(fā)生提供有利條件[15]。在風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎中,CH25H 促進(jìn)重要免疫因子IL-1β/TNF-α/IL-6 表達(dá),導(dǎo)致患者代謝紊亂,促進(jìn)風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎發(fā)生發(fā)展[16]。免疫因素對(duì)OA 同樣重要。本研究顯示,miR-210 顯著抑制CH25H在體外軟骨細(xì)胞中表達(dá),同時(shí)過表達(dá)CH25H可部分抵消miR-210 對(duì)軟骨細(xì)胞的促增殖作用,說明二者相互作用,但具體機(jī)制尚不清楚,將是下一步研究重點(diǎn)。

    綜上所述,本研究明確miR-210在OA 體內(nèi)模型中表達(dá)顯著下調(diào),可能通過促進(jìn)軟骨細(xì)胞增殖對(duì)OA 發(fā)生起促進(jìn)作用,進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)miR-210 可能通過抑制免疫因子CH25H 發(fā)揮促軟骨細(xì)胞增殖作用。以上結(jié)果初步探討了miR-210 在OA 發(fā)生中起重要作用,為下一步研究奠定基礎(chǔ),同時(shí)為OA 發(fā)病機(jī)制提供了新的理論依據(jù)。

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