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    辣椒胞質(zhì)雄性不育系線粒體基因CaATP9的克隆與表達(dá)

    2019-11-21 11:09:10張婧柔邵貴芳王姣張水楊婷玉鄧明華
    生物技術(shù)通報 2019年11期
    關(guān)鍵詞:保持系胞質(zhì)花粉

    張婧柔 邵貴芳 王姣 張水 楊婷玉 鄧明華

    (云南農(nóng)業(yè)大學(xué)園林園藝學(xué)院,昆明 650201)

    雄性不育是高等植物中普遍存在的一種自然現(xiàn)象,指植物花器官從分化成雄蕊原基開始到產(chǎn)生功能性花粉期間,因受各種外界環(huán)境(光照、溫度、化學(xué)試劑)及其自身特性的影響,造成植物的雄性生殖器官不能產(chǎn)生正常的功能性花粉,但雌性生殖器官正常發(fā)育[1]。植物的雄性不育來源比較廣泛,可借助各種人工手段來獲取雄性不育系,如天然的不育品種、自交、種間或種屬間雜交、理化誘導(dǎo)和T-DNA插入誘導(dǎo)、基因工程等[2]。由于胞質(zhì)雄性不育植株在生產(chǎn)應(yīng)用上既可以篩選保持系,又可以獲得恢復(fù)系,因此,可以利用“三系配套”進(jìn)行高效人工制種。目前,國內(nèi)獲得辣椒三系品種的有向陽椒中發(fā)現(xiàn)并轉(zhuǎn)成穩(wěn)定不育系的8021A,以及21號牛角椒中發(fā)現(xiàn)并轉(zhuǎn)育的不育系9704A,該品種的不育系和不育度均高達(dá)100%,經(jīng)濟(jì)性狀優(yōu)良、抗性好、品質(zhì)優(yōu)、有較強(qiáng)的配合力和社會生產(chǎn)價值[3-4]。

    根據(jù)花粉的敗育時期,將胞質(zhì)雄性不育(Cytoplasmic male sterility,CMS)分為孢子體雄性不育和配子體雄性不育,兩者都是在花粉發(fā)育的過程中出現(xiàn)了異常[5]。研究發(fā)現(xiàn),9704A的不育系屬于孢子體敗育型。通過顯微和超微結(jié)構(gòu)觀察發(fā)現(xiàn),不育系9704A的成熟花藥的藥隔維管組織發(fā)育正常,但花藥絨氈層細(xì)胞的核膜在花粉母細(xì)胞的細(xì)線期消失,隨后核裂解消失,絨氈層進(jìn)入花粉囊,與花粉母細(xì)胞黏連,導(dǎo)致減數(shù)分裂不能正常進(jìn)行[6]。高等植物CMS的發(fā)生與RNA編輯有一定的關(guān)系?;蜣D(zhuǎn)錄后通過堿基的插入、缺失或替換,使RNA產(chǎn)物的長度、結(jié)構(gòu)發(fā)生變化從而影響基因的表達(dá)模式或創(chuàng)造嵌合基因,導(dǎo)致線粒體的功能紊亂,造成胞質(zhì)雄性不育[7-9]。

    ATP9作為線粒體呼吸代謝過程中的復(fù)合酶亞基基因,是一種重要的功能基因。大量研究表明,CMS與atp6、atp9等一些線粒體功能基因相關(guān),一旦這些基因功能受損,將會直接影響生物體的正常能量供應(yīng),影響其生命活動[10]。目前,已有研究表明atp9是煙草的雄性不育相關(guān)基因,同時煙草也是植物基因工程常用的模式植物[11]。陶瑤[12]研究發(fā)現(xiàn),與對照相比,轉(zhuǎn)基因煙草的花粉活力明顯下降。

    植物線粒體atp9在棉花CMS系和保持系間編碼區(qū)序列存在差異,并且在兩系中發(fā)生不同的RNA編輯頻率,改變蛋白質(zhì)的疏水結(jié)構(gòu),增加物種間的保守性[13]。姜偉[14]研究推測atp9與大豆的敗育可能存在一定的關(guān)系。吳國平[15]通過分子標(biāo)記技術(shù)發(fā)現(xiàn)甜椒細(xì)胞質(zhì)雄性不育系特異片段CMST6A201的功能可能與逆轉(zhuǎn)座子有關(guān)。

    目前,關(guān)于辣椒胞質(zhì)雄性不育形成機(jī)理的研究已經(jīng)從細(xì)胞生物學(xué)、分子生物學(xué)、遺傳學(xué)等角度展開并取得一定的研究進(jìn)展,而與線粒體的作用關(guān)系一直是研究的熱點(diǎn)。線粒體基因組和核基因組的相互沖突,影響了轉(zhuǎn)錄水平,轉(zhuǎn)錄后水平基因的調(diào)控,造成了雄性不育的發(fā)生。Touzet等[16]指出一些研究表明花粉的生產(chǎn)中斷是由于線粒體的呼吸作用能量缺乏而導(dǎo)致的,并就CMS的未知機(jī)制的相關(guān)研究提出排他性的假說:花粉生產(chǎn)中斷被一種只存在花藥中且能改變細(xì)胞結(jié)構(gòu)的物質(zhì)所作用[17]。在辣椒雄性可育和不育株系中的線粒體atp6基因,通過反向PCR進(jìn)行擴(kuò)增,檢測不育系中的該基因在3'編碼區(qū)域被截斷[18]。新的開放閱讀框可能來自線粒體NADH脫氫酶的基因,可能來自線粒體細(xì)胞色素氧化酶的基因,也可能是線粒體F0F1-ATP合酶的相關(guān)基因[19]。

    本研究以辣椒胞質(zhì)雄性不育系和同型保持系為試驗材料,分離ATP9,比較ATP9的一級結(jié)構(gòu)在2個材料和轉(zhuǎn)錄前后的差異,并進(jìn)行時空表達(dá)分析,為研究辣椒胞質(zhì)雄性不育機(jī)理提供依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    選取湖南省蔬菜研究所選育的辣椒胞質(zhì)雄性不育系9704A(不育率高達(dá)100%)和同型保持系9704B為試驗材料。種植于云南農(nóng)業(yè)大學(xué)后山園林園藝學(xué)院蔬菜實(shí)驗基地。2個品種均于2017年1月上旬播種,2017年4月下旬定植,定植之后進(jìn)行生長期常規(guī)管理。

    待辣椒進(jìn)入盛花盛果時期取樣。在盛花期,取胞質(zhì)雄性不育系9704A與同型保持系9704B的4個不同花期(造孢細(xì)胞增殖期、花粉母細(xì)胞減數(shù)分裂期、小孢子單核靠邊期和小孢子成熟期)花蕾作為研究兩系表達(dá)譜差異的材料;在盛果期,取同型保持系9704B植株的莖、葉、花、果皮、胎座和種子6個不同組織作為組織表達(dá)材料。所取材料均需液氮冷凍后-80℃保存?zhèn)溆?,用于DNA和RNA的提取。

    1.2 方法

    1.2.1 DNA和RNA的提取及cDNA的合成 利用BioTeKe公司試劑盒提取DNA,用TRIzol試劑對各組織與花蕾不同發(fā)育時期的RNA進(jìn)行提取,提取完畢后立即用紫外分光光度計和1%瓊脂糖凝膠電泳雙重檢測RNA濃度與純度,檢測合格后,使用TaKaRa公司的反轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行cDNA的合成。

    1.2.2 目的基因CaATP9的擴(kuò)增 根據(jù)GENbANK中公布的辣椒線粒體基因組中假定的ATP9序列為模板設(shè)計特異性引物擴(kuò)增其CDS全長編碼序列。用Primer 5.0設(shè)計特異性引物F1(5'-TT CAGTGTACCGCTTGTGACGCCTAT-3') 和R1(5'-CGCTCGCTCCCACCTGTCTTCTT-3'),引物序列合成和基因測序均由昆明擎科生物技術(shù)有限公司完成。PCR反應(yīng)條件為98℃ 2 min;98℃ 10 s,58℃15 s,72℃ 10 s,35 個循環(huán) ;72℃ 5 min,4℃保存。RT-PCR反應(yīng)體系為94℃ 2 min;94℃ 30 s,55℃ 30 s,72℃ 10 s,39個循環(huán) ;72℃ 5 min;4℃保存。

    1.2.3 生物信息學(xué)分析 利用NCBI(http://www.ncbi.nlm.nih.gov)服務(wù)器上的Conserved Domain Architecture Retrieval Tool(CDART)工具(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST)獲取蛋白質(zhì)的保守結(jié)構(gòu)域;利用GenScan(http://genes.mit.edu/GENSCAN.html)預(yù)測cDNA序列;通過Compute pI/Mw Tool(http://us.expasy.org/tools/pi_tool.html)預(yù)測氨基酸的分子量(Mw)和等電點(diǎn)(pI);利用SOPMA程序(http://npsa-pbil.ibcp.fr/)預(yù)測蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu);使用 DNAStar、BioEdit、ClustalX、MEGA 4和DNAman軟件進(jìn)行核苷酸序列及氨基酸序列的比對和構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。

    1.2.4 實(shí)時熒光定量PCR分析 采用TaKaRa公司熒光定量試劑盒進(jìn)行實(shí)時熒光定量PCR分析,染料為SYBR Green,在Applied Biosystem熒光定量PCR儀上進(jìn)行,根據(jù)CaATP9的測序結(jié)果設(shè)計熒光定量引物為F2(5'-GAAGGTGCAAAATCAATGGG-3')和R2(5'-CTAAAGGACTTGGAATACGA-3')。qRT-PCR反應(yīng)體系(20 μL)為 10 μL SYBR Premix Ex Taq Ⅱ(購于 TaKaRa公司)、10 μmol/L 上下游引物各 0.8 μL、2 μL cDNA 模板、0.4 μL ROX Reference Dye Ⅱ和 6μL dH2O。反應(yīng)程序為 95℃ 30 s;95℃ 5 s,60℃ 34 s,40個循環(huán)。每個樣品設(shè)3次重復(fù)。熔解曲線分析:在65℃-95℃進(jìn)行,每上升0.5℃讀板一次,每次時間為5 s。

    采取相對定量的方法,以ddH2O為陰性對照,以ACTIN為陽性內(nèi)對照,所用引物為F3(5'-TGCAGGAATCCACGAGACTAC-3') 和 R3(5'-TACCACCACTGAGCACAATGTT-3'),采用 2-ΔΔCT方法計算相對表達(dá)量。

    2 結(jié)果

    2.1 CaATP9的擴(kuò)增

    分別以辣椒胞質(zhì)雄性不育系9704A與同型保持系9704B的DNA和cDNA為模板進(jìn)行擴(kuò)增。均能擴(kuò)增出一條約500 bp的目的條帶,與預(yù)期結(jié)果相符(圖 1)。

    圖1 辣椒CaATP9擴(kuò)增結(jié)果

    2.2 CaATP9序列及氨基酸序列

    經(jīng)測序,該片段包含一個完整的開放閱讀框(Open reading frame,ORF),長度為 234 bp,編碼一條由77個氨基酸殘基組成的肽鏈(蛋白質(zhì))。分析發(fā)現(xiàn),CaATP9在不育系和保持系之間的擴(kuò)增序列完全一致。利用Compute pI/Mw Tool推測,發(fā)現(xiàn)CaATP9蛋白含有77個氨基酸殘基(圖2),等電點(diǎn)為8.760,分子量為7.88651 kD,無信號肽,PSORT程序亞細(xì)胞定位顯示該蛋白位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的概率是55.6%。DNA測序結(jié)果表明該片段在保持系和不育系中的片段序列完全一致,長度為234 bp,在兩系之間不存在任何堿基差異。

    圖2 辣椒CaATP9的CDS全序列及其編碼的氨基酸序列

    2.3 CaATP9在辣椒9704A和9704B的轉(zhuǎn)錄本分析

    對CaATP9的DNA和cDNA序列進(jìn)行比較,發(fā)現(xiàn)在保持系中,從RNA轉(zhuǎn)錄生成cDNA過程中,存在5處編輯位點(diǎn),編輯方式均為c→t,不育系中也存在相同的編輯位點(diǎn)和編輯方式。這些編輯位點(diǎn)的出現(xiàn),改變了氨基酸的種類,由4個親水性氨基酸(DNA模板)變換成4個疏水氨基酸。編輯提高了蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的疏水性,也增強(qiáng)了蛋白質(zhì)三級結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性(圖3)。不育系和保持系中的DNA序列一致,cDNA序列也完全一致,不管是保持系還是不育系,都只是在DNA轉(zhuǎn)錄生成cDNA的過程中發(fā)生改變。

    圖3 CaATP9在9704A與9704B中轉(zhuǎn)錄本的編輯位點(diǎn)

    2.4 CaATP9蛋白保守結(jié)構(gòu)域

    利用NCBI服務(wù)器上的Conserved Domain Architecture Retrieval Tool(CDART) 工 具(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST)對所推導(dǎo)的CaATP9蛋白質(zhì)的保守結(jié)構(gòu)域進(jìn)行預(yù)測,該蛋白的保守結(jié)構(gòu)域為ATPE和ATP-synt_C域,推測其屬于超ATP-synt_C家族(圖4)。

    圖4 辣椒CaATP9編碼蛋白質(zhì)的保守域

    圖5 辣椒CaATP9蛋白的二級結(jié)構(gòu)

    2.5 CaATP9蛋白二級結(jié)構(gòu)

    利用SOPMA程序預(yù)測CaATP9蛋白的二級結(jié)構(gòu),其含65個α-螺旋(84.42%),6個β-轉(zhuǎn)角(7.79%),6個無規(guī)則卷曲(7.79%)。預(yù)測的該蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)見圖5。

    2.6 CaATP9多物種氨基酸序列比對

    CaATP9在胞質(zhì)雄性不育系9704A與同型保持系9704B中編碼的氨基酸序列無差異。通過Blast(protein)比對, 并利用 DNAStar、MEGA4、ClustalX、DNAMAN等生物信息學(xué)軟件進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)辣椒CaATP9推導(dǎo)出來的蛋白質(zhì)氨基酸序列與GenBank中煙草(YP_173404.1)、天仙子(YP_009121945.1)、闊葉十大功勞(AAW30239.1)、胡蘿卜(AFB77174.1)、輪藻(NP_943666.1)、綠竹(ABY55207.1)ATP9氨基酸序列具有相似性(圖6)。

    圖6 辣椒CaATP9蛋白與其他種類ATP9蛋白質(zhì)序列比較

    2.7 ATP9多物種系統(tǒng)進(jìn)化樹

    將辣椒CaATP9氨基酸序列與煙草(YP_173404.1)、天仙子(YP_009121945.1)、闊葉十大功勞(AAW30239.1)、胡蘿卜(AFB77174.1)、輪藻(NP_943666.1)、綠竹(ABY55207.1)的ATP9氨基酸序列構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,表明辣椒CaATP9與輪藻、胡蘿卜的親緣關(guān)系較近,與其他物種的親緣關(guān)系稍遠(yuǎn)(圖7)。

    圖7 辣椒CaATP9系統(tǒng)進(jìn)化樹

    2.8 CaATP9在辣椒同型保持系9704B中的多組織表達(dá)分析

    通過對CaATP9在辣椒同型保持系9704B的莖、葉、花、果皮、胎座、種子6個組織中的表達(dá)分析,結(jié)果(圖8)表明,6個組織中,CaATP9均有表達(dá),但在不同組織中表達(dá)量差異較為明顯,其中在花中的表達(dá)量最高,在莖中表達(dá)量最低。

    圖8 CaATP9在9704B不同組織中的表達(dá)分析

    2.9 CaATP9在辣椒胞質(zhì)雄性不育系9704A與同型保持系9704B花蕾不同發(fā)育時期的表達(dá)分析

    利用實(shí)時熒光定量的方法,以辣椒胞質(zhì)雄性不育系9704A與同型保持系9704B為材料,選取盛花期4個不同發(fā)育階段的花蕾,對CaATP9的表達(dá)量進(jìn)行分析。結(jié)果表明,CaATP9表達(dá)量在胞質(zhì)雄性不育系9704A與保持系9704B中存在一定差異,特別是小孢子成熟期辣椒胞質(zhì)雄性不育系與同型保持系中的表達(dá)水平差異極顯著。伴隨著小孢子的發(fā)育過程,在同保持系9704B花蕾中表現(xiàn)為先升高再下降的變化趨勢,在小孢子單核期表達(dá)水平最高,在成熟期表達(dá)量最低。而辣椒胞質(zhì)雄性不育系9704A中CaATP9的表達(dá)量呈現(xiàn)持續(xù)上升的趨勢,在小孢子成熟期達(dá)到最高。

    在不同材料花蕾發(fā)育的同一時期,CaATP9的表達(dá)也存在一定差異,在花蕾發(fā)育的造孢細(xì)胞增殖期和花粉的減數(shù)分裂時期,兩種材料的表達(dá)水平差異不大;在小孢子單核期,CaATP9的表達(dá)水平在辣椒胞質(zhì)雄性不育系9704A中明顯低于同型保持系9704B;在小孢子成熟期,CaATP9在辣椒胞質(zhì)雄性不育系9704A的表達(dá)量明顯高于同型保持系9704B,在同型保持系9704B中幾乎不表達(dá)(圖9)。

    圖9 CaATP9在9704A與9704B花蕾不同發(fā)育時期中的表達(dá)

    3 討論

    RNA編輯是一種發(fā)生在高等植物中轉(zhuǎn)錄后水平的基因表達(dá)調(diào)控現(xiàn)象,主要通過替換或插入、缺失等方式進(jìn)行。在多數(shù)情況下,替換方式主要發(fā)生在植物線粒體和葉綠體基因組的轉(zhuǎn)錄本中[20]。發(fā)生RNA編輯的位點(diǎn)大多數(shù)都會影響氨基酸的序列,影響蛋白正常功能的發(fā)揮。通過分析發(fā)生RNA編輯后的氨基酸殘基及其在蛋白質(zhì)中的結(jié)構(gòu)功能發(fā)現(xiàn),編輯后的氨基酸通常由絲氨酸→亮氨酸/苯丙氨酸、精氨酸→色氨酸,由親水性氨基酸變?yōu)槭杷园被?,增?qiáng)了蛋白亞基互作的疏水性,可能更有助于蛋白間的互作;其次RNA編輯的發(fā)生位點(diǎn)一般在蛋白二級結(jié)構(gòu)的核心區(qū),通過α螺旋的中斷與折疊,增強(qiáng)蛋白三級結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性[21-22]。在本研究中,所選取的CaATP9在不育系和保持系均存在RNA編輯,且編輯方式為堿基替換,替換方式均為C-T的替換,該替換是因為基因組DNA編碼的C殘基發(fā)生了脫氨基來完成的[23]。CaATP9在不育系和保持系中發(fā)生堿基替換,且替換的位點(diǎn)和方式均一致,發(fā)生的編輯一般都是在密碼子的第一、第二位,僅個別發(fā)生在第三位,發(fā)生在密碼子第三位的RNA編輯一般不會造成氨基酸種類的改變,而第一、第二位點(diǎn)的RNA編輯會通過改變氨基酸的種類,增加蛋白結(jié)構(gòu)的疏水性,提高蛋白三級結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定性。

    線粒體作為植物能量的“動力工廠”,為植物提供90%以上的必需能量。線粒體內(nèi)膜上的5個復(fù)合體,參與氧化呼吸,通過一系列遞氫和遞電子傳遞鏈,產(chǎn)生ATP。能量是植物正常生長發(fā)育的必要條件,貫穿植物的整個生命活動過程。植物的呼吸速率不僅代表代謝活動的強(qiáng)弱,也可以顯示植物生長過程的能量代謝強(qiáng)度。一些研究表明,花藥發(fā)育過程中,不育系的呼吸速率明顯低于保持系[24-25]。在保持系9704B的各組織中,基本呈現(xiàn)生殖器官(花、果、種子)CaATP9的表達(dá)量高于營養(yǎng)器官(莖、葉),與前人的研究成果“生殖器官的呼吸速率明顯高于營養(yǎng)器官”一致[26-29]。

    小孢子的正常發(fā)育是決定植株可育的關(guān)鍵因素。目前,單子葉植株的花粉敗育主要發(fā)生在小孢子成熟后期,雙子葉植物的花粉敗育主要發(fā)生在四分體時期或小孢子發(fā)育時期[30]。辣椒作為典型的雙子葉植物,其敗育主要發(fā)生在四分體時期。本研究表明,在小孢子發(fā)育過程中,辣椒胞質(zhì)雄性不育系的9704A的CaATP9基因的表達(dá)與同型保持系9704B相比存在較大的差異,這種表達(dá)差異有可能造成線粒體能量代謝系統(tǒng)的紊亂,導(dǎo)致在小孢子發(fā)育期間能量供應(yīng)不足,引起敗育。

    4 結(jié)論

    CaATP9通過堿基替換、插入或缺失的方式進(jìn)行編輯。推測該基因的RNA編輯產(chǎn)物可能會導(dǎo)致線粒體功能不能正常發(fā)揮而引起雄性不育。

    在辣椒花蕾發(fā)育的4個時期,CaATP9在不育系9704A和保持系9704B中表達(dá)量差異較為明顯。由于CaATP9與線粒體呼吸代謝活動相關(guān),推測其可能在轉(zhuǎn)錄后水平對辣椒的胞質(zhì)雄性不育起作用。

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