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    RANKL募集調(diào)節(jié)性T細(xì)胞促進(jìn)子宮內(nèi)膜癌侵襲的研究①

    2019-11-20 05:43:14王一唯王玉東
    中國免疫學(xué)雜志 2019年21期
    關(guān)鍵詞:孵育內(nèi)膜抗體

    王一唯 黃 婷 孫 笑 王玉東

    (上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬國際和平婦幼保健院,上海200030)

    子宮內(nèi)膜癌是最常見的女性生殖惡性腫瘤之一,占婦科惡性腫瘤的20%~30%[1]。在2015年,中國約有63 400例子宮內(nèi)膜癌新發(fā)病例和21800例死亡病例[2]。子宮內(nèi)膜癌進(jìn)展是一個(gè)多因素調(diào)控的復(fù)雜過程。我們前期研究發(fā)現(xiàn),核因子κB受體活化因子配體(Receptor activator of NF-κB ligand,RANKL)作用于其受體RANK后能促進(jìn)子宮內(nèi)膜癌上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化過程,并促使組織蛋白酶S(Cathepsin S,CTSS)高表達(dá)[3]。有報(bào)道發(fā)現(xiàn)免疫細(xì)胞在子宮內(nèi)膜癌的進(jìn)展過程中發(fā)揮了重要作用[4],且CTSS能在膀胱癌等多種癌癥中通過AKT信號(hào)途徑募集調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(Regulatory T cell,Treg)干擾腫瘤的侵襲過程[5]。浸潤于腫瘤的Treg細(xì)胞主要通過細(xì)胞間直接接觸(Cytotoxic T lymphocyte associated protein 4,CTLA-4)和分泌抑制性細(xì)胞因子(IL-10和TGF-β)這兩種方式來發(fā)揮其免疫抑制功能[6]。但Treg細(xì)胞參與調(diào)控子宮內(nèi)膜癌進(jìn)展的研究少有報(bào)道。因此,本課題嘗試研究子宮內(nèi)膜癌中RANKL與Treg細(xì)胞之間的調(diào)控關(guān)系,從而為子宮內(nèi)膜癌的免疫治療提供新的思路。

    1 資料與方法

    1.1資料

    1.1.1一般資料 研究共納入2013年至2019年本院經(jīng)手術(shù)后病理證實(shí)的44例子宮內(nèi)膜癌患者。子宮內(nèi)膜癌按照FIGO(The International Federation of Gynecology and Obstetrics)分期標(biāo)準(zhǔn)Ⅰ期31例,Ⅱ期7例[7]。其中,石蠟標(biāo)本來自于2013年至2017年的32例子宮內(nèi)膜癌患者。血清標(biāo)本來自于2017年至2019年的12例內(nèi)膜癌患者。同期納入15例因子宮肌瘤行子宮切除的正常內(nèi)膜組織和8例正常人的血清樣本作為對照組。樣本收集經(jīng)過上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬國際和平婦幼保健院科研倫理委員會(huì)批準(zhǔn),并獲得患者知情同意。

    1.1.2實(shí)驗(yàn)材料 主要試劑包括Hec-1B細(xì)胞(中科院細(xì)胞庫),外周單個(gè)核細(xì)胞(美國ALLCELLS公司),RANK慢病毒(上海和元生物科技公司),重組人TGF-β,重組人RANKL(美國Peprotech公司),人RANKL ELISA試劑盒(武漢博士德生物技術(shù)有限公司),人CTSS 酶聯(lián)免疫吸附測定(Enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒(武漢博士德生物技術(shù)有限公司),CTSS(臺(tái)灣Genetex公司),RANKL、Foxp3、GAPDH抗體(美國Abcam公司),p-AKT、AKT、p-mTORC、mTORC抗體(美國CST公司),LEAFTM-purified anti-human CD3(OKT3)、LEAFTM-purified anti-human CD28 (CD28.2)、重組人TGF-β、FITC標(biāo)記的CD4抗體、PE標(biāo)記的CD25抗體(美國eBioscience公司),SDS-PAGE試劑(上海生工生物工程股份有限公司),DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清(美國Gibco公司),青鏈霉素(美國Sigma公司),人初始CD4+分選盒(美國Stemcell公司)。主要設(shè)備包括流式細(xì)胞儀(BD公司),Bio-Rad電泳儀,Bio-Rad Western blot化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng),分光光度儀(Beckman公司),倒置顯微鏡(Leica公司)。

    1.2方法

    1.2.1免疫組化染色 將子宮內(nèi)膜癌及正常內(nèi)膜組織的石蠟切片常規(guī)脫蠟至水,枸櫞酸緩沖液高壓鍋抗原熱修復(fù),用10%牛血清封閉,分別加入RANKL抗體(1∶200)、CTSS抗體(1∶200)和GAPDH抗體(1∶400)后4℃過夜。加相應(yīng)二抗(1∶1 000)37℃孵育60 min。DAB顯色,蘇木素復(fù)染,脫水,二甲苯透明,中性樹脂封片。每張切片40倍鏡隨機(jī)選取5個(gè)視野觀察,計(jì)數(shù)著色陽性的細(xì)胞百分比,結(jié)果取平均值。對組織切片的評價(jià)采用半定量的H評分(H-score)分析[8]。H評分=陽性細(xì)胞百分比×著色強(qiáng)度分級(jí)。無著色為0分,出現(xiàn)較淺的陽性染色為1分,出現(xiàn)中等的陽性染色為2分,出現(xiàn)強(qiáng)陽性染色為3分。

    1.2.2Treg細(xì)胞分離和培養(yǎng) 取人外周血單個(gè)核細(xì)胞,加入初始CD4+分選抗體孵育5 min,加入磁珠孵育5 min。樣品管置于磁鐵上分選。取上清,離心1 000 r/min,5 min。將細(xì)胞鋪于CD3抗體(1 mg/ml)和CD28抗體(1 mg/ml)包被的24孔板上,加入TGF-β(5 μg/L)刺激,于培養(yǎng)箱培養(yǎng)5 d。取出離心后于1×106細(xì)胞中分別加入FITC標(biāo)記的CD4抗體(1∶400)和PE標(biāo)記的CD25抗體(1∶400)染色30 min。每個(gè)樣品設(shè)置同型對照。樣品管至于流式細(xì)胞儀上檢測。

    1.2.3慢病毒干擾實(shí)驗(yàn) 慢病毒載體為pLKD-CMV-EGFP-2A-Puro-U6-shRNA。腫瘤細(xì)胞培養(yǎng)至70%密度時(shí),加入慢病毒和polybrene試劑(5 μg/L)培養(yǎng)。12 h后觀察細(xì)胞狀態(tài),更換培養(yǎng)基并使用嘌呤霉素篩選2周。

    1.2.4酶聯(lián)免疫吸附實(shí)驗(yàn) 將患者和對照組外周血血清和標(biāo)準(zhǔn)品稀釋后加入包被RANKL抗體的96孔板,固定,37℃孵育60 min,加二抗孵育60 min。加入顯色劑顯色,酶標(biāo)儀上讀取A405 吸收值。

    1.2.5Western blot 將RIPA裂解液(含1%蛋白酶抑制劑和1%磷酸酶抑制劑)加入經(jīng)過外源性RANKL刺激(1 μg/ml)和對照處理的Hec-1B細(xì)胞組,提取總蛋白,測定蛋白濃度。配置10%的下層膠和5%的濃縮膠,上樣蛋白進(jìn)行SDS-PAGE,轉(zhuǎn)至NC膜。經(jīng)5%牛血清蛋白封閉后,分別加入CTSS(1∶1 000)、p-AKT(1∶1 000)、p-mTORC(1∶1 000)抗體后4℃過夜。加相應(yīng)二抗(1∶10 000)37℃孵育60 min。加入ECL顯色劑顯色。

    1.2.6Transwell實(shí)驗(yàn) 將一定量的Hec-1B細(xì)胞或者Treg細(xì)胞消化離心,計(jì)數(shù),均勻接種至Transwell上室底部,再將小室放入加了Treg細(xì)胞培養(yǎng)液(Hec-1B侵襲)和Hec-1BshRANK及對照組(Treg細(xì)胞趨化)的24孔板中培養(yǎng)。培養(yǎng)Hec-1B細(xì)胞24 h(Treg細(xì)胞6 h)后,取出小室,PBS清洗3次,用多聚甲醛對小室底部背面穿過的細(xì)胞進(jìn)行固定。使用結(jié)晶紫對其進(jìn)行染色,鏡檢計(jì)數(shù)(免疫細(xì)胞離心并計(jì)數(shù))并分析作圖。

    1.3統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 所有數(shù)據(jù)采用SPSS22.0和Graphpad Prism 7.0進(jìn)行分析和作圖,兩組間比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1患者的血清及組織中RANKL和CTSS表達(dá)水平分析 免疫組化的結(jié)果提示,子宮內(nèi)膜癌患者腫瘤組織中的RANK和CTSS表達(dá)水平均高于對照組(P<0.001),見圖1A、B。如圖1C示,ELISA結(jié)果顯示,子宮內(nèi)膜癌患者的血清RANKL水平(62.45 ± 5.18)pg/ml高于對照組(9.667±1.202)pg/ml,P=0.002。

    2.2患者的血清及組織Treg細(xì)胞數(shù)量分析 免疫組化的結(jié)果顯示,如圖2A所示,子宮內(nèi)膜癌患者組織中浸潤的Treg細(xì)胞明顯多于正常組織,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。流式細(xì)胞術(shù)的結(jié)果提示,子宮內(nèi)膜癌患者外周血中Treg細(xì)胞比例(8.94±0.97)%高于對照組(6.15±1.26)%,P<0.05,見圖2B。

    2.3RANKL對CTSS表達(dá)的調(diào)控作用 Western blot結(jié)果顯示,加入外源性RANKL(1 μg/ml)能上調(diào)Hec-1B中的CTSS蛋白水平(P<0.05),見圖3A、B。同時(shí),將干擾RANK表達(dá)的Hec-1B與Treg細(xì)胞共培養(yǎng)后發(fā)現(xiàn),與對照組相比,Hec-1BshRANK能明顯抑制CTSS引起的Treg細(xì)胞浸潤(P<0.01),見圖3C。

    2.4Treg細(xì)胞浸潤對子宮內(nèi)膜癌侵襲的影響 從圖4可見,Transwell實(shí)驗(yàn)的結(jié)果顯示,加入Treg細(xì)胞培養(yǎng)上清后小室下室的Hec-1B細(xì)胞數(shù)明顯增加,實(shí)驗(yàn)組與對照組差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

    2.5RANKL對AKT/mTORC信號(hào)通路的影響 Western blot結(jié)果顯示,給予外源性RANKL后,AKT和mTORC的磷酸化水平相較于對照組明顯上升,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見圖5。

    圖1 血清及組織RANKL和CTSS的表達(dá)Fig.1 Expression of RANKL and CTSS in serum and tissueNote: A.Expression of RANKL and CTSS in endometrium; B.Bar charts of RANKL and CTSS;C.Expression of RANKL in serum.Scale bars=50 μm.**.P<0.01.

    圖2 血清及組織Treg細(xì)胞的表達(dá)Fig.2 Expression of Tregs in serum and tissueNote: A.Expression of Foxp3 in endometrium; B.Amount of Treg in serum.*.P<0.05.

    圖3 RANKL對CTSS的表達(dá)調(diào)控及其募集Treg細(xì)胞能力Fig.3 Effects of RANKL on modulating CTSS and recruiting TregsNote: A.Expression of CTSS and GAPDH after stimulating with RANKL; B.Bar charts of CTSS; C.Amount of Tregs after interfering RANK.*.P<0.05.**.P<0.01.

    圖4 Treg細(xì)胞對子宮內(nèi)膜癌侵襲能力的影響Fig.4 Effect of Treg on capacity of invasionNote: A.Amount of Hec-1B after culturing with Treg supernatant; B.Bar charts of Hec-1B.**.P<0.01.Scale bars.50 μm.

    圖5 RANKL對p-AKT及p-mTORC的表達(dá)調(diào)控Fig.5 Effects of RANKL on modulation of p-AKT and p-mTORCNote: A.Expression of p-AKT and p-mTORC after stimulating RANKL; B.Bar charts of p-AKT and p-mTORC.*.P<0.05;**.P<0.01.

    3 討論

    本次研究的目的是分析子宮內(nèi)膜癌患者腫瘤組織中RANKL的表達(dá)水平,并探討其對子宮內(nèi)膜癌侵襲功能的影響。RANKL基因位于13號(hào)染色體上,屬Ⅱ型跨膜蛋白,在體內(nèi)以膜結(jié)合型和可溶性羧基末端兩種形式存在[9]。最近的研究發(fā)現(xiàn),RANKL動(dòng)員多種免疫細(xì)胞,參與一些自身免疫疾病的進(jìn)展[10,11]。在乳腺癌中,RANKL能在孕激素的調(diào)控下影響AKT/mTORC通路,從而介導(dǎo)腫瘤細(xì)胞的轉(zhuǎn)移[12,13]。我們之前的研究已經(jīng)證實(shí),內(nèi)膜癌細(xì)胞株受到RANKL刺激后能上調(diào)N-cadherin和下調(diào)E-cadherin的表達(dá)從而促進(jìn)子宮內(nèi)膜癌轉(zhuǎn)移[4]。本研究結(jié)果顯示子宮內(nèi)膜癌患者血清和腫瘤組織中的RANKL蛋白水平均顯著高于對照者。同時(shí),共培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)證明,RANKL能促進(jìn)Treg細(xì)胞的聚集,從而增強(qiáng)了子宮內(nèi)膜癌的侵襲能力,提示RANKL在子宮內(nèi)膜癌進(jìn)展過程中起著重要作用。

    之前的研究認(rèn)為RANKL能促進(jìn)巨噬細(xì)胞向Ⅱ型(免疫抑制型)轉(zhuǎn)化,從而促進(jìn)腫瘤局部形成免疫抑制狀態(tài)。這也與本次研究的結(jié)果相符。我們發(fā)現(xiàn),子宮內(nèi)膜癌患者中腫瘤組織CTSS表達(dá)水平高于對照組。干擾RANK表達(dá)能明顯抑制CTSS的蛋白水平,并且能抑制Treg細(xì)胞的聚集。CTSS是一種半胱氨酸蛋白酶,具有肽鏈內(nèi)切酶活性[14]。研究表明,CTSS可影響免疫細(xì)胞MHCⅡ抗原呈遞,并且能水解抗原表位造成免疫逃逸[15]。這些結(jié)果提示了CTSS在RANKL募集Treg細(xì)胞促進(jìn)子宮內(nèi)膜癌遷移中可能發(fā)揮了重要作用。

    綜上所述,本次研究發(fā)現(xiàn),RANKL募集Treg細(xì)胞之后可增強(qiáng)子宮內(nèi)膜癌的侵襲功能。其作用機(jī)制可能是通過促進(jìn)AKT和mTORC的磷酸化,影響CTSS的表達(dá)。本研究初步探討了子宮內(nèi)膜癌中Treg細(xì)胞的影響,將為子宮內(nèi)膜癌的診斷和治療提供了潛在靶點(diǎn)。

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