突觸傳遞逆行性信號分子的實(shí)時(shí)電化學(xué)監(jiān)測

張芙莉　邱權(quán)發(fā)　楊小柯　黃衛(wèi)華

摘?要?神經(jīng)系統(tǒng)是人體重要的指揮系統(tǒng)，神經(jīng)細(xì)胞之間的信息交流主要依賴于突觸前分泌的神經(jīng)遞質(zhì)等順行性信號分子以及突觸后釋放的逆行性信號分子。一氧化氮（NO）是一種重要的逆行性信號分子，能夠調(diào)節(jié)突觸強(qiáng)度和突觸可塑性以適應(yīng)不同的生理需求。然而， 目前鮮有逆行性信號分子釋放檢測的報(bào)道。為了實(shí)現(xiàn)突觸后釋放逆行性信號分子NO的實(shí)時(shí)監(jiān)測，本研究在碳纖維電極表面修飾鉑納米顆粒，構(gòu)建了一種具有高時(shí)空分辨率、高靈敏度、響應(yīng)快速的超微電化學(xué)傳感器。首先采用L?精氨酸和谷氨酸刺激海馬神經(jīng)元，證明了海馬神經(jīng)元合成NO以及細(xì)胞膜上N?甲基?D?天冬氨酸受體結(jié)合谷氨酸后釋放NO的能力。在此基礎(chǔ)上，利用高鉀溶液刺激突觸前神經(jīng)元胞體模擬神經(jīng)沖動，誘導(dǎo)突觸前釋放神經(jīng)遞質(zhì)谷氨酸，成功檢測到突觸后神經(jīng)元產(chǎn)生的NO信號。本研究結(jié)果直接證實(shí)了突觸傳遞過程伴隨著逆行性信號分子釋放，建立的方法為研究神經(jīng)系統(tǒng)反饋調(diào)節(jié)和突觸可塑性機(jī)制提供了有力的工具。

關(guān)鍵詞?海馬神經(jīng)元; 突觸傳遞; 逆行性信號分子; 一氧化氮; 電化學(xué)檢測

1?引 言

神經(jīng)系統(tǒng)是人體的最高指揮系統(tǒng)，調(diào)控機(jī)體的各項(xiàng)生理活動，神經(jīng)細(xì)胞之間的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)是神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)揮其功能的基礎(chǔ)。因此，研究神經(jīng)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的分子機(jī)制，對于探索大腦的功能、理解神經(jīng)退行性疾病的致病機(jī)理以及開發(fā)相應(yīng)的療法具有重要意義。

在神經(jīng)系統(tǒng)中，細(xì)胞之間的信息傳遞主要依靠突觸結(jié)構(gòu)完成，突觸是一種神經(jīng)元細(xì)胞膜高度異化的結(jié)構(gòu)，包括突觸前結(jié)構(gòu)、突觸間隙和突觸后結(jié)構(gòu)三個(gè)部分[1，2]。當(dāng)突觸受到外界影響或自身環(huán)境變化時(shí)，突觸的結(jié)構(gòu)和傳遞性能也會隨之改變，這一現(xiàn)象被稱為突觸可塑性。突觸可塑性的實(shí)現(xiàn)依賴于突觸前與突觸后之間的信息交流，其中突觸前的正向信號傳遞主要由神經(jīng)遞質(zhì)等順行性信號分子完成，突觸后向突觸前傳遞信號則依賴于逆行性信號分子[3，4]。逆行性信號分子是指由突觸后細(xì)胞生成或者由突觸活動誘發(fā)，并作用于突觸前神經(jīng)元，調(diào)節(jié)突觸強(qiáng)度、神經(jīng)興奮性以及信號傳遞的分子。根據(jù)其自身性質(zhì)，逆行性信號分子可以分為三類：膜結(jié)合型分子、外分泌因子和膜滲透性分子。其中， 膜滲透性分子以一氧化氮（NO）為主，可以通過擴(kuò)散作用經(jīng)過突觸后細(xì)胞膜和突觸間隙直接進(jìn)入突觸前末梢。如在海馬神經(jīng)元中，突觸前膜釋放的神經(jīng)遞質(zhì)谷氨酸與突觸后膜上的N?甲基?D?天冬氨酸（NMDA）受體結(jié)合[5]，引起Ca2+內(nèi)流，在鈣調(diào)蛋白的作用下，一氧化氮合酶（NOS）被激活，催化底物L(fēng)?精氨酸生成NO，生成的NO擴(kuò)散至突觸前末梢，調(diào)節(jié)突觸強(qiáng)度[4，6]。在神經(jīng)科學(xué)領(lǐng)域，科研人員主要利用轉(zhuǎn)基因、細(xì)胞藥理學(xué)、電生理等手段研究NO的反饋調(diào)節(jié)作用，并且取得了顯著進(jìn)展，逐步揭示了NO的作用通路以及生理效應(yīng)[7～9]。但是，目前還鮮有直接檢測突觸后逆行性信號分子NO釋放的報(bào)道。

用于直接檢測NO的方法很多[10]，如化學(xué)發(fā)光法[11]、熒光法[12]、電子順磁共振技術(shù)[13]、電化學(xué)方法[14～17]等。由于生物體內(nèi)NO含量低，且極不穩(wěn)定，衰減速率快，所以要求檢測方法具有很高的時(shí)空分辨率和優(yōu)良的檢測性能。超微電化學(xué)方法具有檢測靈敏度高、時(shí)空分辨率高、儀器簡單的優(yōu)點(diǎn)[14，17～20]，非常適用于單細(xì)胞水平NO的實(shí)時(shí)動態(tài)監(jiān)測。

本研究構(gòu)建了高靈敏的超微電化學(xué)傳感器，用于單個(gè)神經(jīng)元以及突觸后NO釋放的實(shí)時(shí)監(jiān)測。首先利用L?精氨酸和谷氨酸刺激海馬神經(jīng)元，證明體外培養(yǎng)的海馬神經(jīng)元具備合成和釋放NO的能力。在此基礎(chǔ)上，使用高鉀溶液刺激突觸前神經(jīng)元胞體模擬神經(jīng)信號傳遞過程，成功檢測到突觸后神經(jīng)元釋放的逆行性信號分子NO（圖1）， 為神經(jīng)系統(tǒng)突觸可塑性中NO的生理功能研究提供了新方法。

2?實(shí)驗(yàn)部分

2.1?儀器與試劑

KQ3200DA超聲波清洗器（昆山市超聲儀器有限公司）; Synergy?UV超純水機(jī)（電阻率大于18 MΩ·cm， 法國默克密理愽）; CHI660A電化學(xué)工作站（上海辰華有限公司）; SW?CJ?1FD超凈工作臺（蘇凈集團(tuán)安泰空氣技術(shù)有限公司）; GI54DWS高壓滅菌器（致微儀器公司）; Hera cell 150二氧化碳恒溫細(xì)胞培養(yǎng)箱（美國賽默飛世爾公司）; Zeiss SIGMA掃描電子顯微鏡（德國蔡司公司）; P?2000激光拉制儀（美國Sutter Instrument Company）; MF?200拋光儀顯微鏡（美國World Precision Instruments Inc）; 手動微操作手（手動三軸微操，江蘇瑞明生物科技有限公司）; LSP04?1A注射泵（保定蘭格恒流泵有限公司）; EPC?10膜片鉗電流放大器（德國HEKA公司）; TransferMan NK2電動微操作手（德國艾本德公司）; AxioObserver Z1倒置光學(xué)顯微鏡（德國蔡司公司）。

碳纖維（直徑5～7 μm， 英國Goodfellow Cambridge Limited公司）; 導(dǎo)電碳膠（利用石墨粉與奧斯邦環(huán)氧灌封膠150T?A組分手動調(diào)制而成，使用時(shí)加入少量150T?B混合即可固化）; AB膠（改性聚丙烯酸酯）; 1B100?4和1B100F?4玻璃毛細(xì)管（美國World Precision Instruments， InC）; 新生SD大鼠（湖北省實(shí)驗(yàn)動物研究中心，具備實(shí)驗(yàn)動物使用許可證）; 氯鉑酸（H2PtCl6·6H2O，上海試劑一廠）; 谷氨酸（Glutamate， Glu）、羥乙基哌嗪乙硫磺酸（HEPES）、胰蛋白酶、基礎(chǔ)培養(yǎng)基DMEM?F12和B?27、雙抗（青霉素+鏈霉素）（Amresco公司）; 神經(jīng)生長因子（NGF）、聚賴氨酸（PLL）、層粘連蛋白（Laminin）、L?精氨酸（L?Arg）、L?NAME、Hemin（美國西格瑪公司）。其余試劑均購買于國藥集團(tuán); 所用試劑，如未特殊說明均為分析純，且未經(jīng)進(jìn)一步純化直接使用。

2.2?實(shí)驗(yàn)方法

2.2.1?碳纖維微米電極的制備?利用導(dǎo)電碳膠將長度為1～2 cm的碳纖維與銅絲粘結(jié)，并依次將碳纖維浸入無水乙醇和超純水中超聲清洗，晾干。從拉制儀拉制的尖端口徑為5～7 μm的玻璃毛細(xì)管尾部穿入碳纖維?銅絲，并伸出毛細(xì)管尖端約50 μm，將玻璃管尖端靠近酒精燈火焰，熔融封口。再將裸露的碳纖維撞擊玻璃平面形成尖端碳纖維長度約5 μm的微柱電極。最后采用AB膠密封玻璃管和銅絲連接處。

2.2.2?微電極電化學(xué)性能的表征?采用循環(huán)伏安法（CV）進(jìn)行電極表征，電化學(xué)實(shí)驗(yàn)采用兩電極體系：微電極為工作電極， Ag/AgCl電極為參比電極和對電極，1 mmol/L鐵氰化鉀為電化學(xué)探針。循環(huán)伏安檢測均在CHI660A電化學(xué)工作站上進(jìn)行。

2.2.3?微電極的修飾?利用電化學(xué)還原法在微電極表面修飾鉑納米顆粒，采用兩電極體系：微電極作為工作電極，Ag/AgCl電極為參比電極和對電極，鍍鉑溶液為1 mmol/L氯鉑酸，0.2 mmol/L硫酸鈉。電沉積電位范圍為0.1 V～0.6 V，沉積電量為0.1 μC。并采用循環(huán)伏安法和恒電位計(jì)時(shí)電流法，表征鉑納米顆粒修飾的碳纖維微米電極檢測NO的能力。

2.2.4?神經(jīng)細(xì)胞的獲得與培養(yǎng)?實(shí)驗(yàn)所用原代海馬神經(jīng)元取自新生SD大鼠海馬組織。具體步驟如下：取出新生幼鼠腦部，找出月牙狀的海馬體，沿著海馬區(qū)邊緣將海馬組織取出。將上述取出的海馬組織轉(zhuǎn)移至裝有0.125%胰酶消化液的培養(yǎng)皿，放入37℃細(xì)胞培養(yǎng)箱消化。3 min后，加入無血清培養(yǎng)基終止消化，并用移液槍反復(fù)吹打制成細(xì)胞懸浮液。將上述細(xì)胞懸浮液接種于預(yù)先用0.02% PLL和10 μg/mLlaminin孵育過的玻片上，然后在37℃、5% CO2環(huán)境下培養(yǎng)于無血清培養(yǎng)基中。

2.2.5?細(xì)胞實(shí)驗(yàn)?將細(xì)胞培養(yǎng)基移除，洗凈，換為細(xì)胞外液。利用倒置顯微鏡明場成像觀察細(xì)胞，尋找海馬神經(jīng)元之間的突觸連接。預(yù)先用激光拉制儀制備尖端約為10 μm的毛細(xì)加樣管，灌入相應(yīng)的刺激溶液，連接注射泵用于刺激細(xì)胞。利用微操作手分別將微電極和加樣管移動至細(xì)胞附近。加樣管距離刺激細(xì)胞約50 μm，電極尖端靠近待測細(xì)胞，在顯微鏡40倍物鏡下可以觀察到電極與細(xì)胞膜接觸，并使細(xì)胞膜輕微變形。采用安培法監(jiān)測信號，電壓設(shè)置為700 mV，利用膜片鉗放大器對信號進(jìn)行放大，并使用軟件“Pluse”進(jìn)行數(shù)據(jù)采集（采集頻率設(shè)置為1 kHz）。為減小噪音，上述操作均在法拉第籠中進(jìn)行，并且相關(guān)儀器都已接地。

3?結(jié)果與討論

3.1??碳纖維微米電極的制備與表征

參考本課題組之前發(fā)展的方法[20]， 采用火焰熔融玻璃毛細(xì)管密封碳纖維，制備了碳纖維微米電極（Carbon fiber microelectrodes， CFMEs），電極尖端直徑約為3～5 μm，長度控制在5 μm左右（圖2A）。 此電極具有優(yōu)良的電化學(xué)性能，充電電流?。▓D2B），且不同批次制備的電極具有良好的重現(xiàn)性和穩(wěn)定性（圖2C）。

3.2?碳纖維微米電極的修飾和表征

為了增強(qiáng)電極對NO的響應(yīng)性能， 采用電化學(xué)還原的方法在CFMEs表面沉積鉑納米顆粒。掃描電鏡結(jié)果（圖3A）表明，沉積的鉑納米顆粒尺寸約為50～100 nm，且分布均勻，無明顯團(tuán)聚現(xiàn)象。利用循環(huán)伏安法考察鉑納米顆粒修飾的碳纖維微米電極（Pt/CFME）對NO的電化學(xué)檢測性能。與CFME相比，Pt/CFME對NO的響應(yīng)顯著增強(qiáng)，當(dāng)電壓達(dá)到0.5 V時(shí)可以觀察到明顯的電化學(xué)氧化電流，并在0.65 V處達(dá)到峰值（圖3B）。上述結(jié)果表明， 鉑納米顆粒被成功修飾在碳纖維電極表面，且對NO有良好的電化學(xué)檢測能力。

為了考察Pt/CFMEs對NO的定量檢測能力， 測量了電極對不同濃度NO的安培響應(yīng)。結(jié)果如圖3C所示，電極對不同濃度的NO響應(yīng)迅速，信號穩(wěn)定，在9～180 μmol/L濃度范圍內(nèi)對NO具有良好的線性響應(yīng)（R2=0.9829），電極靈敏度為66 nA L/mmol，檢出限為0.37 μmol/L。

3.3?L?精氨酸刺激海馬神經(jīng)元釋放NO

細(xì)胞內(nèi)的NO主要由NOS催化氧化L?精氨酸合成。為了驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)中培養(yǎng)的原代海馬神經(jīng)元合成和釋放NO的能力， 使用L?精氨酸溶液刺激單個(gè)海馬神經(jīng)元，并對其釋放的信號進(jìn)行檢測。

如圖4A所示，向正常海馬神經(jīng)元加入L?精氨酸刺激液后，迅速檢測到電流上升信號（如曲線a所示，從起始上升到達(dá)到峰值耗時(shí)僅數(shù)十毫秒）。這是由于較高濃度的L?精氨酸進(jìn)入細(xì)胞，被胞內(nèi)的NOS迅速氧化生成NO，脂溶性的NO穿過細(xì)胞膜，擴(kuò)散到神經(jīng)細(xì)胞外，被電極檢測。為了驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)中的電流信號來自NO，加入NOS的抑制劑（L?NAME）作為對照實(shí)驗(yàn)，結(jié)果顯示， 該條件下使用L?精氨酸刺激液無明顯的安培信號產(chǎn)生（曲線b）。由此， 可以確認(rèn)實(shí)驗(yàn)中培養(yǎng)的海馬神經(jīng)元具備合成和分泌NO的功能，且釋放的NO能被Pt/CFME順利檢測。

3.4?谷氨酸刺激海馬神經(jīng)元釋放NO

為了模擬突觸傳遞中突觸前細(xì)胞胞吐釋放谷氨酸調(diào)控突觸后細(xì)胞的過程，直接利用谷氨酸溶液刺激海馬神經(jīng)元，考察海馬神經(jīng)元細(xì)胞膜上的NMDA受體被谷氨酸激活后是否引起NO釋放。如圖4B所示，當(dāng)海馬神經(jīng)元受到谷氨酸刺激后，產(chǎn)生明顯的安培響應(yīng)信號，維持?jǐn)?shù)秒鐘后逐漸減弱（曲線a）。為了驗(yàn)證這一信號的來源，進(jìn)行了如下兩組對照實(shí)驗(yàn)。首先，加入NOS抑制劑 L?NAME，使用谷氨酸刺激神經(jīng)細(xì)胞時(shí)，無明顯安培信號產(chǎn)生（數(shù)據(jù)未給出）。此外， 在檢測體系中加入NO的清除劑血紅素（Hemin），谷氨酸刺激海馬神經(jīng)元時(shí)也無明顯安培信號產(chǎn)生（曲線b）。上述結(jié)果表明， 實(shí)驗(yàn)中采集到的安培信號來源于海馬神經(jīng)元釋放的NO，即NMDA受體被谷氨酸激活后可促使NO的合成與釋放。

3.5?高鉀溶液刺激海馬神經(jīng)元突觸釋放NO

為了考察突觸傳遞過程中是否會釋放逆行性信號分子NO， 使用高鉀溶液刺激突觸前海馬神經(jīng)元胞體[20]（刺激毛細(xì)管在圖中未顯示），產(chǎn)生的神經(jīng)沖動沿軸突傳遞（圖中紅色虛線箭頭），到達(dá)軸突終端后引發(fā)谷氨酸胞吐釋放（圖中藍(lán)色箭頭所指處），將Pt/CFME置于突觸后膜處（圖中黑色箭頭所指處），對突觸后細(xì)胞釋放的信號進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)測（圖4C）。如圖4D所示，實(shí)驗(yàn)中有明顯的安培信號出現(xiàn)，說明在真實(shí)的突觸傳遞過程中，突觸后細(xì)胞會合成和釋放NO。前文中提到，反饋信使NO的生成路徑涉及到谷氨酸胞吐釋放以及突觸后膜上的NMDA受體激活等過程，因此，采用鎘離子抑制突觸前谷氨酸釋放（曲線b）或采用NMDA 受體拮抗劑美金剛[21]（曲線c）孵育細(xì)胞，抑制突觸傳遞過程。結(jié)果表明， 兩種情況下均無信號產(chǎn)生，進(jìn)一步表明神經(jīng)元在進(jìn)行突觸信息傳遞時(shí)伴隨著逆行性信號分子NO釋放過程。相比于谷氨酸直接刺激海馬神經(jīng)元產(chǎn)生的信號，高鉀溶液刺激突觸前細(xì)胞引起突觸后細(xì)胞產(chǎn)生的NO信號明顯變小，且持續(xù)時(shí)間縮短。可能原因是高濃度谷氨酸過度激活NMDA受體產(chǎn)生神經(jīng)毒性[22]，從而釋放大量NO[5]，且目前已有研究表明NO參與谷氨酸介導(dǎo)的神經(jīng)興奮性毒性，而在正常突觸傳遞過程中，逆行性信號分子則會維持在一個(gè)合理水平。

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Real?time Electrochemical Detection of

Retrograde Messengers in Synaptic Transmission

ZHANG Fu?Li， QIU Quan?Fa， YANG Xiao?Ke， HUANG Wei?Hua*

（College of Chemistry and Molecular Sciences， Wuhan University， Wuhan 430072， China）

Abstract?Nervous system is a significant command system， and the communication between neurons depends on anterograde messengers such as neurotransmitters released from presynaptic neurons and retrograde messengers from postsynaptic cells. As an important kind of retrograde messengers， nitric oxide can regulate synaptic strength for different physiological needs. Whereas， most current researches focus on presynaptic exocytosis of neurotransmitters but ignore the detection of retrograde messengers. To monitor retrograde messenger nitric oxide released from postsynaptic neurons， we developed an electrochemical sensor with rapid response， high sensitivity and spatio?temporal resolution by modifying platinum nanoparticles on carbon fiber microelectrodes. The ability of hippocampal neurons to synthesize and secrete nitric oxide was firstly evidenced by successful detection of nitric oxide released from L?arginine??or glutamate?stimulated neurons. On this basis， the neuronal transmission was initiated by stimulating presynaptic neuron with high potassium solution， and the nitric oxide released from postsynaptic neurons was monitored in real time. The results demonstrated that synaptic transmission was accompanied with the release of retrograde messengers. This method

has promising potential in exploring synaptic feedback regulation and plasticity in nervous system.

Keywords?Hippocampal neurons; Synaptic transmission; Retrograde messengers; Nitric oxide; Electrochemical detection