李 航 楊 蝶 劉慧芝
(遵義醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院醫(yī)務(wù)處,遵義 563003 )
卵巢癌是最常見的婦科惡性腫瘤之一[1]。盡管在過去數(shù)十年中卵巢癌的臨床治療策略有了顯著改善,但其5年生存率仍較低,約為35%~38%[2]。至今,關(guān)于卵巢癌的潛在發(fā)展機制尚不完全清楚。因此,闡明卵巢癌發(fā)生和進展的具體機制對于臨床開展新的診療方案至關(guān)重要。
微小RNA(microRNA,miRNA)是一類進化上高度保守的非編碼RNA,通過與靶基因3′非翻譯區(qū)結(jié)合,在轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)節(jié)靶基因的表達[3]?;谡{(diào)控靶蛋白的功能,miRNA在腫瘤的多種生物學(xué)過程中發(fā)揮作用,包括有細胞增殖、凋亡、侵襲、遷移等,進而在腫瘤發(fā)生中扮演致癌或腫瘤抑制功能,并有望成為卵巢癌的潛在治療靶標[4,5]。
miRNA-600是一種癌癥相關(guān)miRNA,在胃癌、急性白血病等不同癌癥中發(fā)揮抑癌作用[6,7]。然而,到目前為止,miRNA-600在卵巢癌的作用尚不清楚。因此,在本研究中,我們首先分析miRNA-600在卵巢癌及癌旁的表達情況,并分析其對卵巢癌侵襲和遷移中的影響及可能的機制。
1.1材料
1.1.1試劑 卵巢癌細胞系SKOV3、A2780、OVCAR-3、HO-8910和人卵巢表面上皮細胞系HOSEpiC均購自中國科學(xué)院上海生科院細胞資源中心;RPMI1640培養(yǎng)基購自美國Gibco-BRL公司;10%胎牛血清購自美國HyClone公司;miRNA-600模擬物、miRNA-600抑制劑、模擬物與抑制劑對照物均購自廣州復(fù)能基因有限公司;對氧磷酶3(Paraoxonase 3,PON3)及其對照載體等均購自美國Sigma公司;Lipofectamine 2000購自美國Invitrogen公司;TRIzol、miRNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、miRNA測定試劑盒均購自武漢生之源生物科技股份有限公司;引物序列購自武漢天一輝遠生物公司;Western blot所用PON3、E-鈣黏素、N-鈣黏素、基質(zhì)金屬蛋白酶(Matrix metalloproteinase,MMP)-2、MMP-9和GAPDH一抗及二抗均購自美國Abcam公司;免疫組化所用PON3、E-鈣黏素、N-鈣黏素、MMP-2、MMP-9一抗和二抗均購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司;雌性裸鼠購自吉林大學(xué)實驗動物中心。
1.1.2卵巢癌組織樣本收集 收集2017年1月至2018年10月我院婦產(chǎn)科經(jīng)手術(shù)治療的卵巢癌患者共50例,年齡46~68歲,平均(58.7±7.2)歲,獲取50對癌及癌旁組織(距離癌組織>3 cm)。將組織樣品快速冷凍并儲存在液氮中用于進一步研究。卵巢癌患者納入與排除標準:①排除已接受免疫療法及化療或放療患者;②納入患者須獲得本人或直系家屬知情同意并簽署知情同意書;③排除既往有其他惡性腫瘤史者。卵巢癌分期根據(jù)2018年國際婦產(chǎn)科聯(lián)合會標準[8]。本次研究經(jīng)院倫理委員會批準。
1.2方法
1.2.1細胞系與細胞培養(yǎng) SKOV3、A2780、OVCAR-3、HO-8910和HOSEpiC細胞系均在含有10%胎牛血清和1%青霉素/鏈霉素的RPMI1640培養(yǎng)基中生長,培養(yǎng)在37℃,5%CO2培養(yǎng)箱。
1.2.2細胞轉(zhuǎn)染 使用Lipofectamine 2000將miRNA-600模擬物、miRNA-600抑制劑、模擬物與抑制劑對照物、PON3及其對照載體等轉(zhuǎn)染到卵巢癌細胞。
1.2.3實時定量逆轉(zhuǎn)錄PCR(Real-time quantitative reverse transcription-PCR,qRT-PCR) 應(yīng)用TRIzol法提取卵巢癌組織樣品和卵巢癌細胞中總RNA。使用miRNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒和miRNA測定試劑盒進行qRT-PCR測定。U6和GAPDH分別作為miRNA-600和PON3的內(nèi)參。引物序列如下,miRNA-600正向:5′-CTGTGTGCCACACAGTTTG-3′,反向:5′-CGGCCCTTAACTCATTCTTT-3′;U6正向:5′-CGCTTCGGCAGCACATATAC-3′,反向:5′-CAGGGGCCATGCTAATCTT-3′;PON3正向:5′-CTCGGCAGTGTGTGGGGTC-3′;反向:5′-CGAGAAACTCCTGCTTGGGG-3′;GAPDH正向:5′-ATTCCATGGCACCGTCAAGGC-TGA-3′;反向:5′-TTCTCCATGGTGGTGAAGACGC-CA-3′。應(yīng)用2-ΔCT法進行相對表達量計算,每個樣本重復(fù)檢測3次。
1.2.4Western blot 使用RIPA裂解緩沖液提取細胞蛋白,并使用BCA試劑盒測量蛋白質(zhì)濃度。在濃度為10%的SDS凝膠上加載并分離蛋白后,將細胞蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移到PVDF膜上。將膜與PON3、E-鈣黏素、N-鈣黏素、MMP-2、MMP-9和GAPDH一抗4℃孵育過夜。將對應(yīng)二抗與PVDF膜在室溫下孵育2 h。使用ECL試劑檢測目的蛋白質(zhì)的表達水平。
1.2.5細胞遷移和侵襲測定 為了確定卵巢癌細胞的遷移能力,通過將相應(yīng)轉(zhuǎn)染處理的細胞(1×105個/孔)加至6孔板中進行劃痕試驗測定。隨后,用無菌塑料微量移液管尖端在細胞單層中創(chuàng)建一個均勻的劃痕。用PBS洗滌細胞并在37℃,5%CO2條件下培養(yǎng)24 h。然后,用倒置相差顯微鏡在劃痕后0 h和24 h對細胞進行成像。采用Image J軟件測量劃痕后兩條細胞邊緣之間的垂直距離,計算細胞24 h遷移率,遷移率(%)=(0 h劃痕間距-24 h劃痕間距)/0 h劃痕間距×100%。
使用Transwell實驗測定細胞侵襲能力。將無血清培養(yǎng)基中的2×105個細胞接種到涂有基質(zhì)膠的上室中。在下室中加入含有10%FBS的RPMI1640培養(yǎng)基作為化學(xué)引誘劑。24 h后,用棉簽輕輕除去上室中非侵入細胞,并用70%乙醇固定侵入基質(zhì)膠的細胞30 min,經(jīng)0.1%結(jié)晶紫染色10 min。用倒置光學(xué)顯微鏡以200×放大倍數(shù)視野中拍攝細胞,并在5個隨機視野中計算細胞數(shù)量。
1.2.6免疫組織化學(xué)染色 將石蠟切片(約4 μm厚度)進行脫蠟并通過二甲苯和梯度乙醇再水合,放置于3%過氧化氫一起溫育10 min以淬滅內(nèi)源性過氧化物酶活性。然后,在室溫下用山羊血清封閉1 h,并與PON3、E-鈣黏素、N-鈣黏素、MMP-2、MMP-9單克隆抗體一起溫育,4℃過夜。堿性磷酸酶二抗室溫孵育1 h。最后,用二氨基聯(lián)苯胺染色切片,然后蘇木精染色。應(yīng)用ImagePro Plus對免疫組化結(jié)果進行分析,并按陽性細胞百分比及陽性細胞染色強弱評分。免疫組織化學(xué)評分=a×b,a代表陽性細胞百分比(a=0,無陽性細胞;a=1,陽性細胞為1%~10%;a=2,陽性細胞為11%~50%;a=3,陽性細胞為51%~80%,a=4陽性細胞所占比例達81%以上),b代表陽性細胞染色強弱(b=0,陰性;b=1,弱陽性;b=2,中度陽性;b=3,強陽性)。
1.2.7熒光素酶報告基因測定 為研究miRNA-600是否與PON3的3′非翻譯區(qū)相互作用,進行了熒光素酶報告基因測定。將PON3的3′非翻譯區(qū)序列或突變序列克隆到pMIR-REPORT載體中。將miRNA-600模擬物或相應(yīng)的對照與報告質(zhì)粒和pRL-SV40一起轉(zhuǎn)染到卵巢癌細胞中。48 h后測定熒光素酶活性水平。
1.2.8裸鼠體內(nèi)實驗 對于腫瘤轉(zhuǎn)移實驗,將經(jīng)轉(zhuǎn)染處理的約2×106個細胞于腹膜內(nèi)注射至6~8周齡的雌性裸鼠中。3周后處死小鼠并計數(shù)腹膜內(nèi)腫瘤結(jié)節(jié)。收獲每只小鼠的結(jié)節(jié)用于qRT-PCR和免疫組織化學(xué)染色。
2.1miRNA-600在卵巢癌組織及細胞系的表達情況 與癌旁組織相比,癌組織中miRNA-600的相對表達量顯著降低(6.11±1.15 vs 3.81±0.69,t=7.139,P<0.05),見圖1A。且Ⅲ~Ⅳ和發(fā)生淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的卵巢癌患者組織中miRNA-600水平顯著低于Ⅰ~Ⅱ和未發(fā)生淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移者(P<0.05),見表1。與HOSEpiC(8.13±0.52)相比,SKOV3(4.06±0.11)、 A2780(3.87±0.35)、 OVCAR-3(2.18±0.17)、HO-8910(3.04±0.42)中miRNA-600的相對表達量均顯著降低(t=8.225、8.470、11.013、9.264,P<0.05),且在OVCAR-3細胞中降低最為顯著,故選擇OVCAR-3進行后續(xù)實驗,見圖1B。
圖1 卵巢癌組織及細胞系中miRNA-600的表達水平Fig.1 Expression levels of miRNA-600 in ovarian cancer tissues and cell linesNote: *.P<0.05.
表1 miRNA-600表達水平與卵巢癌臨床病理學(xué)特征之間的關(guān)聯(lián)
Tab.1 Association between miRNA-600 expression levels and clinical pathological features of ovarian cancer
Clinical pathologicalfeaturesnRelative expression of miRNA-600x±stPAge(year)1.2390.407>60233.95±0.70≤60273.69±0.63Tumor size1.0970.762>5 cm373.87±0.65≤5 cm133.64±0.67Staging5.1940.003Ⅰ-Ⅱ354.19±0.75Ⅲ-Ⅳ152.93±0.46Lymph node metastasis-6.3970.001Yes122.73±0.52No384.15±0.74
2.2過表達miRNA-600可抑制OVCAR-3細胞侵襲與轉(zhuǎn)移 與模擬物對照[miRNA-600:2.13±0.18;N-鈣黏素:4.78±0.69;E-鈣黏素:2.07±0.24;MMP-2:5.16±0.73;MMP-9:4.44±0.62;遷移率:(73.45±5.18)%;細胞侵襲數(shù)量:47.22±6.90]相比,miRNA-600模擬物[miRNA-600:7.88±0.69;N-鈣黏素:2.21±0.45;E-鈣黏素:4.67±0.20;MMP-2:2.04±0.12;MMP-9:2.39±0.20;遷移率:(37.63±3.76)%;細胞侵襲數(shù)量:19.34±4.63]的miRNA-600與E-鈣黏素顯著增高,而N-鈣黏素、MMP-2、MMP-9、遷移率和細胞侵襲數(shù)量顯著降低(P<0.05);與抑制劑對照[miRNA-600:2.15±0.19;N-鈣黏素:1.89±0.22;E-鈣黏素:4.92±0.42;MMP-2:1.76±0.09; MMP-9: 1.88±0.12; 遷移率:(41.45±3.97)%;細胞侵襲數(shù)量:41.56±7.98]相比,miRNA-600抑制劑[miRNA-600:0.26±0.08;N-鈣黏素:4.67±0.60;E-鈣黏素:1.85±0.07;MMP-2:4.38±0.57;MMP-9:4.55±0.60;遷移率:(84.12±6.50)%;細胞侵襲數(shù)量:62.89±9.57]的miRNA-600與E-鈣黏素顯著降低,而N-鈣黏素、MMP-2、MMP-9、遷移率和細胞侵襲數(shù)量顯著增高(P<0.05),見圖2。
圖2 miRNA-600抑制OVCAR-3細胞的侵襲與轉(zhuǎn)移Fig.2 miRNA-600 inhibits invasion and metastasis of OVCAR-3 cellsNote: A.miRNA-600 transfection effect;B.E-cadherin,N-cadherin,MMP-2,MMP-9 protein levels in different transfection groups;C,D.Cell migration ability between different transfection groups;E,F(xiàn).Cell invasion ability between different transfection groups.
2.3PON3介導(dǎo)miRNA-600對OVCAR-3細胞侵襲與轉(zhuǎn)移功能的影響 TargetScan預(yù)測PON3是miRNA-600的靶基因,且該結(jié)果在雙熒光素酶報告基因檢測中也得以驗證,見圖3A、B。與模擬物對照(PON3 mRNA:6.62±0.73;PON3蛋白:14.36±1.47)相比,miRNA-600模擬物(PON3 mRNA:2.22±0.26;PON3蛋白:2.65±0.29)的PON3 mRNA與蛋白水平均顯著降低(P<0.05),與抑制劑對照(PON3 mRNA:5.96±0.94;PON3蛋白:10.13±1.34)相比,miRNA-600抑制劑(PON3 mRNA:8.98±1.54;PON3蛋白:18.76±1.98)的PON3 mRNA與蛋白水平均顯著增高(P<0.05),見圖3C、F。
與模擬物對照[遷移率:(46.45±3.88)%;細胞侵襲數(shù)量:49.76±4.26]相比,miRNA-600模擬物[遷移率:(22.09±1.68)%; 細胞侵襲數(shù)量:26.17±3.40]的OVCAR-3細胞遷移率和細胞侵襲數(shù)量均顯著降低(P<0.05),PON3載體[遷移率:(92.11±6.05)%;細胞侵襲數(shù)量:77.04±7.64]的OVCAR-3細胞遷移率和細胞侵襲數(shù)量均顯著增高(P<0.05),而miRNA-600模擬物聯(lián)合PON3載體[遷移率:(55.09±4.16)%;細胞侵襲數(shù)量:52.36±5.37]OVCAR-3細胞遷移率和細胞侵襲數(shù)量差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),見圖3D、E。
圖3 PON3與miRNA-600的靶向關(guān)系驗證Fig.3 PON3 and miRNA-600 targeting relationship verificationNote: A.TargetScan predicts miRNA-600 target gene;B.Dual luciferase reporter gene test results;C.miRNA-600 targets and regulates the expression of PON3 mRNA;D.miRNA-600 inhibits migration of OVCAR-3 cells by down-regulating PON3;E.miRNA-600 inhibits OVCAR-3 cell invasion by down-regulating PON3;F.miRNA-600 targets and regulates the expression of PON3 protein.*.P<0.05.
圖4 miRNA-600可抑制裸鼠卵巢癌細胞的轉(zhuǎn)移及PON3表達Fig.4 miRNA-600 inhibits metastasis and PON3 expression in ovarian cancer cells in nude mice
2.4過表達miRNA-600可抑制裸鼠卵巢癌細胞的轉(zhuǎn)移 與模擬物對照[結(jié)節(jié)重量:(2.76±0.22)g;結(jié)節(jié)數(shù)量:(13.45±2.54)]相比,miRNA-600模擬物[結(jié)節(jié)重量:(0.69±0.08)g;結(jié)節(jié)數(shù)量:4.19±0.63]處理的裸鼠腹腔內(nèi)腫瘤轉(zhuǎn)移結(jié)節(jié)重量和數(shù)量均顯著降低(P<0.05)。免疫組織化學(xué)染色結(jié)果顯示,與模擬物對照(9.76±0.91)相比,miRNA-600模擬物(1.84±0.16)處理的裸鼠結(jié)節(jié)中PON3的免疫組化評分顯著降低(P<0.05)。
前期多篇報道指出miRNA在卵巢癌進展中起著至關(guān)重要的作用[4,5]。在本研究中,我們探討了miRNA-600在卵巢癌中的作用,發(fā)現(xiàn)在卵巢癌組織和細胞系中miRNA-600分別比正常卵巢組織和細胞系顯著下調(diào)。此外,Ⅲ~Ⅳ和發(fā)生淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的卵巢癌患者組織中miRNA-600水平顯著低于Ⅰ~Ⅱ和未發(fā)生淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移者。miRNA-600可通過下調(diào)PON3表達促進E-鈣黏素表達,并下調(diào)N-鈣黏素、MMP-2、MMP-9表達,進而抑制卵巢癌細胞的遷移和侵襲,并可降低異種移植裸鼠腹腔腫瘤轉(zhuǎn)移的數(shù)量和腫瘤大小。
E-鈣黏素和N-鈣黏素是評估腫瘤細胞遷移能力的兩個重要分子標志物,E-鈣黏素是轉(zhuǎn)移抑制分子,其水平增高將降低癌細胞的遷移能力[9];N-鈣黏素則與E-鈣黏素功能相反,其水平增高則會顯著促進癌細胞的遷移[10]。MMP-2和MMP-9是基質(zhì)金屬蛋白酶家族的重要成員,兩者增高會促進腫瘤細胞的侵襲能力[11]。本實驗發(fā)現(xiàn),miRNA-600能促進E-鈣黏素,并抑制N-鈣黏素、MMP-2和MMP-9表達,提示miRNA-600具有抑制卵巢癌細胞遷移與侵襲的功能。
PON3是分子量約為40 kD的糖蛋白,已被發(fā)現(xiàn)在多種腫瘤中過表達,并可通過在癌細胞中螯合泛半醌結(jié)構(gòu)而減少腫瘤細胞線粒體中超氧化物的形成,進而提高腫瘤細胞的抗氧化能力,促進其遷移與侵襲[12]。本研究通過TargetScan軟件預(yù)測miRNA-600可直接靶向作用于PON3 mRNA的3′非翻譯區(qū),從而抑制PON3 mRNA和蛋白表達水平。
綜上所述,miRNA-600可抑制卵巢癌OVCAR-3細胞遷移與侵襲能力,其機制與調(diào)控靶基因PON3密切相關(guān)。