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    高效液相色譜法測(cè)定發(fā)酵液中有機(jī)酸的優(yōu)化研究

    2019-10-16 10:36:44馬永強(qiáng)鄧倩范洪臣李鳳
    中國(guó)調(diào)味品 2019年10期
    關(guān)鍵詞:柱溫小柱有機(jī)酸

    馬永強(qiáng),鄧倩,范洪臣,李鳳

    (哈爾濱商業(yè)大學(xué) 食品工程學(xué)院省高校食品科學(xué)與工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,哈爾濱 150076)

    啤酒是世界上最受歡迎的含酒精飲料[1]。通常由麥芽、酵母、酒花和水4種原料釀造[2]。啤酒營(yíng)養(yǎng)豐富,其組成成分包括各類醇、醛、酸、酮和酯[3-5]。小麥啤酒是啤酒的重要分類,區(qū)別于拉格啤酒釀造,是在釀造原料中添加小麥,采用艾爾酵母,較高的發(fā)酵溫度(18~25 ℃),因此其發(fā)酵液具有不同于其他種類啤酒特殊的水果香氣和酸味,尤其是酸味給發(fā)酵液帶來了重要作用。發(fā)酵液的酸味主要由無機(jī)酸和有機(jī)酸組成,有機(jī)酸是發(fā)酵液中存在的重要化合物,它不僅對(duì)啤酒的酸味有重大影響,而且還具有其他風(fēng)味特征,如苦味或咸味[6]。研究表明,啤酒中含有醋酸、蘋果酸、檸檬酸、富馬酸、甲酸鹽、乳酸、琥珀酸等多種有機(jī)酸,這些有機(jī)酸在不同類型的發(fā)酵液中含量差異很大[7]。此外,有機(jī)酸也會(huì)影響發(fā)酵液的酸堿度,這會(huì)影響發(fā)酵液的質(zhì)量,如風(fēng)味穩(wěn)定性[8]。Coote和Kirsop以及Mackenzie和Kenny都發(fā)現(xiàn)有機(jī)酸的生成是導(dǎo)致發(fā)酵過程中pH值下降的重要因素[9]。影響發(fā)酵液的酸味及其他風(fēng)味特征,因此,控制啤酒中有機(jī)酸的含量是十分重要的。Li Hong和Liu Fang[10]研究了拉格啤酒發(fā)酵產(chǎn)生的7種有機(jī)酸規(guī)律以及對(duì)啤酒風(fēng)味的影響。

    有機(jī)酸的種類和含量對(duì)發(fā)酵液有機(jī)酸的研究起著重要作用,但發(fā)酵液由于所含成分與拉格啤酒、醋等發(fā)酵產(chǎn)物成分千差萬別,因此在樣品的前處理、測(cè)量條件上都會(huì)不同。有機(jī)酸測(cè)定的方法較多,包括電位滴定法[11]、分光光度法、氣相色譜法、離子色譜法、高效液相色譜法[12]等。上述方法中,液相色譜法最靈敏和準(zhǔn)確并且被廣泛運(yùn)用。本研究通過優(yōu)化反相C18柱的色譜條件和預(yù)處理?xiàng)l件,擬建立一種操作簡(jiǎn)單、方便,且具有靈敏性、準(zhǔn)確性、穩(wěn)定性的發(fā)酵液中有機(jī)酸的測(cè)定方法,對(duì)發(fā)酵液前處理的優(yōu)化形成一套檢測(cè)有機(jī)酸的體系,使數(shù)據(jù)更精準(zhǔn),也可以為其他發(fā)酵食品提供借鑒方法。

    1 實(shí)驗(yàn)

    1.1 儀器與設(shè)備

    Agilent 1200 高效液相色譜儀 美國(guó)Agilent 公司;Tiank C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)色譜柱、預(yù)處理柱Superclean C18(500 mg/6 mL) 美國(guó)菲羅門公司;SHE-111型超聲波清洗器 鄭州長(zhǎng)城科工貿(mào)有限公司;電子天平 Sartorinls儀器(北京)有限公司;高速冷凍離心機(jī) 上海歡奧科技有限公司。

    1.2 材料與試劑

    標(biāo)準(zhǔn)品:檸檬酸、琥珀酸、乳酸、蘋果酸、草酸、酒石酸、冰醋酸,美國(guó)Sigma公司;發(fā)酵液:保拉納酵母型發(fā)酵液,德國(guó)保拉納啤酒(北京)有限責(zé)任公司;試劑:H3PO4、HCl、NH3·H2O、NaH2PO4、KH2PO4、(NH4)2HPO4、亞鐵氰化鉀、硫酸鋅、乙酸鋅、三氯乙酸:AR,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制

    有機(jī)酸標(biāo)準(zhǔn)品的配制參照GB 5009.157—2016中方法。酒石酸、蘋果酸、乳酸、檸檬酸、草酸、冰醋酸及琥珀酸,取表1中濃度各5 mL,用0.02 mol/L的磷酸定容至100 mL容量瓶中。

    表1 有機(jī)酸混合標(biāo)準(zhǔn)溶液配制參照濃度Table 1 Reference concentration of mixed standard solution of organic acids

    1.3.2 樣品前處理

    取5 mL啤酒樣品于100 mL 容量瓶中,分別加入2 mL 10.6%亞鐵氰化鉀和2 mL 30%硫酸鋅溶液,超純水定容至100 mL。搖勻后靜止10 min后,用45000 r/min離心機(jī)分離20 min。取上清液加入用甲醇活化好的Superclean C18小柱中,使樣品溶液緩慢流過小柱以除去色素等干擾物,棄去最初2 mL流出液,收集樣液。

    1.3.3 測(cè)定條件優(yōu)化1.3.3.1 不同前處理?xiàng)l件

    a.蛋白沉淀劑的選擇

    參考錢國(guó)英[13]、儲(chǔ)黎娟等[14]及余永健等[15]關(guān)于食醋有機(jī)酸的測(cè)定,分別采用亞鐵氰化鉀-乙酸鋅,亞鐵氰化鉀-硫酸鋅及無水乙醇進(jìn)行前處理,余下條件不變,觀察其有機(jī)酸分離效果。

    b.分離方法的選擇

    根據(jù)王奇等[16]的食醋有機(jī)酸前處理方法,啤酒無法直接在蛋白沉淀劑處理后完全沉淀、分離、過濾,所以參考張奇等[17]的離心機(jī)分離法,并結(jié)合實(shí)驗(yàn)室設(shè)備設(shè)定為轉(zhuǎn)速45000 r/min,時(shí)間20 min。

    c.固相萃取小柱的對(duì)比選擇

    選擇Superclean C18小柱、舊Superclean C18小柱、活性炭小柱分別采用甲醇進(jìn)行活化,然后用超純水將甲醇洗凈[18],最后將已通過前處理的樣品溶液緩慢流過小柱以除去色素等干擾物,棄去最初流出的2 mL,收集其后的流出液在確定的最佳色譜條件下進(jìn)樣分析,考察不同固相萃取小柱對(duì)不同酸度發(fā)酵液有機(jī)酸的高效液相色譜圖的影響,確定最佳的固相萃取小柱。

    1.3.3.2 不同流動(dòng)相的選擇

    選擇NaH2PO4、KH2PO4、H3PO43種緩沖液為流動(dòng)相,固定其濃度 0.02 mol/L、pH 2.7、流速0.6 mL/min、柱溫 37 ℃,分離7種有機(jī)酸混合標(biāo)準(zhǔn)樣品,得出最優(yōu)緩沖溶液后,再分別固定余下條件,選取0.01,0.02,0.03 mol/L 3種不同濃度的緩沖液,調(diào)節(jié) pH 至 2.3,2.5,2.7,2.9,3.1,研究不同緩沖溶液種類、濃度及pH對(duì)有機(jī)酸分離效果的影響。

    1.3.3.3 柱溫的選擇

    固定其他條件,改變色譜柱溫度為30,37,40 ℃,研究柱溫對(duì)有機(jī)酸分離效果的影響。

    1.3.3.4 流速的選擇

    固定其他條件,改變流動(dòng)相的流速為 0.425,0.6,0.7,0.8,0.9 mL/min 進(jìn)行實(shí)驗(yàn),研究不同流速對(duì)有機(jī)酸分離效果的影響。

    1.3.3.5 檢測(cè)波長(zhǎng)的選擇

    固定其他條件,在205,210,215 nm 波長(zhǎng)對(duì)7種有機(jī)酸的標(biāo)準(zhǔn)溶液分別進(jìn)行HPLC測(cè)定,研究其有機(jī)酸保留時(shí)間及分離效果。

    1.3.3.6 HPLC測(cè)定

    前處理后進(jìn)行測(cè)定,磷酸鹽緩沖溶液濃度為0.02 mol/L,pH為2.7,再經(jīng) 0.45 μm混纖-水系微孔濾膜抽真空過濾,超聲波脫氣后備用[19]。設(shè)定流速為0.6 mL/min,柱溫為37 ℃,進(jìn)樣體積為20 μL,檢測(cè)波長(zhǎng)為210 nm,測(cè)定時(shí)間為30 min進(jìn)行測(cè)定。

    1.3.3.7 有機(jī)酸分析的方法學(xué)評(píng)價(jià)

    a.線性關(guān)系考察

    以峰面積對(duì)濃度繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得線性范圍、回歸方程及相關(guān)系數(shù),同時(shí)以信噪比 S/N=3對(duì)應(yīng)的濃度確定各有機(jī)酸的檢出限。

    b.精密度試驗(yàn)

    為了確定分析方法的精密度,按選定的色譜條件,12 h內(nèi)連續(xù) 5 次對(duì)同一混合標(biāo)樣進(jìn)行 HPLC 分析,測(cè)定各有機(jī)酸的保留時(shí)間和峰面積,計(jì)算其精密度(以相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD 表示)。

    c.準(zhǔn)確度試驗(yàn)

    驗(yàn)證方法的準(zhǔn)確度,進(jìn)行回收率試驗(yàn)。對(duì)混合標(biāo)樣進(jìn)行 HPLC 分析,根據(jù)樣品的含量和測(cè)定值計(jì)算回收率。

    d.重復(fù)性試驗(yàn)

    取同一樣品 5 份(5 mL),分別按優(yōu)化的預(yù)處理方法處理樣品,在最佳色譜條件下測(cè)定各種有機(jī)酸,計(jì)算 RSD。

    e.穩(wěn)定性試驗(yàn)

    取 1 份樣品,分別在制樣后 0,4,8,12,24 h最佳色譜條件下進(jìn)樣分析,測(cè)定各有機(jī)酸的濃度,計(jì)算 RSD,考察樣品的穩(wěn)定性。

    2 分析與討論

    2.1 發(fā)酵液前處理的選擇

    2.1.1 蛋白沉淀劑的選擇

    不同蛋白沉淀劑前處理的發(fā)酵液樣品有機(jī)酸分離效果見圖1。

    圖1 不同蛋白沉淀劑前處理的發(fā)酵液樣品有機(jī)酸分離效果圖Fig.1 Separation effect diagrams of organic acids from fermentation broth samples pretreated with different protein precipitators

    由圖1可知,用無水乙醇沉淀蛋白時(shí),樣品的有機(jī)酸響應(yīng)值很低,可能醇沉的蛋白對(duì)有機(jī)酸有吸附作用,有機(jī)酸含量降低。亞鐵氰化鉀-乙酸鋅沉淀蛋白后測(cè)得的有機(jī)酸含量也偏低,亞鐵氰化鉀-硫酸鋅沉淀蛋白后測(cè)得的有機(jī)酸響應(yīng)值較高,推測(cè)由蛋白沉淀吸附的有機(jī)酸損失量較少,因此選用亞鐵氰化鉀-硫酸鋅作為沉淀發(fā)酵液的蛋白質(zhì)沉淀劑。

    2.1.2 固相萃取小柱的對(duì)比選擇

    在發(fā)酵液有機(jī)酸測(cè)定中,蛋白質(zhì)去除后,其糖類和色素會(huì)干擾測(cè)定和污染色譜柱。近年來固相萃取技術(shù)已較多地用于基體復(fù)雜的樣品,同時(shí)活性炭具有較強(qiáng)的吸附作用,也能夠吸附各種有機(jī)物和色素,本實(shí)驗(yàn)考察了固相萃取小柱和活性炭對(duì)發(fā)酵液預(yù)處理后的分離效果,見圖2。

    圖2 不同固相萃取小柱的有機(jī)酸發(fā)酵液樣品分離效果圖Fig.2 Separation effect diagrams of organic acids from fermentation broth samples by different solid-phase extraction columns

    由圖2可知,經(jīng)活性炭處理的樣品,有機(jī)酸消失,有些雜質(zhì)沒有去除形成了拖尾。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,C18固相萃取柱非常有效,處理后樣品無色透明,適用于液相色譜分析。為了降低成本,固相小柱經(jīng)洗脫后,與新柱相比有機(jī)酸含量有較大差別,不建議重新回收使用。因此選用C18固相萃取小柱作為蛋白質(zhì)沉淀劑后發(fā)酵液的前處理手段。

    2.2 流動(dòng)相種類的選擇

    鹽的種類不同導(dǎo)致流動(dòng)相的離子強(qiáng)度也不同,進(jìn)而對(duì)色譜峰的峰形有顯著影響[20]。 同時(shí),磷酸鹽緩沖溶液是最典型和最合適的洗脫液,在紫外區(qū)幾乎無吸收[21]。比較KH2PO4、NaH2PO4和H3PO4作為流動(dòng)相的分離效果,固定流動(dòng)相濃度為0.02 mol/L,流速為0.6 mL/min,柱溫為37 ℃,檢測(cè)波長(zhǎng)為210 nm,對(duì)有機(jī)酸混合標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行測(cè)定。

    圖3 不同流動(dòng)相的有機(jī)酸標(biāo)準(zhǔn)品分離效果圖Fig.3 Separation effect diagrams of organic acid standard samples with different mobile phases

    由圖3可知,以KH2PO4作流動(dòng)相,7種有機(jī)酸分離度較差,峰形重疊;以NaH2PO4為流動(dòng)相,有機(jī)酸的分離度不佳,且峰形有拖尾現(xiàn)象;以H3PO4作流動(dòng)相分析效果最好,各酸的分離度和峰形均滿足分離需求,7種有機(jī)酸在30 min內(nèi)出峰完畢,綜合考慮,選擇H3PO4為流動(dòng)相緩沖鹽。

    2.3 流動(dòng)相濃度的選擇

    流動(dòng)相濃度越高,待測(cè)有機(jī)酸的存在形式越穩(wěn)定,但濃度超過一定范圍時(shí),隨著離子強(qiáng)度增大,有機(jī)酸分離不良,影響泵和柱的壽命,增加流動(dòng)相的背景吸收,靈敏度下降[22]。本實(shí)驗(yàn)考察3種不同濃度(0.01,0.02,0.03 mol/L)H3PO4流動(dòng)相對(duì)各種有機(jī)酸保留時(shí)間及分離效果的影響。

    圖4 不同濃度流動(dòng)相的有機(jī)酸標(biāo)準(zhǔn)品分離效果圖Fig.4 Separation effect diagrams of organic acid standard samples with different concentration of mobile phases

    由圖4可知,H3PO4的濃度為0.01 mol/L 時(shí),有機(jī)酸的分離效果不好;H3PO4的濃度為0.02 mol/L時(shí),有機(jī)酸均能得到分離,且不影響分離效果。考慮到上述效果,本實(shí)驗(yàn)使用0.02 mol/L H3PO4溶液作為流動(dòng)相。

    2.4 流動(dòng)相pH的選擇

    有機(jī)酸均為弱酸,流動(dòng)相的pH 影響樣品的離子化狀態(tài),提高H+濃度,有機(jī)酸解離平衡則傾向于分子態(tài),可增加有機(jī)酸的保留時(shí)間,因此由于分配系數(shù)不同有機(jī)酸被分離。從色譜柱填料本身來看,在強(qiáng)酸和強(qiáng)堿條件下不穩(wěn)定,硅膠基體和鍵合相受到破壞,本色譜柱的pH為2.7左右,而pH>3 時(shí),分離效果不佳。以0.02 mol/L的H3PO4作為流動(dòng)相,用HCl調(diào)節(jié)流動(dòng)相pH值分別為2.4,2.7,3.0,分析pH對(duì)混合標(biāo)準(zhǔn)溶液中有機(jī)酸分離效果的影響。

    圖5 不同pH流動(dòng)相的有機(jī)酸標(biāo)準(zhǔn)品分離效果圖Fig.5 Separation effect diagrams of organic acid standard samples of mobile phases with different pH values

    由圖5可知,pH對(duì)分離效果有顯著影響,pH為3.0時(shí)有機(jī)酸分離不佳,pH為2.4時(shí)有機(jī)酸峰面積明顯小于其他兩組,只有當(dāng)pH為2.7時(shí)7種有機(jī)酸分離效果最佳,則選擇pH為2.7。

    2.5 檢測(cè)波長(zhǎng)的選擇

    圖6 不同檢測(cè)波長(zhǎng)的有機(jī)酸標(biāo)準(zhǔn)品分離效果圖Fig.6 Separation effect diagrams of organic acid standard samples at different detection wavelengths

    選用205,210,215 nm 3種波長(zhǎng)進(jìn)行了檢測(cè),分析混標(biāo)測(cè)定后的圖譜(見圖6):7種有機(jī)酸的吸收強(qiáng)度隨著波長(zhǎng)變大而呈下降趨勢(shì),波長(zhǎng)205 nm時(shí)各有機(jī)酸的吸收強(qiáng)度高,但是基線噪音大;波長(zhǎng)215 nm時(shí)有機(jī)酸的吸收強(qiáng)度弱;波長(zhǎng)210 nm時(shí)每種有機(jī)酸的吸收強(qiáng)度高,基線噪聲的影響小。Morales研究表明一元有機(jī)酸在 205~215 nm 處有吸收帶;二元酸及多元酸中吸收峰也在210 nm 附近。本實(shí)驗(yàn)與Morales的研究結(jié)果一致,故采用210 nm 波長(zhǎng)進(jìn)行有機(jī)酸的檢測(cè)。

    2.6 柱溫的選擇

    色譜理論認(rèn)為柱溫是影響柱效和分離度的主要因素[23],柱溫升高可使保留時(shí)間減小,但柱溫過高不利于有機(jī)酸的分離同時(shí)影響色譜柱的使用壽命。 固定其他條件,調(diào)整柱溫為31,34,37,40 ℃,以研究柱溫對(duì)有機(jī)酸分離的影響,見圖7。

    圖7 不同柱溫的有機(jī)酸標(biāo)準(zhǔn)品分離效果圖Fig.7 Separation effect diagrams of organic acid standard samples at different column temperatures

    由圖7可知,31 ℃時(shí)有機(jī)酸分離不佳,各有機(jī)酸的保留時(shí)間隨柱溫的升高而降低。柱溫為40 ℃時(shí),部分有機(jī)酸不能完全分離??紤]到有機(jī)酸的分離度,色譜柱溫度定為37 ℃。

    2.7 流速的選擇

    在色譜分離時(shí),流速太快,柱壓高,不利于色譜柱的保護(hù)和長(zhǎng)期使用;流速太慢,有機(jī)酸的保留時(shí)間延長(zhǎng),容易引起峰值變形和拖尾。合適的流速有利于有機(jī)酸的分離,本實(shí)驗(yàn)采用0.425,0.6,0.7,0.8,0.9 mL/min考察對(duì)有機(jī)酸分離的效果。

    由圖8可知,0.425 mL/min時(shí)色譜峰出現(xiàn)變形和拖尾現(xiàn)象,而0.9 mL/min時(shí)柱壓過大,綜合考慮,采用流速0.6 mL/min。

    圖8 不同流速的有機(jī)酸標(biāo)準(zhǔn)品分離效果圖Fig.8 Separation effect diagrams of organic acid standard samples at different flow rates

    2.8 有機(jī)酸 HPLC 分析方法的驗(yàn)證結(jié)果

    2.8.1 線性關(guān)系考察結(jié)果

    在最佳色譜條件下分析7種有機(jī)酸標(biāo)準(zhǔn)系列溶液,并使用峰面積-濃度曲線來量化每種有機(jī)酸的峰面積-濃度曲線。得到7 種有機(jī)酸的標(biāo)準(zhǔn)方程、相關(guān)系數(shù)及最低檢出限,結(jié)果見表2。

    表2 有機(jī)酸標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性參數(shù)Table 2 Linear parameters of organic acid standard curves

    由表2可知,有機(jī)酸的峰面積與濃度之間的線性關(guān)系良好,線性范圍寬,檢出限低,表明該方法的靈敏度較高。7種有機(jī)酸單標(biāo)出峰時(shí)間表見表3。

    表3 7種有機(jī)酸單標(biāo)出峰時(shí)間表Table 3 Single-labeled peak time schedule for seven organic acids

    2.8.2 精密度試驗(yàn)結(jié)果

    表4 有機(jī)酸分析方法的精密度(n=5)Table 4 Precision of analytical methods for organic acids(n=5)

    (b)峰面積(mAU)

    由表4可知,各有機(jī)酸保留時(shí)間的 RSD 為0.01%~0.04%,峰面積的RSD 為 0.00%~0.05%,表明該方法的精密度較好。

    2.8.3 準(zhǔn)確度試驗(yàn)結(jié)果

    根據(jù)表4中有機(jī)酸峰面積的平均值,通過表2中線性關(guān)系的回歸方程計(jì)算相應(yīng)的有機(jī)酸含量,再與標(biāo)準(zhǔn)樣品的原始濃度進(jìn)行對(duì)比,得出回收率為83%,見表5。

    表5 準(zhǔn)確度試驗(yàn)結(jié)果Table 5 Results of accuracy experiment

    由表5可知,本實(shí)驗(yàn)有機(jī)酸混標(biāo)回收率為83%,準(zhǔn)確度較高。

    2.8.4 重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果

    同一發(fā)酵液樣品在相同處理?xiàng)l件下分5次(時(shí)間間距不超過40 min)測(cè)定得出的結(jié)果見圖9。此實(shí)驗(yàn)結(jié)果有機(jī)酸峰面積及其對(duì)應(yīng)濃度數(shù)據(jù)分析見表6。

    圖9 重復(fù)性試驗(yàn)有機(jī)酸分離效果圖Fig.9 Separation effect diagrams of organic acids in repetitive experiment

    測(cè)定次數(shù)蘋果酸草酸琥珀酸酒石酸檸檬酸乳酸冰醋酸1204.45166.65174.5093.8343.27189.81141.582200.95155.68183.9394.0140.02194.81148.243170.41126.53171.0293.5652.98174.01150.974189.99127.15184.78106.0254.04192.00161.545204.55186.97169.0195.9843.57178.97145.89均值194.07152.60176.6596.6846.78185.92149.64標(biāo)準(zhǔn)差14.5026.067.315.316.318.967.45RSD(%)0.070.170.040.050.130.050.05

    (b)有機(jī)酸含量(mg/mL)

    由表6可知,各有機(jī)酸峰面積的RSD為0.04%~0.17%,有機(jī)酸含量的RSD 為 0.01%~0.37%。表明該方法的重復(fù)性較好。

    2.8.5 穩(wěn)定性試驗(yàn)結(jié)果

    同一發(fā)酵液樣品在相同處理?xiàng)l件下分5次,測(cè)定時(shí)間分別為0,4,8,12,24 h測(cè)定得出的結(jié)果見圖10。此實(shí)驗(yàn)結(jié)果有機(jī)酸峰面積及其通過標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算得到的對(duì)應(yīng)濃度數(shù)據(jù)分析見表7。

    圖10 穩(wěn)定性試驗(yàn)有機(jī)酸分離效果圖Fig.10 Separation effect diagrams of organic acids in stability experiment

    測(cè)定次數(shù)蘋果酸草酸琥珀酸酒石酸檸檬酸乳酸冰醋酸1194.05156.25169.5489.8543.49176.31151.662195.15155.64173.9384.2140.58184.43139.283174.41146.53161.5293.5438.95174.33148.794189.89157.35144.7996.1944.04152.46158.995184.95176.97175.2185.3853.67182.35155.48均值187.69158.55165.0089.8344.15173.98150.84標(biāo)準(zhǔn)差8.4411.1712.505.145.7212.737.52RSD(%)0.040.070.070.050.130.070.05

    (b)有機(jī)酸含量(mg/mL)

    由表7可知,各有機(jī)酸峰面積的RSD為0.04%~0.13%,有機(jī)酸含量的RSD 為0.01%~0.35%,表明該方法的穩(wěn)定性較好。

    3 結(jié)語

    本研究對(duì)反相C18色譜柱的色譜條件和預(yù)處理?xiàng)l件進(jìn)行了優(yōu)化,并采用高效液相色譜法同時(shí)測(cè)定了7種有機(jī)酸。樣品經(jīng) SPE固相萃取柱純化后,采用 C18色譜柱進(jìn)行分離,流動(dòng)相為0.02 mol/L H3PO4(pH 2.7),流速為0.6 mL/min,在紫外檢測(cè)波長(zhǎng)為210 nm時(shí),可實(shí)現(xiàn)7種有機(jī)酸的分離和精確定量。該方法的回收率為83%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)<0.04%,各有機(jī)酸的線性相關(guān)系數(shù)R2>0.994,該檢測(cè)方法操作簡(jiǎn)便、靈敏、準(zhǔn)確、穩(wěn)定,可用于發(fā)酵液中有機(jī)酸的定量分析。與董霞[24]測(cè)定了6種有機(jī)酸的研究結(jié)果對(duì)比,該方法能較好地證明其研究結(jié)果,發(fā)酵液中的主要有機(jī)酸的種類在此實(shí)驗(yàn)中得到了驗(yàn)證,且初步得出該發(fā)酵液中琥珀酸含量略高于其他有機(jī)酸,其可能是影響發(fā)酵液酸感的重要有機(jī)酸。但這只是研究發(fā)酵液有機(jī)酸的一個(gè)開端,發(fā)酵液中的有機(jī)酸種類遠(yuǎn)遠(yuǎn)不止已檢測(cè)的7種,影響其產(chǎn)酸的因素眾多,其有機(jī)酸含量和酸感的關(guān)系均需要我們后續(xù)跟進(jìn)研究。

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