黃蓉,周子文,莫喬雅,董明盛,芮昕,張秋勤,陳曉紅,李偉
(南京農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品科技學(xué)院,江蘇 南京,210095)
乳品發(fā)酵劑(culture starter)是一種能夠促進(jìn)乳的酸化過程,含有高濃度乳酸菌的特定微生物培養(yǎng)物。它是用于制造干酪、奶油及發(fā)酵乳制品所用的特定微生物培養(yǎng)材料[1-3]。乳酸菌菌體細(xì)胞和培養(yǎng)基分離是乳產(chǎn)品發(fā)酵劑生產(chǎn)過程中的一個(gè)重要環(huán)節(jié),常用的方法有離心分離和超濾分離。離心分離具有方法簡單、處理量大、容易操作等優(yōu)點(diǎn),是目前工業(yè)上菌體濃縮分離的首選方法。但在離心過程中,菌體不僅受到間隙操作中的氧損傷,還受到剪切力的作用而被拉長,從而導(dǎo)致細(xì)胞膜的滲透性和抗凍能力下降,因此在實(shí)際操作中常通過添加一定量的離心保護(hù)劑對(duì)乳酸菌菌體進(jìn)行保護(hù)[4-6]。
冷凍干燥(即凍干)是在真空條件下進(jìn)行的使凍結(jié)物料中的固態(tài)水升華從而被除去的一種高效干燥方法,乳酸菌菌體細(xì)胞經(jīng)離心分離后,與凍干保護(hù)介質(zhì)混合,經(jīng)冷凍干燥后可獲得凍干發(fā)酵劑,因此其常用于乳品發(fā)酵劑的工業(yè)化制備。冷凍干燥可以減少菌體細(xì)胞在干燥過程中蛋白質(zhì)失活的可能性,能夠較好保持細(xì)胞原有的構(gòu)架。干燥后發(fā)酵劑呈疏松多孔狀,與水接觸后能夠快速溶解恢復(fù)原來的性狀[7-11]。影響凍干過程中發(fā)酵劑存活率的主要因素有凍干保護(hù)介質(zhì)、凍結(jié)速度和凍結(jié)溫度等。選用合理的保護(hù)措施可以有效地減少菌體在冷凍干燥過程中的損傷和失活,影響乳酸菌凍干效果最突出的就是凍干保護(hù)劑。其不僅有利于提高菌體在冷凍干燥過程中存活率,還會(huì)影響保藏期間發(fā)酵劑的穩(wěn)定性[12-14]。
按分子大小,離心和凍干保護(hù)劑可分為小分子化合物(如低聚糖、醇、緩沖鹽、氨基酸、維生素)和大分子化合物(如蛋白質(zhì)、多肽、多糖)[15-16]。小分子保護(hù)劑(主要是糖類)由于氫鍵的作用具有很強(qiáng)的親水性,可以與菌體細(xì)胞膜磷脂中的磷酸基團(tuán)或菌體蛋白質(zhì)極性基團(tuán)形成氫鍵,既能降低磷脂的轉(zhuǎn)變溫度,也可使磷脂膜之間不致于產(chǎn)生折疊黏連,從而保護(hù)菌體細(xì)胞膜和蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)和功能的完整性[17-18]。低聚半乳糖和低聚果糖同屬于功能性低聚糖,功能性低聚糖作為被廣泛認(rèn)可的益菌因子在真空冷凍干燥中發(fā)揮著雙重作用,既能使得益生菌維持較高的成活率,也能發(fā)揮促進(jìn)益生菌生長的作用[19]。由于不同的乳酸菌所適用的保護(hù)劑不盡相同,因此需要根據(jù)菌體的自身特點(diǎn)篩選出適合的保護(hù)劑系統(tǒng)。本文在對(duì)分離自新疆傳統(tǒng)食品賽里木酸奶中高產(chǎn)黏瑞士乳桿菌MB2-1(LactobacillushelveticusMB2-1)和嗜熱鏈球菌MB5-1(StreptococcusthermophilusMB5-1)發(fā)酵特性分析的基礎(chǔ)上,通過測定離心和冷凍干燥后菌體的存活率,考察了低聚果糖(fructooligosaccharides,FOS)和低聚半乳糖(galactooligosaccharides,GOS)在菌體冷凍干燥過程中的保護(hù)作用,這對(duì)乳品發(fā)酵劑的生產(chǎn)及菌種的離心分離和凍干保存均具有一定的理論與實(shí)踐意義。
1.1.1 菌種
LactobacillushelveticusMB2-1、StreptococcusthermophilusMB5-1為本實(shí)驗(yàn)室從新疆拜城縣傳統(tǒng)賽里木酸奶分離和保存,經(jīng)多次傳代遺傳性狀穩(wěn)定[20-21]。
1.1.2 試劑與培養(yǎng)基
QHT-90 FOS(純度≥90%)、QHT-600 GOS(純度≥60%),廣東江門量子高科生物股份有限公司;低蛋白乳清粉,法國LACTALIS公司;其他,國產(chǎn)分析純。
80和120 g/L的低蛋白乳清培養(yǎng)基,108 ℃滅菌15 min。
MRS固體培養(yǎng)基[22](g/L):蛋白胨 10.0,牛肉膏 10.0,酵母膏 5.0,葡萄糖 20.0,吐溫80 1.0 mL,無水乙酸鈉 5.0,檸檬酸三銨 2.0,K2HPO42.0,MgSO4·7H2O 0.58,MnSO4·4H2O 0.25,蒸餾水 1 L,瓊脂1.5%~2%,pH 6.2~6.6,121 ℃滅菌20 min。
1.1.3 儀器與設(shè)備
LRH系列生化培養(yǎng)箱,上海一恒科技有限公司;Avanti J-E冷凍離心機(jī),美國Beckman Coulter公司;AIPHAPPHOT-2 YS2光學(xué)顯微鏡,日本Nikon公司;722可見分光光度計(jì),上海精密科學(xué)儀器有限公司;Heto PowerDry LL3000冷凍干燥機(jī),美國Thermo公司;pH計(jì),德國Sartorius公司。
1.2.1 菌種活化及發(fā)酵液制備
分別將L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1從甘油管中按4%(體積分?jǐn)?shù))進(jìn)行接種,在37 ℃條件下活化培養(yǎng)12 h,活化2次,培養(yǎng)基使用120 g/L的低蛋白乳清培養(yǎng)基;之后按3%(體積分?jǐn)?shù))的接種量接種到80 g/L低蛋白乳清培養(yǎng)基中發(fā)酵培養(yǎng),分別于0、4、8、12、24、48 h取樣測定活菌數(shù)、pH值、滴定酸度、殘?zhí)橇亢途w密度(OD600)數(shù)值。
1.2.2 菌落平板計(jì)數(shù)
用滅菌后的生理鹽水將菌液逐級(jí)稀釋,對(duì)最后3個(gè)稀釋度進(jìn)行平板計(jì)數(shù),每個(gè)稀釋度計(jì)數(shù)2次。吸取1 mL菌液于滅菌平板中,再傾注冷卻至45~50 ℃的MRS固體培養(yǎng)基。最后將平板置于37 ℃培養(yǎng)48 h,進(jìn)行菌落計(jì)數(shù)。
1.2.3 細(xì)胞數(shù)量測定
在波長為600 nm條件下,用質(zhì)量濃度80 g/L低蛋白乳清培養(yǎng)基調(diào)零,測量樣液的吸光度。
1.2.4 pH值測定
將pH計(jì)的電極球泡完全浸入樣液,讀取示數(shù)。
1.2.5 滴定酸度測量
將樣液稀釋50倍,加入3~4滴酚酞,用0.05 mol/L的NaOH標(biāo)準(zhǔn)溶液標(biāo)定至微紅色,并在30 s內(nèi)不褪色,記錄消耗的NaOH標(biāo)準(zhǔn)滴定溶液毫升數(shù)。
1.2.6 殘?zhí)橇繙y量
調(diào)節(jié)分光光度計(jì)波長至490 nm,預(yù)熱30 min。將樣液稀釋100倍,在試管中按次序加入0.5 mL水、0.5 mL稀釋樣液、0.5 mL 6%苯酚、2.5 mL濃硫酸,另取1只試管做空白對(duì)照。
1.2.7 測定離心條件下低聚糖對(duì)菌體的保護(hù)作用
1.2.7.1 離心保護(hù)劑溶液的配制
分別將10、20、30 g的QHT-90 FOS、QHT-600 GOS和葡萄糖溶于100 mL的蒸餾水中,制成質(zhì)量濃度分別為100、200、300 g/L的FOS、GOS和葡萄糖溶液,均在 115 ℃下滅菌15 min待用。
1.2.7.2 離心存活率的測定[15]
將L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1在80 g/L的低蛋白乳清培養(yǎng)基中發(fā)酵12 h后,取10 mL于50 mL離心管中,分別加入40 mL 100、200和300 g/L的FOS和GOS溶液,對(duì)照組加入40 mL的生理鹽水,混合均勻,以4 000×g離心10 min后棄去上清液,各洗滌3次,用生理鹽水復(fù)溶至10 mL,進(jìn)行菌落計(jì)數(shù)。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
離心存活率的測定如公式(1)所示:
(1)
1.2.8 測定凍干條件下低聚糖對(duì)菌體的保護(hù)作用
1.2.8.1 凍干保護(hù)劑溶液的配制
配制方法同1.2.7.1。
1.2.8.2 凍干存活率測定[15]
將L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1在8%的低蛋白乳清培養(yǎng)基中發(fā)酵12 h后,取10 mL于50 mL的離心管中,分別加入40 mL 100、200和300 g/L的FOS和GOS溶液,對(duì)照組加入40 mL的生理鹽水,混合均勻,以4 000×g離心10 min后棄去上清液,再分別加入40 mL相同溶液進(jìn)行復(fù)溶,放入冰柜中預(yù)凍8 h,置于凍干機(jī)內(nèi)凍干48 h,再將其復(fù)溶至10 mL,進(jìn)行菌落計(jì)數(shù)。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
凍干存活率的測定如公式(2)所示:
(2)
1.2.9 數(shù)據(jù)分析
采用Excel軟件作圖,SPSS軟件進(jìn)行差異顯著性分析。
由圖1可知,在8 h時(shí)L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1生長緩慢,活菌數(shù)只有0.14×108CFU/mL和0.21×108CFU/mL,在12 h時(shí)活菌數(shù)同時(shí)達(dá)到最大值,分別為8.01×108CFU/mL和7.10×108CFU/mL,24 h后進(jìn)入衰亡期,在48 h時(shí)2種菌的活菌數(shù)分別為1.61×108CFU/mL和2.30×108CFU/mL;OD600值在12 h前增長較快,L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1的OD600值分別從初始時(shí)的0.03和0.04增加至12 h時(shí)的1.89和1.03,之后緩慢增加,在發(fā)酵結(jié)束時(shí)分別為2.08和1.23;發(fā)酵液的pH值和滴定酸度呈現(xiàn)相反的變化趨勢,在8 h前接種L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1的發(fā)酵液pH值分別從初始時(shí)的6.02和6.00急速下降到4.57和4.62,8 h后pH的變化趨勢逐漸趨于平緩。而接種L.helveticusMB2-1的發(fā)酵液的滴定酸度從0 h的22.50 °T迅速增加到了8 h的最大值,為122.30 °T,接種S.thermophilusMB5-1的發(fā)酵液的滴定酸度則從0 h的20.80 °T迅速增加到了24 h的最大值,為98.20 °T。和LI等[21]使用巴氏滅菌鮮奶培養(yǎng)基相比,發(fā)酵過程中pH值和滴定酸度的變化趨勢相似,但在鮮奶培養(yǎng)基中,pH值于12 h后才逐漸趨于平緩,最低pH值均比低蛋白乳清培養(yǎng)基中低(pH<4)。對(duì)于2種乳酸菌,在整個(gè)發(fā)酵時(shí)間內(nèi)殘?zhí)橇慷汲尸F(xiàn)下降趨勢,在24 h前,殘?zhí)橇繙p少速度較快,24 h以后變化趨勢逐漸趨于平緩,最終在48 h時(shí)L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1的殘?zhí)橇恐挥?.60 g/L和5.30 g/L,說明在整個(gè)發(fā)酵過程中有80%的碳源被充分利用。以上結(jié)果表明L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1兩種乳酸菌均具有較好的底物利用能力和生長情況,可以進(jìn)一步作為乳品等產(chǎn)品的菌種發(fā)酵劑來源。
將發(fā)酵12 h的L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1于4 000×g的轉(zhuǎn)速下離心,用不同濃度的GOS、FOS和葡萄糖溶液洗滌3次,空白對(duì)照組用生理鹽水進(jìn)行洗滌,利用平板計(jì)數(shù)法測定菌落數(shù),結(jié)果如圖2所示。在加入低聚糖保護(hù)劑之后,L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1的活菌數(shù)均與空白樣(生理鹽水清洗)有顯著性差異(P<0.05),即所選低聚糖保護(hù)劑對(duì)2種乳酸菌均有一定的保護(hù)作用,而葡萄糖組對(duì)菌體的保護(hù)作用不顯著。在同樣濃度條件下,F(xiàn)OS對(duì)乳酸菌的保護(hù)作用要優(yōu)于GOS,且FOS的濃度越高,保護(hù)作用越強(qiáng)。在FOS質(zhì)量濃度分別為200、300 g/L時(shí),L.helveticusMB2-1的活菌數(shù)分別為5.67×108CFU/mL和5.88×108CFU/mL。因此,選用GOS和FOS作為L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1的離心保護(hù)劑較葡萄糖具有顯著優(yōu)勢,在同濃度下可優(yōu)先選擇FOS作為L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1的離心保護(hù)劑。
圖2 不同濃度的GOS和FOS對(duì)菌體離心后活菌數(shù)的影響Fig.2 Effect of different concentrations of GOS and FOS on the viable cell counts after centrifugation注:小寫字母表示S.thermophilus MB5-1顯著性差異(P<0.05);大寫字母表示L.helveticus MB2-1的顯著性差異(P<0.05)。下同。
L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1的菌體存活率見圖3。
圖3 不同濃度的GOS和FOS對(duì)菌體離心后存活率的影響Fig.3 Effect of different concentrations of GOS and FOS on survival rate after centrifugation
結(jié)果表明,不同濃度葡萄糖作為保護(hù)劑時(shí),對(duì)L.helveticusMB2-1離心保護(hù)作用差異不顯著,菌體的存活率最高為18.73%,以低濃度(100 g/L)GOS和FOS作為保護(hù)劑,對(duì)菌體的保護(hù)作用較低,GOS作用下2株菌存活率分別為38.59%和14.38%,F(xiàn)OS作用下分別為26.62%和14.25%,而提高GOS和FOS濃度,對(duì)菌體的保護(hù)率也相應(yīng)提高,GOS和FOS質(zhì)量濃度300 g/L時(shí),L.helveticusMB2-1存活率分別達(dá)到68.03%和82.82%;GOS和FOS在相同濃度條件下對(duì)S.thermophilusMB5-1的保護(hù)作用要低于L.helveticusMB2-1,在質(zhì)量濃度300 g/L時(shí),菌體存活率分別為34.25%和46.00%,對(duì)于2種乳酸菌,相同高濃度(200和300 g/L)條件下,F(xiàn)OS的保護(hù)效果均優(yōu)于GOS。這說明對(duì)于不同類型的乳酸菌,低聚糖的保護(hù)作用具有較大差異,在實(shí)際生產(chǎn)應(yīng)用中應(yīng)根據(jù)不同菌種的特性選擇最優(yōu)的凍干保護(hù)劑以達(dá)到最理想效果。
如圖4所示,與對(duì)離心作用的保護(hù)作用相似,在加入低聚糖凍干后,L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1的活菌數(shù)均與空白樣有顯著性差異(P<0.05),表明2種低聚糖對(duì)2種乳酸菌均有一定的保護(hù)作用,而葡萄糖組對(duì)菌體的保護(hù)作用較差,在同樣濃度條件下,GOS對(duì)2種乳酸菌的保護(hù)作用要優(yōu)于FOS,且隨著GOS濃度的增加,對(duì)乳酸菌的保護(hù)作用逐漸增強(qiáng)。從圖4中可知,在GOS質(zhì)量濃度分別為200和300 g/L時(shí),L.helveticusMB2-1的活菌數(shù)分別為4.29×108和5.53×108CFU/mL,而在此濃度下,S.thermophilusMB5-1的活菌數(shù)分別為2.56×108和2.90×108CFU/mL。
圖4 不同濃度的GOS和FOS對(duì)菌體凍干后活菌數(shù)的影響Fig.4 Effect of different concentrations of GOS and FOS on the viable cell counts after freeze drying
GOS和FOS作為凍干保護(hù)劑,L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1的菌體存活率如圖5所示。高濃度的低聚糖保護(hù)作用總體優(yōu)于低濃度低聚糖;凍干條件下,GOS作為保護(hù)劑,菌體存活率要明顯高于同濃度的FOS,對(duì)于L.helveticusMB2-1的保護(hù)作用也要優(yōu)于S.thermophilusMB5-1,在質(zhì)量濃度100 g/L GOS存在的條件下,L.helveticusMB2-1的菌體存活率為46.48%,而在質(zhì)量濃度300 g/L GOS條件下,L.helveticusMB2-1的菌體存活率可達(dá)到77.89%。因此在實(shí)際應(yīng)用時(shí),需根據(jù)不同處理步驟、菌種以及生產(chǎn)需要來確定保護(hù)劑的選擇??紤]到實(shí)際生產(chǎn)的復(fù)雜性,可以開發(fā)高效復(fù)合保護(hù)劑[23],以提高應(yīng)用的便利性。關(guān)于低聚糖對(duì)生物分子的保護(hù)作用,目前主要有2種假說解釋低聚糖對(duì)生物分子的穩(wěn)定機(jī)制:第1種為“水替代”假說,該假說認(rèn)為在生物體大分子物質(zhì)的周圍有一層水化層,該水化層是維持生物大分子結(jié)構(gòu)和功能的必要條件,當(dāng)生物大分子失去這種功能性的水膜時(shí),低聚糖能在生物大分子的失水部位以氫鍵形式相連接,形成一層類似于水化層的保護(hù)膜以代替失去的水化層;而另一種稱為“玻璃態(tài)”假說,該理論認(rèn)為通過低聚糖玻璃化轉(zhuǎn)變的趨勢,導(dǎo)致了無定形連續(xù)相的形成,在這種結(jié)構(gòu)中分子運(yùn)動(dòng)和分子變性反應(yīng)非常微弱[24-26]。低聚糖在菌體凍干時(shí)的這種保護(hù)作用,為提高工業(yè)化制備發(fā)酵劑的存活率[27-28]提供了一種思路。
圖5 不同濃度的GOS和FOS對(duì)菌體凍干后存活率的影響Fig.5 Effect of different concentrations of GOS and FOS on the survival rate after freeze drying
本研究對(duì)L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1的發(fā)酵特性進(jìn)行了分析,同時(shí)考察了不同濃度的低聚糖對(duì)2種乳酸菌在離心和凍干條件下活菌數(shù)和存活率的影響,結(jié)果表明,L.helveticusMB2-1和S.thermophilusMB5-1兩種乳酸菌均具有較好的底物利用能力和生長情況,可以進(jìn)一步作為乳品等產(chǎn)品的菌種發(fā)酵劑來源;對(duì)于2種乳酸菌,在對(duì)菌體離心的保護(hù)作用中,除100 g/L的低濃度之外,其余濃度下FOS的保護(hù)作用均優(yōu)于GOS,而對(duì)菌體凍干的保護(hù)作用中,GOS的保護(hù)作用均優(yōu)于FOS,這說明不同種類低聚糖發(fā)揮最優(yōu)保護(hù)作用的操作步驟有所不同。2種低聚糖對(duì)L.helveticusMB2-1的保護(hù)作用均優(yōu)于S.thermophilusMB5-1,說明對(duì)于不同類型的乳酸菌,低聚糖的保護(hù)作用具有較大的差異。本實(shí)驗(yàn)為今后更深入地研究低聚糖結(jié)構(gòu)與乳酸菌抗逆境的關(guān)系提供了參考,同時(shí)也為低聚糖作為保護(hù)劑在乳酸菌發(fā)酵劑的應(yīng)用奠定了良好的基礎(chǔ)。