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    豬非典型性瘟病毒RT-PCR檢測方法的建立及初步應用

    2019-09-10 07:22:44郭佳琪楊曉宇馮宇楊釩徐志文朱玲
    江蘇農(nóng)業(yè)學報 2019年2期
    關(guān)鍵詞:檢測

    郭佳琪 楊曉宇 馮宇 楊釩 徐志文 朱玲

    摘要:為建立一種快速、準確檢測豬非典型性瘟病毒(APV)的方法,根據(jù)Genbank發(fā)布的APPVNS2基因序列,設計合成1對擴增后目的基因片段大小為500bp的特異性引物。建立的R’T-PCR方法對豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)、偽狂犬病毒(PRV)和豬瘟病毒(CSFV)的檢測結(jié)果均為陰性,該方法對APPV的最低檢岀量為1μl4.95×10拷貝,重復性試驗中組間、組內(nèi)試驗結(jié)果均與預期相符。應用該方法對68份疑似患病的仔豬樣品進行檢測,陽性病料檢出率為7.35%。利用Mega7.0繪制APⅤ系統(tǒng)進化樹,對APPⅤ進行遺傳進化分析,結(jié)果顯示本試驗檢出的APPⅤ(SC株)與中國報道的APPV的親緣關(guān)系較近。建立的APPV RT-PCR檢測方法可用于APPV的臨床診斷及流行病學檢測。

    關(guān)鍵詞:豬非典型性瘟病毒;RT-PCR;檢測

    中圖分類號:S858281.34+7

    文獻標識碼:A

    文章編號:1000-4440(2019)02-0357-06

    仔豬先天性震顫(Congenital tremors,CT)會導致仔豬出生后數(shù)小時內(nèi)出現(xiàn)骨骼肌雙側(cè)痙攣性收縮,妨礙仔豬站立、步行和尋找乳頭3,致使仔豬饑餓和初乳攝入不足,嚴重的可導致仔豬死亡。一般根據(jù)神經(jīng)系統(tǒng)是否發(fā)生病變,將CT分為A型和B型,A型有明顯的大腦和脊柱的組織學損傷,B型無損傷45。A型又可分為A~A-V5種亞型,其中只有A-I型與AⅡ型具有傳染性。A-型一般認為是由豬瘟病毒(Classical swine fever virus,CSFV)引起,以小腦發(fā)育不全為特征67。AⅡ型的病因存在一定爭議,直到2015年,Hause等通過宏基因組測序發(fā)現(xiàn)了豬非典型性瘟病毒(Atypical porcine pestivirus virus,APPV)2016年,Arruda9確定APPV是A的病因。隨后,德國、荷蘭、奧地利等多個國家先后發(fā)現(xiàn)豬群存在APPV流行0。2017年,華南農(nóng)業(yè)大學許古明等1首次發(fā)現(xiàn)中國豬群APPV的發(fā)生,這使中國獸醫(yī)學界展開了對APPV的研究。

    APPⅤ屬于黃病毒科瘟病毒屬,該病毒屬還包括牛病毒性腹瀉病毒1型(Bovine viral diarrhea virus1,BVDV-1)和2型(Bovine viral diarrhea virus-2BVDV-2)、豬瘟病毒(CSFV)和邊界病病毒(Borderdisease virus,BDV)及之后發(fā)現(xiàn)的其他瘟病毒(Ho[12]1-llke pestivirus APPV是基因組長約11kb的RNA病毒,包含上游5UTR、ORF和下游3UTR,ORF區(qū)編碼的蛋白質(zhì)可分為4種結(jié)構(gòu)蛋白(C、Ems、E1、E2)和8種非結(jié)構(gòu)蛋白(Npro、P7、NS2、NS3、NS4A、NS4B、NS5A、NS5B)[14]。

    RT-PCR檢測方法對樣品純度要求低,不用分離病毒及培養(yǎng)細胞,具有操作簡單快速、成本低、敏感性高等特點5,建立APPV的RT-PCR檢測方法對于國內(nèi)豬非典型性瘟病毒的檢測研究具有重要意義。我們根據(jù)Gen bank發(fā)表的APPⅤ基因組序列,選擇APPV MS2基因,建立RT-PCR快速檢測方法,通過該方法對采自規(guī)模化豬場的疑似患病樣品進行檢測,并對其陽性樣品PCR產(chǎn)物進行基因測序和遺傳進化分析,為獸醫(yī)臨床診斷提供一種可靠的檢測方法。

    1材料與方法

    1.1 病毒和病料

    豬繁殖與呼吸綜合征病毒(Porcinereproductiveandrespiratorysyndromevirus,PRRSV)、偽狂犬病毒(Pseudorabiesvirus,PRV)和豬瘟病毒(CSFV)均由四川農(nóng)業(yè)大學動物生物技術(shù)中心保存。病料(頜下淋巴結(jié)、小腦、腹股溝淋巴結(jié)等)采自四川省遂寧、邛崍、大邑、崇州、宜賓等地區(qū)的規(guī)?;B(yǎng)豬場。

    1.2 主要試劑

    5×Prime script buffer、Prime Script rt enzyme MixI、Oligo dT primer、Random 6 mers,RNase free dH2O、DL2000 DNA marker、Trizol、Taq Hs、10×Reaction buffer(Mg2+free)均購自寶生物工程(大連)有限公司。質(zhì)粒提取試劑盒(Plasmid Kit I)購自Omega公司。

    1.3 APPV引物設計與合成

    根據(jù)Genbank發(fā)表的APⅤ基因組序列,選擇APPVNS2基因,應用NCB設計引物,由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。上游引物序列為5′GAACTAAGACCAACACGGAT-3′,下游引物序列為5′-GAGGGTAGGAAGGGAAAG-3′,其預期擴增片段大小為500bp,稀釋為20μmo/L備用。

    1.4 病毒RNA的提取及反轉(zhuǎn)錄

    將疑似患非典型性豬瘟的樣品充分剪碎,加入液氮研磨成粉末,再加入適量生理鹽水保存于EP管中備用。采用Til法提取病料RNA,隨后用反轉(zhuǎn)錄試劑盒將提取的RNA反轉(zhuǎn)錄成CDNA。反轉(zhuǎn)錄體系(10.0):RNase free dH2O 3.51,5×Prime script buffer 2.0ul,Random 6 mers 0.5 ul,Oligo dT primer0.5 ul,Primer Script RT enzyme Mix 10.5 ulRNA模板3.0μ。產(chǎn)物于-20℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.5 APPV的RT-PCR方法建立

    PCR反應體系(25.0μl)為:eDNA2.0μl,10xReactionbuffer2.5μl,dNTPMix1.0μl,TaqHs0.5μl,上、下游引物各0.5μl,加ddH20至25.0μl。反應條件為:95.0C4min;95.0C30s,58.4C30s,72.0C30s,30個循環(huán);72.0C7min。

    1.5.1 Mg2+、TaqHs、dNTPMix用量的優(yōu)化PCR反應體系總體積25.0μl保持不變,分別調(diào)整Mg2*、TaqHs、dNTPMix的用量,對反應體系進行優(yōu)化。Mg2+用量依次為0.5μl、1.0μl、1.5μl、2.0μl、2.5μl和3.0μl,TaqHs用量依次為0.1μl、0.2μl0.3μl、0.4μl、0.5μl和0.6μl,dNTPMix用量依次為1.0μl、1.5μl、2.0μl、2.5μl、3.0μl和3.5μl。在單一變量的情況下,選取目的條帶擴增效果最好的試劑用量。

    1.5.2 引物用量及退火溫度優(yōu)化在Mg2*、TaqHs、dNTPMix用量優(yōu)化的基礎上,分別改變引物用量(1.0 μl、1.5 μl、2.0 μl和2.5 μl)和退火溫度(52.0℃、52.7℃、54.0℃、55.9℃、58.4℃、60.3℃、61.4℃、和62.0℃、),進行PCR擴增,篩選最適引物用量和退火溫度。

    1.5.3 RT-PCR的特異性試驗在上述優(yōu)化條件下,應用建立的RT-PCR方法對APPV、PRRSV、PRV、CSFV進行特異性檢測,設陰性對照組,驗證該方法的特異性。

    1.5.4 RT-PCR的敏感性試驗用質(zhì)粒提取試劑盒提取APPV質(zhì)粒,用核酸蛋白質(zhì)儀測定所構(gòu)建的陽性質(zhì)粒濃度,計算出模板的拷貝數(shù)。在上述優(yōu)化條件下,將模板進行倍比稀釋進行RT-PCR,以驗證本方法的敏感性。

    1.5.5 RT-PCR的重復性試驗提取APPV陽性病料RNA,以反轉(zhuǎn)錄的產(chǎn)物為模板,應用建立的RT-PCR方法分別進行組間、組內(nèi)重復性試驗,以驗證本方法的穩(wěn)定性。

    1.6 臨床樣品檢測及陽性樣品鑒定

    將68份樣品病料充分剪碎,加入液氮研磨成粉末,再加入適量生理鹽水制得研磨液,-20℃、保存?zhèn)溆?。Trizol法提取病料的RNA,隨后用反轉(zhuǎn)錄試劑盒將提取的RNA反轉(zhuǎn)錄成eDNA,然后用建立的RT-PCR方法進行APPV檢測,對檢測數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析。

    1.7 遺傳進化分析

    應用Mega7.0軟件對獲得的陽性序列、GenBank公布的APPV基因序列和同是黃病毒科瘟病毒屬的BVDV-1、BVDV-2、BDV、CSFV等毒株基因序列共同繪制系統(tǒng)進化樹,分析APPV的遺傳與進化規(guī)律,豐富完善APPV流行病學資料。

    2 結(jié)果

    2.1 豬非典型性瘟病毒NS2基因的RT-PCR擴增

    將疑似患病樣品處理后提取其RNA,用設計的引物進行RT-PCR反應。電泳結(jié)果顯示,本研究設計的引物擴增出1條約500 bp的條帶(圖1),與預期結(jié)果一致。

    2.2 豬非典型性瘟病毒(APPV)RT-PCR檢測的優(yōu)化反應條件

    在其他條件不變的情況下對Mg2+、Taq Hs、dNTP Mix用量單一變量進行優(yōu)化。結(jié)果顯示,當Mg*+、Taq Hs、dNTP Mix用量分別為2.5 μl、0.6 μl、1.0 μl時,擴增的條帶最為清晰(圖2、圖3、圖4)。

    固定25μlPCR反應體系的其他條件不變,對引物用量和引物退火溫度進行優(yōu)化。結(jié)果表明最佳引物用量為2.5 μl(圖5),最佳退火溫度為58.4℃(圖6)。

    2.3 豬非典型性瘟病毒(APPV)RT-PCR檢測的特異性

    對建立的APPVRT-PCR檢測方法的特異性進行試驗,結(jié)果表明建立的APPV RT-PCR檢測方法對豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)、偽狂犬病毒(PRV)和豬瘟病毒(CSFV)的檢測結(jié)果均為陰性(圖7)。說明本研究建立的方法特異性強,與其他病原無交叉反應。

    2.4 豬非典型性瘟病毒(APPV)RT-PCR檢測的敏感性

    采用建立的RT-PCR檢測方法對倍比稀釋后的APPV陽性質(zhì)粒進行擴增,1%瓊脂糖電泳觀察。用NanoDrop測定6號APPV樣品檢出量為1 μl4.95x10*拷貝(圖8),表明該方法敏感性較強。

    2.5 豬非典型性瘟病毒(APPV)RT-PCR檢測的重復性

    對樣品中豬非典型性瘟病毒核酸分別進行組間、組內(nèi)重復性試驗,結(jié)果均一致(圖9),表明本試驗方法的重復性較好。

    2.6 建立的APPVRT-PCR檢測方法對臨床樣品的檢測應用

    利用本試驗建立的RT-PCR檢測方法對68份疑似患病樣品進行檢測,共檢出陽性樣品5份,陽性檢出率為7.35%。將5份陽性樣品的PCR產(chǎn)物進行測序,測序結(jié)果證實目的條帶均為APPV NS2基因的特異性片段。測序分析結(jié)果與RT-PCR結(jié)果高度一致,進一步驗證了本試驗建立的檢測方法的特異性與準確性。

    2.7 豬非典型性瘟病毒(APPV)遺傳進化分析

    將檢出的臨床陽性樣品RT-PCR產(chǎn)物送至生工生物工程(上海)有限公司測序。用Mega7.0軟件對APPV陽性樣品的基因序列和GenBank已發(fā)表的APPV基因序列,以及與APPV同科同屬的BVDV-1、BVDV-2、BDV、CSFV等基因序列進行遺傳進化分析。結(jié)果(圖10)表明,本研究中檢出的豬非典型性瘟病毒(SC株)NS2基因序列與所有APPV基因參考序列均處于同一分支,與其他APPV核苷酸序列的同源性在92%以_上。SC株與中國報道的APPV的親緣關(guān)系較近,與國外報道的APPV的親緣關(guān)系較遠。且與CSFV、BDV及BVDV均不在同一分支內(nèi)。

    3 討論

    豬非典型性瘟病毒(APPV)是中國最近幾年才檢測出的一種新病毒。人工感染試驗證實APPV是一種可以引起A-I型仔豬先天性震顫的病原9]。感染該病毒的仔豬四肢、頭部或全身出現(xiàn)有節(jié)奏的震顫[16],強烈的重復性震顫使仔豬無法尋找乳頭,導致仔豬母乳攝入不足,嚴重時會導致仔豬死亡。如果護理得當,大多數(shù)仔豬斷奶后震顫現(xiàn)象自行消失以。中國養(yǎng)豬業(yè)規(guī)模龐大,在受影響的養(yǎng)殖場中發(fā)現(xiàn)約1%~2%的流行率,由于養(yǎng)豬業(yè)的規(guī)模和100%淘汰率,AP-PV造成了極大的經(jīng)濟損失[8],促使我們?yōu)楂F醫(yī)臨床診斷建立一種簡單快速的檢測方法。

    本試驗根據(jù)GenBank中已發(fā)表的APPVNS2基因序列,設計了1對特異性引物并且成功建立了一種APPV的RT-PCR快速檢測方法。特異性試驗結(jié)果表明,本研究建立的方法可以特異性地從樣品中檢測出APPV,而與PRRSV、PRV和CSFV等病原無交叉反應,具有較高的特異性。敏感性試驗結(jié)果表明,建立的RT-PCR檢測方法的最低檢出量為1 μl4.95x104拷貝。為驗證該方法的穩(wěn)定性,本研究進行了組間、組內(nèi)重復性試驗,結(jié)果表明該方法具有良好的重復性。對采自四川省遂寧、邛崍等地區(qū)的68份疑似患病樣品進行檢測,共有5份檢測結(jié)果為陽性,陽性檢出率為7.35%。同時,我們根據(jù)陽性產(chǎn)物測序結(jié)果利用Mega7.0繪制APPV的系統(tǒng)進化樹[17],發(fā)現(xiàn)本研究檢測的APPV SC株與其他APPV核苷酸序列的同源性在92%以上,SC株與中國報道的APPV的親緣關(guān)系較近,并且國內(nèi)大部分APPV分離株與國外分離株位于不同分支,表明國內(nèi)的APPV的生物學特性、致病性等與國外分離株可能有所區(qū)別。以上試驗結(jié)果均表明,本試驗研究建立的APPV RT-PCR檢測方法可應用于臨床APPV的診斷、檢測和流行病學調(diào)查,為今后開展APPV的深入研究提供了技術(shù)手段,有廣闊的應用前景。

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