歐慧瑜 李瑞鵬 邵珍怡 郭秋平
(廣州醫(yī)藥研究總院有限公司藥物非臨床評價研究中心,廣州 510240)
骨關(guān)節(jié)炎(osteoarthritis,OA)是由機械和生物因素引起的以關(guān)節(jié)軟骨退行性病變和滑膜炎性病變?yōu)橹饕卣鞯穆约膊1-2],導(dǎo)致患者出現(xiàn)疼痛和功能障礙,嚴重影響其生活質(zhì)量。建立一種能模擬OA發(fā)病過程的模型,對于篩選和評價治療OA的藥物非常重要。關(guān)節(jié)軟骨的直接損傷可以引起骨關(guān)節(jié)炎病變或軟骨再生,這主要取決于損傷的部位,損傷的大小和動物的年齡[3]。本研究中使用6月齡新西蘭兔,通過關(guān)節(jié)軟骨鉆孔致軟骨缺損成功制備了兔OA模型。
鹽酸氨基葡萄糖膠囊(浙江誠意藥業(yè)股份有限公司);6%戊巴比妥鈉;白介素-1β(IL-1β)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)ELISA檢測試劑盒(武漢伊萊瑞特生物科技股份有限公司)。
新西蘭兔(雌雄各半,6月齡),由山東濟南金豐實驗動物有限公司提供(許可證號SCXK(魯)2014-0006)。動物飼養(yǎng)于普通級動物房,溫度16~26 ℃,相對濕度40%~70%,12 h照明/12 h黑暗交替,動物自由攝食和飲水。本實驗遵守廣東省實驗動物保護和使用指南,并經(jīng)藥物非臨床評價研究中心的實驗動物倫理委員會批準(zhǔn)。
電子天平(北京賽多利斯科學(xué)儀器有限公司);3-18k高速冷凍離心機(德國Sigma公司);Elx800酶標(biāo)儀(美國Bio Tek公司);病理切片機(德國Leica公司),OLYMPUS BX41 顯微鏡和DP71+IPP6.0圖像采集系統(tǒng)。
1.4.1動物分組:將檢疫合格的動物,根據(jù)體質(zhì)量和性別隨機分成3組:假手術(shù)組,模型組和陽性對照藥氨基葡萄糖(劑量為0.034 g/kg)組,每組12只,雌雄各半。每天觀察各組動物的食量、大小便、精神狀態(tài)等。
1.4.2造模方法:取36只新西蘭兔,用6%戊巴比妥鈉(0.7 mL/kg)耳緣靜脈注射麻醉動物。左側(cè)膝部內(nèi)側(cè)縱向切口,長約2 cm,將髕骨翻向外側(cè),顯露髕骨關(guān)節(jié)面。檢查膝關(guān)節(jié)腔有無積液或粘連,關(guān)節(jié)軟骨平坦,色澤正常后,先用直徑2 mm鉆頭在膝關(guān)節(jié)屈曲90°時髕骨所對應(yīng)股骨內(nèi)、外側(cè)髁間關(guān)節(jié)面中部初步定位,鉆出小凹陷,然后換4.2 mm的鉆頭在此基礎(chǔ)上鉆出直徑4.2 mm、深3 mm的關(guān)節(jié)軟骨缺損區(qū)。將髕骨復(fù)位,逐層縫合關(guān)節(jié)囊和皮膚切口。術(shù)后立即肌肉注射青霉素鈉以防止感染。假手術(shù)組的動物僅暴露髕骨不鉆孔,其余操作方法與上述描述相同。造模4周后,各組動物開始灌胃給藥,每天1次,連續(xù)給藥4周。各組動物的給藥體積均為10 mL/kg。假手術(shù)組和模型組給予相同體積的CMC-Na溶液。
1.5.1血清和關(guān)節(jié)液中IL-1β和TNF-α檢測:末次給藥后,動物靜脈采血,靜置2 h后,分離血清,置于-20 ℃冰箱保存待測。用注射器抽取1 mL生理鹽水注入關(guān)節(jié)腔沖洗,抽出沖洗液,4 000 r/min離心10 min,吸取上清液,置于-20 ℃冰箱保存。按照ELISA試劑盒說明書,檢測血清和關(guān)節(jié)液IL-1β和TNF-α水平。
1.5.2組織病理學(xué)觀察:采血結(jié)束后,處死動物,將各組動物造模側(cè)的關(guān)節(jié)軟骨和滑膜組織用4%甲醛溶液固定,脫水,包埋,切片后進行HE染色。參照Mankin’s評分標(biāo)準(zhǔn)對關(guān)節(jié)軟骨進行評分[4],驗證OA模型是否復(fù)制成功。
結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用SPSS 22.0軟件進行統(tǒng)計分析。用單因素方差分析(ANOVA)進行總體比較,發(fā)現(xiàn)差異再用Dunnett法進行多個劑量組與陰性對照組間的兩兩比較,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
造模8周后,模型組動物血清、關(guān)節(jié)液中IL-1β、TNF-α水平明顯高于假手術(shù)組(P<0.05);而連續(xù)4周給予氨基葡萄糖后,動物血清、關(guān)節(jié)液中IL-1β、TNF-α水平明顯下降(P<0.05),結(jié)果見表1。
表1 動物血清、關(guān)節(jié)液中IL-1β和TNF-α水平Table 1 L-1βbeta and TNF-α in the serum and joint
注:與假手術(shù)組比較,#P<0.05;與模型組比較,*P<0.05
Note: compared with model,#P<0.05; compared with sham,*P<0.05
造模8周后,假手術(shù)組動物關(guān)節(jié)軟骨及周圍組織正常,關(guān)節(jié)面完整,無炎細胞浸潤;模型組動物軟骨表面不連續(xù),交界處有裂隙,兩端整合不良,潮線模糊不清;氨基葡萄糖組動物損傷部位以纖維組織增生為主,內(nèi)有多量軟骨細胞,軟骨表面連續(xù),交界處無裂隙,兩端整合良好,結(jié)果見圖1。
圖1 兔膝關(guān)節(jié)軟骨病理圖(HE染色)Fig.1 Pathology of articular cartilage of Rabbit Knee Joint
造模8周后,模型組動物軟骨組織評分為7.3分,與假手術(shù)組相比明顯升高(P<0.05)。連續(xù)4周給予氨基葡萄糖后,動物軟骨組織評分為5.1分,與模型組相比明顯降低(P<0.05),結(jié)果見表2。
造模8周后,假手術(shù)組動物滑膜襯層細胞未見增生、肥大、炎細胞浸潤;模型組動物滑膜襯層細胞增生、肥大,全層均有顯著炎細胞浸潤;氨基葡萄糖組動物滑膜襯層細胞增生、肥大,伴有少量炎細胞浸潤。結(jié)果見圖2。
表2 關(guān)節(jié)軟骨Mankin’s評分Table 2 Mankin’s score of articular
注:與假手術(shù)組比較,#P<0.05;與模型組比較,*P<0.05
Note: compared with model,#P<0.05; compared with sham,*P<0.05
圖2 兔膝關(guān)節(jié)滑膜組織病理圖(HE染色)Fig.2 Synovial Histopathology of Rabbit Knee Joint
骨關(guān)節(jié)炎(OA)是慢性、退變性的關(guān)節(jié)疾病,多發(fā)于中老年人群,導(dǎo)致患者的生活能力喪失甚至殘疾。隨著社會人口老齡化,每年的OA患者人數(shù)都在增加,給社會造成了沉重的經(jīng)濟負擔(dān)[5]。目前臨床上常用的藥物如鹽酸氨基葡萄糖、非甾體類抗炎藥,僅能緩解癥狀,而且長期服用還會出現(xiàn)胃腸道不適等不良反應(yīng)[6]。因此,迫切需要研究OA的發(fā)病機制,開發(fā)新的治療藥物。
理想的OA動物模型應(yīng)該有大小、結(jié)構(gòu)、軟骨損傷、疾病進程等都與人類相似的關(guān)節(jié),采用相同的誘導(dǎo)方法可成功復(fù)制模型,而且動物的年齡能模擬OA患者[7]。目前常用的OA模型制備方法有手術(shù)法和非手術(shù)法,非手術(shù)法有化學(xué)法、自發(fā)性、轉(zhuǎn)基因模型等[8]。近年采用較多的方法是手術(shù)法,如Hulth模型[9]、改良的前交叉韌帶切斷模型[10]等,通過手術(shù)可迅速造成關(guān)節(jié)不穩(wěn)而誘導(dǎo)OA,損傷嚴重,不能模擬OA慢性疾病的發(fā)病進程,不利于表現(xiàn)藥物的干預(yù)作用?;瘜W(xué)法是在關(guān)節(jié)腔內(nèi)注射木瓜蛋白酶、膠原酶等[11-12],但是造模程度難以確定。自發(fā)性O(shè)A模型動物更接近OA的發(fā)病進程,但是耗費時間較長,成本較高[13]。轉(zhuǎn)基因模型通過編輯基因獲得基因缺陷的動物,可用于研究特定基因在OA發(fā)病中的作用,但成本較高。
OA最初是以關(guān)節(jié)軟骨損傷為主,研究表明狗關(guān)節(jié)軟骨缺陷(1.5 mm直徑,0.5 mm深度)3周后可形成溫和的OA病變[14]。這種模型接近OA發(fā)病過程,損傷較輕,造模程度可以控制,也可用于其他種屬動物,如嚙齒類動物,兔,馬等[3]。本研究采用兔關(guān)節(jié)軟骨鉆孔造成軟骨缺陷(4.2 mm直徑,3 mm深度),造模8周后,模型組出現(xiàn)軟骨結(jié)構(gòu)改變,缺損和滑膜炎細胞浸潤等OA的特征,而且陽性藥物可以改善模型的這些癥狀。因此,該模型可為治療OA藥物的評價提供參考。