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    磁性松香基高分子固定化交聯(lián)脂肪酶聚集體的制備及性質(zhì)研究

    2019-08-22 09:40:34盧建芳黎克純雷福厚周菊英
    中國油脂 2019年7期
    關(guān)鍵詞:聚集體松香戊二醛

    盧建芳,黎克純,雷福厚,周菊英

    (1.廣西民族大學(xué) 化學(xué)化工學(xué)院,南寧 530006; 2.廣西林產(chǎn)化學(xué)與工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,南寧 530006)

    脂肪酶是一類重要的?;饷?,常被用來催化酯的合成、水解、醇解及酯交換等反應(yīng)。由于脂肪酶較高的活性、穩(wěn)定性、區(qū)域和立體選擇性,被廣泛應(yīng)用于洗滌劑、油脂、皮革、紡織、有機(jī)合成和制藥行業(yè)等多個(gè)領(lǐng)域[1-3]。但是游離脂肪酶的可操作性和穩(wěn)定性較差,限制了其應(yīng)用。當(dāng)脂肪酶暴露在高溫或有機(jī)溶劑中,會(huì)發(fā)生變性引發(fā)活性損失[4]。此外,由于高成本,難以回收和再利用以及污染產(chǎn)品等缺陷使得可溶性酶在工業(yè)過程中的廣泛應(yīng)用受到限制。因此,必須尋找一種有效的酶處理方法[5],提高其操作穩(wěn)定性,且易于分離回收。目前,固定化方法基本分為兩種類型:載體和無載體[6]。無載體最新技術(shù)——交聯(lián)脂肪酶聚集體(CLEAs)是利用蛋白沉淀劑,將溶解狀態(tài)的酶進(jìn)行物理沉淀得到酶聚集體,隨后利用交聯(lián)劑與酶聚集體分子上的氨基發(fā)生Schiff堿反應(yīng),生成不溶水的交聯(lián)脂肪酶聚集體。載體固定化是利用載體固定化技術(shù)即采用吸附、包埋、共價(jià)結(jié)合等方法將酶固定在載體上。兩種方法各有優(yōu)缺點(diǎn)。有載體的固定化酶不可避免地導(dǎo)致酶催化活性的稀釋[7],而無載體酶具有較高單位酶活性[8],避免粗酶的進(jìn)一步純化。但CLEAs具有一些缺點(diǎn):機(jī)械穩(wěn)定性低,酶分子泄漏和難以恢復(fù)。將CLEAs與載體固定化相結(jié)合不僅可以提高CLEAs的機(jī)械強(qiáng)度而且可以根據(jù)實(shí)際需要設(shè)計(jì)不同類型的固定化酶。王冬偉等[9]將木聚糖酶聚集體固定到LKZ-128氨基型樹脂上,酶活達(dá)到190 U/g,操作穩(wěn)定性、熱穩(wěn)定性和pH穩(wěn)定性均得到提高。Gao等[10]制備了介孔氧化硅固載化脂肪酶交聯(lián)脂肪酶聚集體(CLL@MPS),應(yīng)用于水解、酯化和轉(zhuǎn)酯反應(yīng)時(shí),CLL@MPS展現(xiàn)出良好的穩(wěn)定性和重復(fù)使用性。Zeinali等[11]將劍豆脲酶交聯(lián)聚集體包埋在聚丙烯酰胺凝膠中,考察了酶活最佳條件,顯示此方法可明顯提高脲酶的儲(chǔ)存穩(wěn)定性和操作穩(wěn)定性。

    松香含有共軛二烯結(jié)構(gòu)和羧酸基團(tuán),有利于形成機(jī)械強(qiáng)度高、耐熱性良好的功能高分子,可以結(jié)合多種生物分子。磁性具有良好的磁導(dǎo)向性,且通過外加磁場(chǎng)快速進(jìn)行分離和回收。本研究將CLEAs和載體固定化方法相結(jié)合,制備固定化交聯(lián)脂肪酶聚集體(CLEAs-L)。首先,通過沉淀制備脂肪酶聚集體,然后用戊二醛交聯(lián)。其次,將含有—NH2的磁性松香基高分子作為載體固定CLEAs,最終得到固定化CLEAs-L。此外,研究了固定化CLEAs-L的最佳制備條件,表面和微孔結(jié)構(gòu),活性和穩(wěn)定性,以期該技術(shù)獲得更好的催化性能。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗(yàn)材料

    脂肪酶(BR),酚酞(Ind),橄欖油(CP),聚乙烯醇(CP,相對(duì)分子質(zhì)量為1 750±50),戊二醛(CP),二氯亞砜(CP),氫氧化鈉、無水乙醇、十二水合磷酸二鈉、磷酸二氫鉀、1,4-二氧六環(huán)、甲基丙烯酸、丙烯酸、過氧化二苯甲酰,均為分析純。馬來松香丙烯酸乙二醇酯,廣西林產(chǎn)化學(xué)與工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室提供。

    SYC-15超級(jí)恒溫水浴鍋;Scientz-10N冷凍干燥機(jī);ZJ-2B磁天平;SUPRA 55 Sapphire場(chǎng)發(fā)射掃描電子顯微鏡,德國卡爾蔡司(CARL ZEISS)公司。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 磁性松香基高分子的制備[12]

    取4.2 g甲基丙烯酸、1.8 g丙烯酸和20.0 g馬來松香丙烯酸乙二醇酯,溶于50 mL乙酸乙酯后,再加入0.06 g過氧化二苯甲酰,超聲20 min后再加入3.2 g FeCl3·6H2O、1.4 g FeCl2·4H2O及100 mL蒸餾水,繼續(xù)超聲30 min,然后400 r/min攪拌,緩慢加熱至80℃,迅速加入25 mL 質(zhì)量分?jǐn)?shù)25%的氨水,保溫6 h。通過外加磁場(chǎng)分離出磁性高分子,并用無水乙醇和去離子水各30mL洗滌5次,得到磁性松香基固體。

    取5 g磁性松香基固體加入5 mL吡啶中,冰浴條件下緩慢滴加15 mL二氯亞砜,反應(yīng)4 h后減壓抽濾。再向其中加入溶有5 mL乙二胺的10 mL 1,4-二氧六環(huán)的溶液。常溫條件下,磁力攪拌反應(yīng)2 h,在外加磁場(chǎng)的作用下固液分離并用蒸餾水反復(fù)洗滌,得到磁性松香基高分子。

    1.2.2 脂肪酶聚集體的制備

    將0.4 g脂肪酶溶于pH 7.5的磷酸鹽緩沖溶液中,0℃下磁力攪拌1 h。-10℃、8 000 r/min離心10 min取上層清液,冰浴下加入一定量的沉淀劑(無水乙醇),反應(yīng)0.5 h,8 000 r/min離心10 min,得脂肪酶聚集體。取脂肪酶聚集體,冷凍干燥,測(cè)定其活性,確定聚集條件。

    1.2.3 交聯(lián)脂肪酶聚集體的制備

    取25 mL脂肪酶聚集體懸浮液(將0.4 g脂肪酶制得的酶聚集體放入25 mL磷酸鹽緩沖溶液中超聲分散)置于冰浴中,緩慢滴加一定量戊二醛溶液,輕微攪拌,交聯(lián)反應(yīng)一段時(shí)間,6 000 r/min離心10 min,棄去上清液,用pH 7.5的磷酸鹽緩沖液反復(fù)洗滌沉淀。得到交聯(lián)脂肪酶聚集體,測(cè)定酶活力,確定交聯(lián)條件。

    1.2.4 磁性松香基高分子載體固定交聯(lián)脂肪酶聚集體的制備

    將0.5 g磁性松香基高分子載體和0.2 g交聯(lián)脂肪酶聚集體放入20 mL pH 7.5的磷酸鹽緩沖溶液中,加一定量戊二醛。冰浴中交聯(lián)反應(yīng)1 h。外加磁場(chǎng)分離固體,冷凍干燥,測(cè)定固定化CLEAs-L活力,確定二次交聯(lián)條件。

    1.2.5 固定化脂肪酶的制備

    0.4 g脂肪酶溶解在100 mL pH 7.5的磷酸鹽緩沖溶液中,磁力攪拌1 h,冷凍離心取上層清液,加入如1.2.4相同量的磁性松香基高分子載體,添加1%戊二醛,冰浴交聯(lián)反應(yīng)1 h。外加磁場(chǎng)分離固體,冷凍干燥,即得固定化脂肪酶。

    1.2.6 脂肪酶活性的測(cè)定[13]

    游離脂肪酶和固定化酶的活性均采用橄欖油乳化法,即1 min催化產(chǎn)生1 μmol脂肪酸所需的酶量定義為1個(gè)活力單位。

    固定化酶的酶活回收率=固定化酶的酶活/加入酶液的酶活×100%

    固定化酶的相對(duì)活性=每組中所測(cè)酶活性值/該組中最高酶活性值×100%

    1.2.7 SEM的測(cè)定

    將脂肪酶聚集體、交聯(lián)脂肪酶聚集體、載體、固定化脂肪酶、固定化CLEAs-L粘在導(dǎo)電膠上,進(jìn)行噴金,然后用場(chǎng)發(fā)射掃描電子顯微鏡觀察材料的表面形態(tài)。

    1.2.8 粒徑分布的測(cè)定

    分別以粒徑700~1 400 μm、1 400~2 800 μm、2 800~4 200 μm和4 200~5 600 μm 4個(gè)級(jí)別對(duì)固定化CLEAs-L進(jìn)行篩分,以篩分后的700~5 600 μm固定化CLEAs-L的總質(zhì)量為基礎(chǔ),計(jì)算不同粒徑范圍內(nèi)的固定化CLEAs-L的質(zhì)量占比。

    1.2.9 酶負(fù)載量的測(cè)定

    采用元素分析儀測(cè)定固定化脂肪酶和固定化CLEAs-L的氮含量,按下式計(jì)算固定化脂肪酶和固定化CLEAs-L的酶負(fù)載量。

    (L+M)×N1=M×N2+L×N3

    式中:L為載體的質(zhì)量,g;M為磁性松香基載體酶負(fù)載量,mg/g;N1為固定化脂肪酶或固定化CLEAs-L的氮含量,%;N2為游離脂肪酶的氮含量,即2.065%;N3為載體氮含量,0.055%。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 固定化CLEAs-L制備條件的研究

    2.1.1 聚集條件的確定

    2.1.1.1 沉淀劑無水乙醇用量對(duì)脂肪酶聚集體活力的影響

    沉淀劑通過破壞蛋白分子表面帶電狀態(tài)使蛋白質(zhì)聚集沉淀,這一過程會(huì)造成酶的空間結(jié)構(gòu)發(fā)生變形,酶分子的活性中心遭到破壞,酶活力下降[14]。高濃度的沉淀劑能使酶蛋白快速從溶液中聚集并沉降下來,有助于酶活性中心結(jié)構(gòu)的維持;而濃度越低,聚集沉淀的速度越慢,對(duì)酶活性中心的損害就越大。與此同時(shí),沉淀劑濃度過高,也會(huì)造成酶空間結(jié)構(gòu)變形,酶活中心受損,致使酶完全或部分失活。在脂肪酶質(zhì)量濃度2 g/L的條件下,無水乙醇用量對(duì)脂肪酶聚集體活力的影響見圖1。

    圖1 無水乙醇用量對(duì)脂肪酶聚集體活力的影響

    由圖1可知,隨著無水乙醇用量的增加,脂肪酶聚集體的活力也增加,當(dāng)無水乙醇用量超過30%后,酶活力反而下降。當(dāng)無水乙醇用量為30%時(shí),脂肪酶聚集體的活力最大。

    2.1.1.2 脂肪酶質(zhì)量濃度對(duì)脂肪酶聚集體活力的影響

    沉淀劑無水乙醇用量為30%,加入不同質(zhì)量濃度的脂肪酶,其聚集體活力的變化見圖2。

    圖2 脂肪酶質(zhì)量濃度對(duì)脂肪酶聚集體活力的影響

    由圖2可知,當(dāng)沉淀劑用量一定時(shí),脂肪酶質(zhì)量濃度過大,酶分子不能完全沉集,脂肪酶聚集體活力低,脂肪酶的質(zhì)量濃度低,沉淀劑會(huì)造成酶的三維空間結(jié)構(gòu)發(fā)生變形,活性中心會(huì)遭到破壞,酶活力下降。因此,當(dāng)脂肪酶質(zhì)量濃度為4 g/L時(shí),所得脂肪酶聚集體活力最大。

    2.1.2 交聯(lián)條件的確定

    2.1.2.1 戊二醛用量對(duì)交聯(lián)脂肪酶聚集體(CLEAs-L)活力的影響

    在交聯(lián)時(shí)間2 h條件下,交聯(lián)劑戊二醛用量對(duì)交聯(lián)脂肪酶聚集體活力的影響見圖3。

    戊二醛既是酶交聯(lián)劑,同時(shí)也是蛋白質(zhì)變性劑。低濃度的戊二醛對(duì)酶聚集體交聯(lián)不完全或不牢固,易發(fā)生酶泄漏,而高濃度的戊二醛,有更多的機(jī)會(huì)進(jìn)攻酶的活性位點(diǎn),導(dǎo)致酶失活的概率增大。由圖3可知,當(dāng)加入的戊二醛用量為0.3%時(shí),酶活回收率最大。

    圖3 戊二醛用量對(duì)交聯(lián)脂肪酶聚集體活力的影響

    2.1.2.2 交聯(lián)時(shí)間對(duì)交聯(lián)脂肪酶聚集體活力的影響

    在戊二醛用量0.3%條件下,交聯(lián)時(shí)間對(duì)交聯(lián)脂肪酶聚集體活力的影響見圖4。

    圖4 交聯(lián)時(shí)間對(duì)交聯(lián)脂肪酶聚集體活力的影響

    由圖4可知,交聯(lián)時(shí)間超過2 h,可能是部分未反應(yīng)的醛基繼續(xù)與CLEAs-L的活性氨基進(jìn)行反應(yīng),增加了CLEAs-L活性位點(diǎn)的損失,致使交聯(lián)脂肪酶聚集體活力下降。與此同時(shí),戊二醛本身就是一種酶蛋白的變性劑,隨著酶蛋白與戊二醛接觸時(shí)間的延長(zhǎng),脂肪酶自身的酶活也會(huì)有所降低。交聯(lián)時(shí)間為2 h時(shí),酶活回收率最大。

    2.1.3 二次交聯(lián)條件的確定

    2.1.3.1 戊二醛用量對(duì)固定化CLEAs-L活力的影響

    在CLEAs-L與載體質(zhì)量比為1∶1條件下,戊二醛用量對(duì)固定化CLEAs-L活力的影響見圖5。

    圖5 戊二醛用量對(duì)固定化CLEAs-L活力的影響

    戊二醛起“手”的作用將CLEAs-L和磁性松香基高分子連接起來,實(shí)現(xiàn)載體與無載體固定化技術(shù)相結(jié)合。由圖5可知,戊二醛用量少不能有效固定交聯(lián)脂肪酶聚集體,固定化CLEAs-L酶活低。當(dāng)戊二醛過量,會(huì)交聯(lián)CLEAs-L的活性位點(diǎn),導(dǎo)致酶失活。因此,二次交聯(lián)采用戊二醛用量為1%,固定化CLEAs-L酶活回收率最大。

    2.1.3.2 交聯(lián)脂肪酶聚集體與載體質(zhì)量比對(duì)固定化CLEAs-L活力的影響

    在戊二醛用量為1%條件下,交聯(lián)脂肪酶聚集體與載體質(zhì)量比對(duì)固定化CLEAs-L活力的影響見圖6。

    圖6 交聯(lián)脂肪酶聚集體與載體質(zhì)量比對(duì)固定化 CLEAs-L活力的影響

    由圖6可知,隨著CLEAs-L與載體質(zhì)量比增大即交聯(lián)酶聚集體的投放量增大,固定化CLEAs-L酶活回收率先增大后減小,2.5∶1時(shí)酶活回收率最大,為86.52%。當(dāng)投入過多的CLEAs-L時(shí),可能引起過多的CLEAs-L堆積在載體上,阻止酶與底物接觸,此時(shí)雖然加入的CLEAs-L量大,但是其酶活回收率很低即有效利用的酶量較小,不經(jīng)濟(jì)實(shí)惠。

    2.2 酶學(xué)性質(zhì)

    2.2.1 最適溫度及最適pH(見圖7)

    取若干個(gè)三角燒瓶,每瓶加入0.2 g的固定化CLEAs-L(或1 mL游離脂肪酶溶液),pH為7.5的磷酸鹽緩沖液5 mL和4 mL聚乙烯橄欖油乳化液,將三角燒瓶置于20~70℃下反應(yīng)10 min,然后立即取出加入15 mL 95%乙醇和3滴酚酞溶液后用0.05 mol/L的NaOH溶液滴定至粉紅色,30 s內(nèi)不褪色。測(cè)酶的活性,取同組實(shí)驗(yàn)中酶活最大的值為100,其余與之相比較,選出游離脂肪酶或固定化CLEAs-L最適溫度。

    取三角燒瓶若干編號(hào),每瓶加入0.2 g的固定化CLEAs-L(或1 mL的游離脂肪酶溶液),然后在各燒瓶中分別加入pH為5.8~8.0的磷酸鹽緩沖液,再加入4 mL的聚乙烯橄欖油乳化液,分別置于40℃(游離脂肪酶)和45℃(固定化CLEAs-L)水浴中反應(yīng)10 min,取出加入95%乙醇15 mL,滴加3滴酚酞溶液后用0.05 mol/L的NaOH溶液滴定至粉紅色,30 s內(nèi)不褪色。測(cè)定酶的活性,以同組實(shí)驗(yàn)中某次酶活最大值為100,同組之間進(jìn)行比較得到游離脂肪酶或固定化CLEAs-L的最適pH。

    圖7 溫度(a)和pH(b)對(duì)固定化CLEAs-L和游離脂肪酶活性的影響

    由圖7可知,固定化CLEAs-L和游離脂肪酶的最適溫度分別為45、40℃。40℃之前固定化CLEAs-L 的相對(duì)活性低于游離脂肪酶的,可能是由于高分子鏈在低溫下沒有伸展開,部分固定化CLEAs-L不能與底物接觸,沒有發(fā)生反應(yīng)。40℃之后,固定化CLEAs-L的相對(duì)活性高于游離脂肪酶的,受溫度影響變小??赡苁谴判运上慊叻肿赢a(chǎn)生的屏蔽效應(yīng),在較高的溫度下保護(hù)了酶的活性。同時(shí),酶分子與載體、酶分子與酶分子多點(diǎn)連接,防止了酶分子伸展變形。因此,固定化CLEAs-L的耐熱性明顯提高[15]。

    固定化CLEAs-L的最適pH為7.0,比游離脂肪酶向堿性方向移動(dòng)了0.5個(gè)單位。可能是因?yàn)榇判运上慊叻肿訅A性載體可以吸引更多的在固定化CLEAs-L附近的H+,局部的環(huán)境比溶液的酸性更強(qiáng)。因此,固定化CLEAs-L比游離脂肪酶耐堿性增強(qiáng),耐酸性有所降低[16]。

    2.2.2 操作穩(wěn)定性

    固定化CLEAs-L、固定化脂肪酶和交聯(lián)脂肪酶聚集體(CLEAs-L)在45℃、pH 7.0的磷酸鹽緩沖溶液中按1.2.6方法測(cè)定酶活性,然后外加磁場(chǎng)將固定化CLEAs-L、固定化脂肪酶回收,過濾將交聯(lián)脂肪酶聚集體(CLEAs-L)回收,再用10 mL pH 7.0的磷酸鹽緩沖溶液洗滌3種酶。然后將3種酶再按1.2.6方法測(cè)定酶活性,再回收、洗滌,重復(fù)操作,研究3種酶的操作穩(wěn)定性,結(jié)果見圖8。

    由圖8可知,重復(fù)操作6次后,固定化CLEAs-L、固定化脂肪酶、CLEAs-L的酶活回收率分別為60.53%、36.60%和32.12%。固定化CLEAs-L效果最好。隨著循環(huán)操作次數(shù)的增加,酶活回收率下降,可能是由于在重復(fù)使用過程中,固定化載體溶脹、結(jié)構(gòu)發(fā)生變化和酶的泄露所造成的。

    圖8 操作穩(wěn)定性

    2.2.3 儲(chǔ)存穩(wěn)定性

    將各0.1 g游離脂肪酶、固定化CLEAs-L和CLEAs-L分別放在20 mL、0.1 mol/L pH 7.5的磷酸鹽緩沖溶液中,4℃下低溫保存,定期取樣測(cè)定酶活性。3種酶的儲(chǔ)存穩(wěn)定性結(jié)果見表1。

    表1 游離脂肪酶、CLEAs-L和固定化CLEAs-L的 儲(chǔ)存穩(wěn)定性

    由表1可知,在相同條件下儲(chǔ)存120 d,固定化CLEAs-L和CLEAs-L相對(duì)活性分別為68.92%和34.75%,而游離脂肪酶已經(jīng)沒有活性了。說明固定化CLEAs-L穩(wěn)定性較好,適合于長(zhǎng)期儲(chǔ)存和使用。這可能是因?yàn)楫?dāng)酶分子從溶液中轉(zhuǎn)移到固定化CLEAs-L中,由于不溶的剛性載體的存在,對(duì)酶有屏蔽作用,并且增大了分子間的疏水作用,防止酶發(fā)生變性,從而增強(qiáng)了酶對(duì)熱和其他變性劑的穩(wěn)定性[17]。

    2.2.4 熱穩(wěn)定性

    將固定化CLEAs-L、CLEAs-L和游離脂肪酶放置在40~80℃的恒溫水浴中保溫2 h。并定義25℃游離脂肪酶的酶活性為100%,經(jīng)過熱處理的酶活性與之比較,從而得出相對(duì)活性。結(jié)果見表2。

    由表2可知,固定化CLEAs-L的耐熱性明顯提高,可能是:①磁性松香基高分子載體的屏蔽作用,抑制酶分子活性結(jié)構(gòu)的破壞,有效保護(hù)了交聯(lián)脂肪酶聚集體;②在酶分子的聚集過程中,酶蛋白分子進(jìn)行了有序的排列,并在交聯(lián)過程中將酶分子進(jìn)行固定,減少其受溫度影響發(fā)生折疊和反轉(zhuǎn)引起三維結(jié)構(gòu)損壞[11]。

    表2 游離脂肪酶、CLEAs-L和固定化 CLEAs-L活性的熱穩(wěn)定性

    2.3 磁性松香基高分子和固定化CLEAs-L的結(jié)構(gòu)

    2.3.1 電鏡掃描

    采用掃描電子顯微鏡(SEM)研究了脂肪酶聚集體、CLEAs-L、載體、固定化脂肪酶、固定化CLEAs-L的表面形態(tài),結(jié)果如圖9所示。

    由圖9可知,脂肪酶聚集體為“蜂窩狀”連貫結(jié)構(gòu),由松散的不規(guī)則的凝聚物組成。而合成的CLEAs-L表面光滑,棒狀,幾乎平行排列。進(jìn)一步證明CLEAs-L具有更好的儲(chǔ)存穩(wěn)定性,操作穩(wěn)定性和熱穩(wěn)定性。圖9c、d、e顯示在相同放大倍率下,載體表面粗糙,不均勻,存在大量的空隙和凹坑。固定化脂肪酶表面幾乎與載體表面相同。相比之下,固定化CLEAs-L的相應(yīng)SEM圖像清晰可見顯示出具有少量空隙的不同表面,其均勻且完全被分散良好的CLEAs-L覆蓋。

    注:a×5 000;b×5 000;c×15 000;d×15 000;e×15 000。圖9 脂肪酶聚集體(a)、交聯(lián)脂肪酶聚集體(b)、載體(c)、固定化脂肪酶(d)、固定化CLEAs-L(e)的SEM圖

    2.3.2 粒徑分布

    固定化CLEAs-L的粒徑分布如圖10所示。

    圖10 固定化CLEAs-L的粒徑分布

    脂肪酶催化反應(yīng)的底物大多比較黏稠,若固定化酶顆粒比較小,不利于反應(yīng)結(jié)束后的分離回收。由圖10可知,有60%的固定化CLEAs-L的粒徑集中在1 400~2 800 μm,顆粒較大、均勻、且具有磁性,在外加磁場(chǎng)的作用下有利于回收操作。

    2.3.3 固定化脂肪酶和固定化CLEAs-L的酶負(fù)載量(見表3)

    表3 固定化脂肪酶和固定化CLEAs-L的 氮含量及酶負(fù)載量

    由表3可知,固定化CLEAs-L酶負(fù)載量約為固定化脂肪酶的5倍,但是圖8顯示,酶負(fù)載量與活性不成正比??赡苁怯捎谥久冈诰奂徒宦?lián)過程中發(fā)生變性失活或是酶的活性位點(diǎn)與交聯(lián)劑發(fā)生交聯(lián)導(dǎo)致實(shí)際上能起催化作用的酶含量降低。

    3 結(jié) 論

    本研究將交聯(lián)脂肪酶聚集體固定在磁性松香基高分子上(即固定化CLEAs-L)。研究了制備過程中的工藝參數(shù)對(duì)固定化CLEAs-L活性的影響。最佳制備條件為:沉淀劑無水乙醇用量30%,脂肪酶質(zhì)量濃度4 g/L,一次交聯(lián)反應(yīng)中添加0.3%的戊二醛,交聯(lián)2 h,二次交聯(lián)反應(yīng)中添加1%的戊二醛,交聯(lián)脂肪酶聚集體與載體的質(zhì)量比為2.5∶1。在最佳制備條件下,固定化CLEAs-L的酶活回收率為86.52%,固定化CLEAs-L的最適溫度和pH分別為45℃和7.0,熱穩(wěn)定性、操作穩(wěn)定性和儲(chǔ)存穩(wěn)定性均有所提高。有60%的固定化CLEAs-L的粒徑集中在1 400~2 800 μm,顆粒較大,且載體具有磁性,外加磁場(chǎng)易于回收分離。此方法工藝簡(jiǎn)單,操作簡(jiǎn)便,改善了單一法所帶來的固定不穩(wěn)定及酶活回收率低等缺點(diǎn)。

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