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    黃粉蟲酶解物體內(nèi)外抗氧化及免疫活性研究

    2019-08-12 08:53:58劉竹青崔旋旋樸美子
    中國食品學(xué)報 2019年5期
    關(guān)鍵詞:黃粉蟲自由基抗氧化

    劉竹青 李 巖 崔旋旋 樸美子*

    (1青島農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院 山東青島 266109 2青島海潤農(nóng)大有限檢測公司 山東青島 266109)

    黃粉蟲(Tenebrio molitor)又叫面包蟲,是一種富含蛋白質(zhì)的昆蟲,干燥的黃粉蟲幼蟲含蛋白質(zhì)高達40%,有“蛋白質(zhì)飼料寶庫”的稱號。研究發(fā)現(xiàn),黃粉蟲能很好地提高人體免疫力,降低人體血脂,延緩器官衰老。李奕冉等[1]研究了黃粉蟲蛋白對小鼠免疫功能的影響,結(jié)果表明黃粉蟲蛋白可以明顯增加小鼠免疫器官質(zhì)量,增強小鼠細(xì)胞免疫力。

    蛋白質(zhì)經(jīng)過酶解后得到分子質(zhì)量小,具有生物活性的多肽類物質(zhì)。多肽類物質(zhì)的活性主要表現(xiàn)在降血壓、降膽固醇、抗肥胖、抗氧化和免疫調(diào)節(jié)等[2-3]。張莉莎等[4]利用陽陰離子交換柱層析以及Sephadex G-25凝膠柱層析對酶解得到的多肽進行分離純化,發(fā)現(xiàn)純化后的多肽表現(xiàn)出很強的抗氧化性。Jolles等[5]利用胰蛋白酶酶解人乳蛋白,分離出一種具有免疫活性的肽,可以刺激巨噬細(xì)胞吞噬綿羊紅細(xì)胞。徐鑫等[6]采用胰蛋白酶酶解酪蛋白酸鈉的方法制備免疫活性肽,獲得的多肽刺激脾細(xì)胞增殖能力最強,能提高機體免疫力的活性。目前對抗氧化活性肽的研究較多集中在大豆肽和玉米肽上,對黃粉蟲的利用還局限在黃粉蟲蛋白質(zhì)的提取上[7],而對黃粉蟲酶解物(Tenebrio Molitor Hydrolysate,以下簡稱TMH)的抗氧化活性及免疫活性的研究還很少。本文對TMH體外抗氧化活性進行研究,并通過小鼠試驗研究了TMH的體內(nèi)抗氧化活性和免疫活性,為黃粉蟲功能性食品的開發(fā)利用提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    黃粉蟲酶解物(TMH),自制;雄性昆明種8周齡SPF級實驗小鼠〔合格證號SCXKL(魯)20140007〕,青島大任富城畜牧有限公司;基礎(chǔ)飼料,青島大任富城畜牧有限公司;D-半乳糖,國藥集團;MDA、T-SOD、GSH-Px、CAT、·OH 試劑盒、考馬斯亮藍(lán)蛋白質(zhì)測定試劑盒,免疫球蛋白G(IgG)、免疫球蛋白 M(IgM)、白細(xì)胞介素 4(IL-4)、γ-干擾素(IFN-γ)小鼠 ELISA 測定試劑盒,南京建成生物工程公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    UV-2000型紫外分光光度計,尤尼克(上海)儀器有限公司;AR1140型電子分析天平,奧豪斯集團;臺式酸度測定儀,北京哈納科儀科技有限公司;ELx808型酶標(biāo)儀,美國BioTek公司;DSHZ-300A型旋轉(zhuǎn)式恒溫振蕩器,江蘇國華電器有限公司;電熱恒溫水浴鍋,龍口市先科儀器有限公司;RE-6000型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,上海亞榮生化儀器廠;FD-1D-80冷凍干燥機,北京博醫(yī)康實驗儀器有限公司;TGL-16M高速臺式冷凍離心機,湖南湘儀儀器有限公司。

    1.3 方法

    1.3.1 TMH的制備 將黃粉蟲幼蟲干燥后粉碎,過100目篩子,脫脂。利用Arazyme酶酶解,加酶量為517.8 U/g原料,料水比為1∶26.05,酶解時間5.0 h。滅酶15 min后,過濾、離心,取上層離心液即TMH,冷凍干燥后備用。

    1.3.2 TMH體外抗氧化活性

    1)DPPH自由基清除能力測定 參考文獻[8]。

    2)超氧陰離子清除能力測定 采用鄰苯三酚自氧化法測定[9]。

    3)總還原能力測定 采用鐵氰化鉀法測定[10]。

    1.3.3 TMH體內(nèi)抗氧化活性研究

    1.3.3.1 小鼠的分組與飼喂 選取60只初始體重為18~22 g的8周齡雄性昆明種SPF級小鼠,隨機分為6組,每組10只,分別為空白組、D-半乳糖致衰老模型組(簡稱為模型組)、VC陽性對照組以及TMH低劑量組、中劑量組、高劑量組。其中,空白組皮下注射 0.1 mL/(10g·d)生理鹽水,其余各組皮下注射 200 mg/(kg bw·d) D-半乳糖[11](D-半乳糖以無菌生理鹽水配成20 mg/mL的溶液,使用前用0.22 μm濾膜過濾除菌)。空白組和模型組每日灌胃等體積的生理鹽水,VC陽性組小鼠灌胃 VC〔10 mg/(kg bw·d)〕溶液,TMH 的低、中、高劑量組每日按多肽含量100,300,500 mg/(kg bw·d)灌胃小鼠。每日定時灌胃,注射 1次,連續(xù)6周。期間觀察小鼠體征,每周記錄1次小鼠體重。

    1.3.3.2 小鼠的處死及血漿準(zhǔn)備 對試驗小鼠末次注射后,禁食12 h,眼球取血并處死,血液中加入抗凝劑,靜置3 h,3 000 r/min離心15 min,小心吸取上層血漿,分裝后液氮冷凍備用。

    1.3.3.3 肝臟組織勻漿的制備 取解剖后小鼠肝臟,用生理鹽水沖洗干凈,瀝干水分,稱取0.2 g放入組織研磨器中,加入9倍生理鹽水進行研磨,制成10%肝臟組織勻漿。

    1.3.3.4 小鼠肝臟組織蛋白質(zhì)含量測定 采用蛋白質(zhì)定量試劑盒(考馬斯亮藍(lán)法)測定小鼠肝臟組織的蛋白質(zhì)含量。

    1.3.3.5 小鼠血漿和肝臟組織抗氧化指標(biāo)的測定按照試劑盒提供的方法,分別測定小鼠血漿和肝臟勻漿中 MDA 含量,CAT、GSH-Px、T-SOD 活力以及抑制羥自由基能力。

    1.3.4 TMH免疫活性研究

    1.3.4.1 實驗動物的分組與飼喂 選取40只初始體質(zhì)量18~22 g的8周齡昆明種清潔級雄性小鼠,隨機分為4個處理組,分別為空白組,TMH的低、中、高劑量組,每組10只。低、中、高劑量組每日按 TMH 中多肽含量 100,300,500 mg/(kg bw·d)灌胃小鼠,空白組每日灌胃等體積的生理鹽水,各組小鼠自由取食和飲水,飼養(yǎng)30 d。

    1.3.4.2 小鼠致敏及血清制備[12]取公雞血置于裝有玻璃珠的三角瓶中,同一方向搖動脫纖維,用生理鹽水清洗 2~3 次,離心(2 000 r/min,10 min),取上清,用生理鹽水配制體積分?jǐn)?shù)為2%的雞紅細(xì)胞懸液。每只小鼠腹腔注射雞血紅細(xì)胞0.2 mL,5 d后眼球取血,將凝固血與離心管壁剝離,使血清充分析出,以2 000 r/min離心10 min,收集血清。

    1.3.4.3 肝臟組織勻漿的制備 小鼠飼養(yǎng)30 d后,稱小鼠體重,眼部取血后處死,分別摘取小鼠的胸腺與脾臟,用生理鹽水沖洗,用濾紙充分吸干內(nèi)臟表面的水分,稱取小鼠各臟器質(zhì)量并記錄數(shù)據(jù),計算免疫器官指數(shù)(g/kg體重)。

    1.3.4.4 小鼠血清中免疫功能指標(biāo)的測定 采用酶聯(lián)免疫吸附法測定小鼠血清中的免疫球蛋白G(IgG)、免疫球蛋白 M(IgM)、白細(xì)胞介素 4(IL-4)、γ-干擾素(IFN-γ),試驗遵循 ELISA 測定試劑盒操作步驟。

    1.3.5 數(shù)據(jù)處理 數(shù)據(jù)采用x±s表示,采用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件進行方差分析,統(tǒng)計組間差異。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 TMH體外抗氧化活性

    2.1.1 TMH對DPPH自由基的清除作用由圖1可看出,在2~10 mg/mL質(zhì)量濃度范圍,隨著TMH濃度的增大,其對DPPH自由基的清除率也增大,當(dāng)TMH的質(zhì)量濃度為10 mg/mL時,其清除率達88.4%,其 IC50為 3.75 mg/mL。

    圖1 不同濃度TMH對DPPH自由基的清除能力Fig.1 DPPH scavenging ability of TMH with various concentrations

    2.1.2 TMH對O2-·自由基的清除作用由圖2可以看出,在25~200 mg/mL質(zhì)量濃度范圍,TMH濃度與清除O2-·自由基的能力呈線性關(guān)系。隨著TMH濃度的增大,其清除率不斷增大,當(dāng)質(zhì)量濃度為200 mg/mL時,其清除率達61.0%,IC50為138.42 mg/mL。

    2.1.3 TMH的還原能力 由圖3可以看出,在0.5~6 mg/mL質(zhì)量濃度范圍,隨著黃粉蟲酶解物濃度的增大,其還原能力不斷增大。當(dāng)質(zhì)量濃度為6 mg/mL時,其還原能力達到0.653。

    2.2 TMH體內(nèi)抗氧化活性

    2.2.1 TMH對小鼠體重的影響 體重的改變反映衰老的程度。對實驗小鼠在正常飼喂條件下連續(xù)飼喂6周,每周記錄小鼠體重1次。數(shù)據(jù)表明,飼喂期間各組小鼠的體重都有增加,其中模型組小鼠的體重增加量顯著小于其它各劑量組。研究發(fā)現(xiàn)小鼠體重增加量與TMH劑量的增加呈正比關(guān)系,多肽高劑量組的體重增加量與正常組無顯著差異,說明TMH可減緩衰老模型小鼠的衰老癥狀,起到防衰老的效果。

    圖2 不同濃度TMH對O2-·自由基清除能力Fig.2 O2-·radical scavenging ability of TMH with various concentrations

    圖3 不同濃度黃粉蟲酶解物的還原能力Fig.3 Reducing capacity of TMH with various concentrations

    表1 TMH對小鼠體重的影響Table1 Effect of TMH on body weight of mice

    2.2.2 TMH對小鼠血漿中MDA含量、CAT、GSHPx、T-SOD活力及抑制羥自由基能力的影響 機體組織中的超氧化物歧化酶、過氧化氫酶、谷胱甘肽過氧化物酶等可以清除體內(nèi)自由基和脂質(zhì)過氧化物,并明顯抑制組織中的丙二醛,從而抑制自由基的產(chǎn)生。小鼠組織中CAT、GSH-Px、T-SOD 活力及抑制羥自由基能力以及小鼠體重和肝臟中MDA含量變化,可以反映小鼠機體抗氧化情況。由表2可看出,模型組小鼠注射D-半乳糖后,肝臟MDA含量顯著升高,同時CAT、T-SOD、GSHPx活力和抑制羥自由基能力顯著降低,D-半乳糖建立衰老模型成功。與模型組相比,高劑量組TMH可以顯著降低MDA(P<0.05)含量并抑制羥自由基能力;低劑量組TMH就可以顯著提高小鼠血漿、肝臟中CAT(P<0.05)活力;中劑量組TMH可以顯著提高GSH-Px(P<0.05)活力;當(dāng)TMH為高劑量組時,可以顯著提高小鼠血漿、肝臟中TSOD(P<0.05)活力,其中,隨著劑量的增加,各指標(biāo)與模型組的差異增大,并與空白組的指標(biāo)接近。

    表2 TMH對小鼠血漿中MDA含量、CAT、GSH-Px、T-SOD活力及抑制羥自由基能力的影響Table2 Effect of TMH on MDA,CAT,GSH-Px,T-SOD and OH·in mice’s plasma

    2.2.3 TMH對小鼠肝臟中MDA含量、CAT、GSHPx、T-SOD活力及抑制羥自由基能力的影響 由表3可看出,模型組小鼠注射D-半乳糖后,肝臟MDA 含量顯著升高,同時 CAT、T-SOD、GSHPx活力和抑制羥自由基能力顯著降低,說明用D-半乳糖建立衰老模型成功。與模型組相比,TMH高劑量組的小鼠肝臟中MAD含量和T-SOD活力有顯著的變化,低、中劑量組沒有顯著性改變;CAT活力在低、中、高劑量組中都有所降低,變化均不顯著;TMH中劑量組中GSH-Px活力和·OH清除能力比模型組顯著提高,與空白組無顯著性差異。

    表3 TMH對小鼠肝臟中MDA含量、CAT、GSH-Px、T-SOD活力及抑制羥自由基能力的影響Table3 Effect of TMH on MDA,CAT,GSH-Px,T-SOD and OH·in mice’s liver

    2.3 TMH免疫活性研究

    2.3.1 TMH對小鼠免疫器官指數(shù)的影響 胸腺和脾臟分別屬于中樞和外周免疫器官,其增重往往意味著機體淋巴細(xì)胞的增殖,直接體現(xiàn)免疫應(yīng)答的強弱[13]。由表4可知,與對照組比較,隨著TMH劑量的增加,小鼠的免疫器官指數(shù)也有相應(yīng)的變化,其中胸腺指數(shù)沒有顯著變化,脾臟指數(shù)變化顯著。低、高劑量間不存在明顯的量效關(guān)系,其原因有可能是小鼠的胸腺與脾臟較小,解剖時導(dǎo)致測定結(jié)果有一定誤差。同時,劑量設(shè)計跨度大也有待改進。

    表4 TMH對小鼠免疫器官指數(shù)的影響Table4 Effect of TMH on the immune organs index of mice

    2.3.2 TMH 對小鼠血清中 IgG、IgM、IL-4、IFN-γ含量的影響 血清中的免疫球蛋白G(IgG)、免疫球蛋白M(IgM)的含量代表血清中免疫球蛋白的主要水平,是反映機體免疫功能狀態(tài)的指標(biāo)[14]。由表5可知,小鼠血清中的IgG含量在低、中、高劑量組間差異顯著,而小鼠血清中的IgM含量在低、中、高劑量組間沒有明顯差異。與空白組相比,小鼠血清中IgG、IgM含量均有顯著性提高。這說明TMH通過提高小鼠血清中IgG、IgM含量,提高小鼠免疫能力的效果。

    細(xì)胞因子IL-4對于B細(xì)胞、T細(xì)胞、肥大細(xì)胞、巨噬細(xì)胞都有免疫調(diào)節(jié)作用,主要參與B細(xì)胞增殖以及體液免疫,抗體的產(chǎn)生。細(xì)胞因子IFN-γ主要促進T細(xì)胞增殖,介導(dǎo)細(xì)胞免疫和炎癥反應(yīng)。由表5可知,與空白組相比,低、中、高劑量組小鼠血清中的IFN-γ含量有顯著提升,而中、高劑量組組間并無差異性。與空白組相比,低劑量組小鼠血清中的IL-4含量提高顯著。隨著飼喂劑量的增加,血清中的IL-4含量也顯著提高,并呈正相關(guān)性。TMH可以顯著提高小鼠血清中IL-4的含量,從而提高IL-4參與體液免疫能力,誘導(dǎo)抗體產(chǎn)生,提高小鼠免疫力。

    表5 TMH對小鼠血清中IgG、IgM、IL-4、IFN-γ含量的影響Table5 Effect of TMH on the IgG,IgM,IL-4,IFN-γ concentrations in mice’s plasma tissue

    3 結(jié)論

    利用Arazyme酶酶解黃粉蟲,得到富含多肽的酶解液。通過體外抗氧化活性研究發(fā)現(xiàn),黃粉蟲酶解液對DPPH自由基、O2-·自由基的清除能力分別達到 88.4%(10 mg/mL),61.0%(200 mg/L),且當(dāng)其質(zhì)量濃度為6 mg/L時,還原能力達到0.653。

    動物試驗表明,TMH可以顯著提高小鼠血漿、肝臟中 CAT、GSH-Px、T-SOD(P<0.05)活力,降低MDA(P<0.05)含量并抑制羥自由基能力;顯著增加血清中 IgG、IgM、IL-4、IFN-γ(P<0.05)的含量,提高小鼠脾臟和肝臟指數(shù),表現(xiàn)出較強的抗氧化能力以及改善機體免疫的功能。

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