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    弓形蟲RH株ROP16I/III基因缺陷蟲株感染BALB/c鼠的致病性研究

    2019-08-08 00:45:12
    中國人獸共患病學報 2019年7期
    關鍵詞:弓形蟲毒力宿主

    剛地弓形蟲(T.gondii)是一種專性有核細胞內寄生的原蟲,其存在廣泛的中間宿主群,包括人類。貓科動物為其終宿主。全球已經(jīng)有30%的人口被弓形蟲感染,歐美部分國家甚至高達40%[2],我國某些地區(qū)人群血清學陽性率約7%[3]。此外,弓形蟲病給畜牧業(yè)生產(chǎn)帶來巨大的損失。弓形蟲感染多為隱性感染期,免疫力正常的感染者無臨床表現(xiàn),或呈輕度一過性臨床癥狀。但是免疫功能低下的感染者,可出現(xiàn)嚴重癥狀,例如弓形蟲腦炎、肺炎、脈絡膜視網(wǎng)膜炎等,甚至致死[4]。已知弓形蟲棒狀體分泌的可溶性蛋白(ROP)參與蟲體侵襲、增殖、播散及免疫逃逸等。ROP在不同的基因型蟲株具有多態(tài)性。I型和III型弓形蟲的具有激酶活性的ROP16I/III可磷酸化State 3/6,早期感染驅動巨噬細胞向M2極化,可使蟲體在宿主細胞內大量繁殖,易導致蟲體在全身播散甚至致宿主死亡[5]。研究表明,我國的弓形蟲的優(yōu)勢基因型為Chinese 1,WH3株和WH6株是毒力截然不同的二個蟲株,感染Chinese 1 型WH3株的ROP16缺陷株可以活化Th1和Th17細胞,顛覆母-胎界面以Th2優(yōu)勢應答為主的免疫偏移,引起滋養(yǎng)層細胞凋亡,可導致不良妊娠[6]。研究發(fā)現(xiàn),I型ROP16基因敲除株導致弓形蟲在巨噬細胞內的增殖速度高于野生株,但是感染小鼠的死亡率并沒有降低,提示ROP16并非是早期致死小鼠的關鍵毒力因子[7]。本課題組前期利用CRISPR-Cas9 技術,成功獲得穩(wěn)轉RH株ROP16I/III基因缺陷蟲株[7]。在此基礎上,本研究將體外培養(yǎng)的ROP16I/III基因缺陷蟲株腹腔接種BALB/c小鼠,動態(tài)觀察感染小鼠的急性期臨床發(fā)病、腦等組織切片病理及檢測脾細胞炎性因子水平,旨在深入研究效應分子ROP16I/III在急性期致病中的作用。

    1 材料與方法

    1.1 材 料

    1.1.1弓形蟲type I型RH株及RHΔROP16株 由本實驗室傳代保存,復蘇后腹腔接種小鼠。

    1.1.2實驗動物 雌性6~8周齡SPF級BALB/c小鼠(20~25 g),由濟南朋悅實驗動物繁育有限公司提供。

    1.1.3實驗試劑 諾唯贊 SYBR Green Master Mix熒光定量試劑盒、 Hi Script ‖QRT Super Mix for q PCR均購于合肥颯英斯生物公司。氯仿、異丙醇、無水乙醇、4%多聚甲醛均購于安徽欣樂生物有限公司。

    1.2 實驗方法

    1.2.1BALB/c小鼠速殖子接種 分別收集RH野生型和RHΔROP16速殖子,顯微鏡下計數(shù)并稀釋至1 000個/mL,每組20只小鼠,每只腹腔注射400 μL,觀察并記錄小鼠出現(xiàn)豎毛、弓背、腹水及活動遲緩的先后順序及死亡時間。分別在感染后3 d、5 d和7 d,麻醉狀態(tài)下,剖殺小鼠取脾臟組織,-80 ℃冰箱保存、備用。

    1.2.2腦組織和肺組織HE染色 分別于感染后3 d、5 d和7 d,每組隨機取5只小鼠,無痛麻醉下眼球取血后脫頸處死,分別取腦組織和肺組織,置4%多聚甲醛固定24 h后,石蠟包埋,3 μm切片。切片置于65 ℃烤箱過夜,次日置于二甲苯脫蠟、梯度酒精脫水,置于蘇木精染液3 min,1%鹽酸乙醇分化后水洗,梯度酒精脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片。

    1.2.3脾組織總RNA提取 從-80 ℃冰箱取出脾組織,用剪刀剪碎后加入 300 μL Trizol用勻漿機硏磨后再加入700 μL Trizol,提取RNA并測定濃度及純度。按照Hi Script QRT Super Mix for qPCR說明書逆轉錄為cDNA備用。

    1.2.4細胞因子引物的設計 根據(jù)GenBank中Arg-1、IL-10、IL-12p40、IFN-γ和TNF-α的序列,用Premier 3設計引物,上海生工生物工程有限公司合成。

    Target Primer sequence(5′-3′)

    Arg-1 F: CAGAAGAATGGAAGAGTCAG

    R: CAGATATGCAGGGAGTCACC

    IFN-γ F: GGTCAACAACCCACAGGTCC

    R: CGACTCCTTTTCCGCTTCC

    IL-10 F: GCTCCTAGAGCTGCGGACT

    R: TGTTGTCCAGCTGGTCCTTT

    TNF-α F: ACGGCATGGATCTCAAAGAC

    R: GTGGGTGAGGAGCACGTAGT

    IL-12 F: GATGTCACCTGCCCAACTG

    R: TGGTTTGATGATGTCCCTGA

    GAPDH F: CAACTTTGGCATTGTGGAAGG

    R: ACACATTGGGGGTAGGAACAC

    1.2.5細胞因子測定 按照SYBR Green Master Mix熒光定量試劑盒說明書20 μL體系,利用羅氏LC96 SW 1.1相對定量檢測脾臟細胞因子變化。

    1.3野生型RH和RHΔrop16株在小鼠體內增殖測定

    取6只8周雌性小鼠,每組3只,分別腹腔注射1 200個蟲株,于第5 d無痛脫頸處死,腹腔灌洗計數(shù)蟲株數(shù)量。

    1.4統(tǒng)計學處理 實驗數(shù)據(jù)用Graph Pad Prism 6.02軟件進行統(tǒng)計分析,采用t檢驗方法分析,檢驗水平為α=0.05。

    2 結 果

    2.1野生型RH株和RHΔrop16感染小鼠臨床表現(xiàn) 通過腹腔注射相同數(shù)量的速殖子建立RHΔrop16和野生型感染鼠模型,動態(tài)觀察二組鼠于感染3 d、5 d、6 d、7 d、8 d小鼠發(fā)病(見表1)。

    表1 RHΔrop16小鼠和RH小鼠弓形蟲病癥狀

    Tab.1 Mice infected with wild-type RH strain and RHΔrop16strain checked for clinical signs of toxoplasmosis

    Group(n=3)Daysafterinjectionoftachyzoites3d5d6d7d8dcontrolNoobvioussymptomsNoobvioussymptomsNoobvioussymptomsNoobvioussymptomsNoobvioussymptomsRHNoobvioussymptomskyphosis,piloerec-tion,asmallamountofasciteskyphosis,piloerec-tion,scites,deathkyphosis,piloerec-tion,scites,deathAlldeathΔROP16Noobvioussymptomskyphosis,piloerec-tion,asmallamountofasciteskyphosis,piloerec-tion,asmallamountofasciteskyphosis,piloerec-tion,scites,deathAlldeath

    2.2RHΔrop16和野生型RH株感染小鼠存活率 兩組動物存活率無差異。 野生型RH感染組第6 d開始出現(xiàn)死亡,RHΔROP16感染組小鼠第7 d開始出現(xiàn)死亡,但兩組均在第8 d死亡,統(tǒng)計學分析兩組小鼠存活率之間無統(tǒng)計學差異(P>0.05)(見圖1)。

    圖1 感染野生型RH蟲株和RHΔrop16蟲株小鼠的存活率無統(tǒng)計學差異(P>0.05)Fig.1 Survival curve of mice infected wild-type RH strains and RHΔrop16 strains(P>0.05)

    2.3野生型RH株和RHΔrop16感染小鼠組織病理檢查

    2.3.1肺組織切片HE染色顯示感染后3 d可見炎性細胞廣泛浸潤、間質細胞輕度增生,部分肺泡內可見淤血。感染后第5 d可見廣泛炎性細胞浸潤、肺毛細血管充血明顯,肺間質細胞明顯增生、肺泡壁增厚,部分肺泡腔閉塞,重度肺水腫、肺泡間隔破裂,感染7 d肺嚴重淤血、水腫,兩者未見明顯差異(見圖2)。

    2.3.2腦組織切片HE染色顯示兩組小鼠感染后3 d腦間質均表現(xiàn)輕度疏松、水腫;隨著感染時間的延長,腦組織間質疏松、水腫漸趨嚴重,可見膠質細胞變性及壞死。感染后第7 d,野生型RH感染小鼠腦組織局部可見大量小細胞增生浸潤(見圖3),而同期RHΔrop16感染小鼠未見異常增生,感染野生蟲株的宿主腦組織病變更嚴重。

    2.4野生型RH株和RHΔrop16在小鼠體內增殖RHΔrop16和野生型RH株在小鼠體內增殖無統(tǒng)計學差異(t=2.449,P>0.05)(見圖4)。

    圖4 野生型和ROP16缺陷型蟲株在小鼠體內增殖無統(tǒng)計學差異(P>0.05)Fig.4 Tachyzoite proliferation rate in penitoneal cavity of mice infected with wild-type RH strain and RHΔrop16 strain in vivo(P>0.05)

    2.5野生型RH株和RHΔrop16感染小鼠脾臟Arg-1、IL-10、IL-12和TNF-α mRNA表達 為研究ROP16I/III基因缺陷蟲株感染宿主體內炎性免疫應答的特征,qRT-PCR檢測脾細胞炎性因子及抑炎因子水平。結果表明, RHΔrop16株感染鼠脾臟Arg-1 mRNA水平明顯低于野生型RH株感染鼠(t3d=2.417,t5d=3.525,t7d=4.863,P均<0.05)。兩株弓形蟲感染鼠脾臟IL-10、IL-12和TNF-α mRNA水平差異無統(tǒng)計學意義(IL-10:t3d=2.319,t5d=1.481,t7d=0.911;IL-12:t3d=0.200,t5d=0.589,t7d=1.315;TNF-α:t3d=1.833,t5d=1.313,t7d=1.969;IFN-γ:t3d=0.669,t5d=1.473,t7d=1.664;P均>0.05)(見圖5)。

    圖2 感染野生型RH株和RHΔrop16株小鼠肺部組織病理學改變Fig.2 Histopathological lesions in the lung of mice infected with wild-type RH strain and RHΔrop16 strain with H&E staining(×200)

    圖3 感染野生型RH株和ROP16缺陷蟲株小鼠腦部組織病理學改變Fig.3 Histopathological changes in the brain of mice infected with wild-type RH strain and RHΔrop16 strain with H&E staining(×200)

    圖5 野生型蟲株感染的小鼠ARG-1明顯高于敲除株(P<0.05);IL-10、IFN-γ、IL-12、TNF-α無統(tǒng)計學差異(P>0.05)Fig.5 Levels of Arg-1,IL-10,IFN-γ,IL-12 and TNF-α mRNA detected by qRT-PCR. Mice (n=3/ group) infected with wild-type RH strain and RHΔrop16 strain

    3 討 論

    剛地弓形蟲是一種重要的人獸共患性寄生蟲。已知世界流行的弓形蟲主要分為I、 II和 III型。本實驗室報道,中國大陸人獸間流行的弓形蟲基因型為Chinese 1型(代表蟲株Wh3、Wh6)等[7]。弓形蟲的毒力與某些棒狀體蛋白有關。I型和III型蟲株的ROP為ROPI/III(L503);而II型蟲株為ROPII(S503)。ROPI/III直接磷酸化Stat3/6信號通路,在感染早期驅動巨噬細胞向M2極化,有利于蟲體的大量增殖,導致宿主體內全身播散甚至導死亡[9]。小鼠在感染急性期死亡;而ROPII則無此活性[10]。相反,另一蟲源性效應分子GRA15I/III無激酶活性,但GRA15II則可活化NF-Κb,誘導巨噬細胞向M1極化,誘導早期的固有免疫應答發(fā)揮抗蟲作用。我國的Chinese 1基因型蟲株同時攜帶ROPI/III和GRA15II[11],提示其具有獨特的毒力和致病機制。

    為了證實I型以及Chinese 1型蟲株ROP16I/III與蟲株致病性關系,本課題建立ROP16I/III基因缺陷蟲株感染BALB/c小鼠模型,體內實驗研究發(fā)現(xiàn),RHΔrop16蟲株較野生型蟲株感染的小鼠,M2極化的標志分子Arg-1明顯減少,提示ROP16I/III促進了Arg-1的表達,但是蟲株對小鼠的毒力并未見明顯減弱,表現(xiàn)為小鼠弓背、豎毛、腹水等弓形蟲病癥狀、生存率及宿主體內增殖無統(tǒng)計學差異。此外,RHΔrop16組小鼠IL-10表達量未見顯著變化,可能在體內弓形蟲不僅感染巨噬細胞,還可感染DC、Th0、以及NK細胞等其他免疫相關細胞,這些免疫細胞均可分泌IL-10。以上結果提示,I型以及Chinese 1型蟲株的ROP16I/III雖然參與負向調控宿主巨噬細胞并促進蟲體在巨噬細胞內增殖,但其并非唯一的毒力因子。不同基因型弓形蟲及其毒力/效應分子在弓形蟲病發(fā)病機制中的作用,尚待深入研究。

    利益沖突:無

    引用本文格式:何佳麗,陳守斌,崔雯,等.弓形蟲RH株ROP16I/III基因缺陷蟲株感染BALB/c鼠的致病性研究[J].中國人獸共患病學報,2019,35(7):620-625. DOI:10.3969/j.issn.1002-2694.2019.00.61

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