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    紫蘇發(fā)酵乳體外抗氧化活性的研究

    2019-07-30 02:00:20田海娟羅佳孫宇張傳智潘艷張艷
    中國乳品工業(yè) 2019年6期

    田海娟,羅佳 ,孫宇,張傳智 ,潘艷,張艷

    (1.吉林工商學(xué)院糧油食品深加工吉林省高校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,吉林長春1300507;2.吉林工商學(xué)院糧食學(xué)院,吉林長春 130507)

    0 引 言

    紫蘇(Perilla frutescens(L.)Britt,我國研究紫蘇已有20多年的歷史,紫蘇籽提油后的紫蘇餅粕中含有豐富的活性成分,如α-亞麻酸、亞油酸、油酸、蛋白質(zhì)及氨基酸[1],另外還含有膳食纖維、谷維素、維生素F、維生素B1、甾醇、磷脂等。目前紫蘇籽粕主要用作飼料,對(duì)紫蘇籽粕中營養(yǎng)成分的利用率較低,造成了浪費(fèi)。開菲爾(Kefir)是一種以牛乳或羊乳為原料,利用開菲爾粒發(fā)酵制得的復(fù)合型發(fā)酵乳。其軍種為Kefir顆粒,是一個(gè)復(fù)雜的微生物共生體系,主要由乳酸菌、酵母菌和醋酸菌的某些屬種組成[2]。開菲爾發(fā)酵乳具有緩解乳糖不耐癥、調(diào)節(jié)胃腸道功能、刺激免疫系統(tǒng)和加速膽固醇代謝等功效[3]。開菲爾有很多潛在功效,為今天備受青睞的健康食品開發(fā)提供新的思路。用開菲爾菌加工紫蘇籽粕發(fā)酵乳,可以得到效用更高,且具有紫蘇特有香味的風(fēng)味發(fā)酵乳。

    目前,對(duì)紫蘇抗氧化性的相關(guān)研究很多,但大多集中在其根、莖、葉中[4-7]。從自由基這方面來研究食物的營養(yǎng)與食療效用,具備重要的理論意義和普遍的應(yīng)用價(jià)值。羥基自由基(·OH)是活性氧中最活潑的自由基之一,對(duì)人體的毒性相當(dāng)大,可以直接損傷各種生物膜,使得多種疾病并發(fā),從而危及生物體[8]。DPPH(分子式C12H12N6O6,Mr=394.32)自由基是一種人工合成的有機(jī)自由基,性質(zhì)穩(wěn)定。其乙醇溶液呈深紫色,并在515~520 nm有最大吸收峰。在DPPH溶液中加入自由基清除劑,深紫色溶液褪成黃色,其褪色程度與自由基所接受的電子數(shù)量成定量關(guān)系,因此能夠通過溶液吸光度的變化來進(jìn)行定量分析[9]。試驗(yàn)以提油后的紫蘇籽粕為原料,經(jīng)低溫超微粉碎,用開菲爾菌作為發(fā)酵劑,制備紫蘇發(fā)酵乳,以·OH清除率、DPPH自由基清除率為指標(biāo),研究紫蘇發(fā)酵乳體外抗氧化活性的規(guī)律,為高效利用紫蘇籽粕,開發(fā)品質(zhì)穩(wěn)定性較高的紫蘇健康食品提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料、試劑與儀器

    1.1.1 材料與試劑

    紫蘇籽:洮南市百群食品科技有限公司;純牛奶:廣澤乳業(yè)有限公司;纖維素酶:河南祥盛食品配料有限公司;開菲爾菌:北京川秀科技有限公司;DPPH:上海源葉生物科技有限公司;無水乙醇:北京化工廠,分析純;硫酸亞鐵:天津市光復(fù)科技發(fā)展有限公司,分析純;過氧化氫:開原化學(xué)試劑一廠,分析純;水楊酸:天津市華東試劑廠,分析純。

    1.1.2 主要儀器設(shè)備

    4A220-50-06超臨界萃取裝置,江蘇南通市華安超臨界萃取有限公司;SQW-601三清超微粉碎機(jī),濟(jì)南易辰超微粉碎技術(shù)有限公司;LBJ-625A食品粉碎器,廣東洛貝電子科技有限公司;HH-2K4二列四孔水浴,鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;Agilent Cary 60 UV-Vis紫外-可見分光光度計(jì),美國安捷倫科技公司。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 開菲爾菌擴(kuò)大培養(yǎng)

    用蒸餾水沖洗開菲爾菌,至其潔凈,置于玻璃杯中,向其中倒入純牛奶,漫過菌種,蓋上紗布,套上橡皮筋,置于恒溫培養(yǎng)箱中,30℃培養(yǎng)24 h。

    1.2.2 原料預(yù)處理

    紫蘇籽經(jīng)超臨界CO2技術(shù)(壓力:25 MPa,溫度:40℃,流量:20 L/h,1 L萃取釜萃取90 min)萃取紫蘇籽油,剩下的紫蘇籽粕經(jīng)超微粉碎處理,冷凍保藏。將適量紫蘇粕置于粉碎器中粉碎,然后過80目篩,冷藏。在燒杯中加入20 g紫蘇籽粕,再用200 g水將其溶解,并添加一定量的纖維素酶,攪拌均勻,置于60℃水浴鍋中酶解。3 h后取出,靜置。

    1.2.3 單因素與正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)

    取一定量的紫蘇酶解液,再加入開菲爾菌、蔗糖,加牛奶至50 mL,攪拌均勻,于25℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一定時(shí)間,取出后將發(fā)酵乳過濾,回收開菲爾菌、重復(fù)利用。控制蔗糖添加量為12%,酶解液含量為25%,培養(yǎng)時(shí)間12 h,開菲爾菌接種量分別設(shè)為4%、6%、8%、10%、12%,培養(yǎng)紫蘇發(fā)酵乳??刂崎_菲爾菌接種量為8%,酶解液含量為25%,培養(yǎng)時(shí)間12 h,蔗糖添加量分別為8%、10%、12%、14%、16%,培養(yǎng)紫蘇發(fā)酵乳??刂崎_菲爾菌接種量為8%,蔗糖添加量為12%,培養(yǎng)時(shí)間12 h,酶解液含量分別為15%、20%、25%、30%、35%,培養(yǎng)紫蘇發(fā)酵乳。控制開菲爾菌接種量為8%,蔗糖添加量為12%,酶解液含量為25%,培養(yǎng)時(shí)間分別設(shè)為8 h、10 h、12 h、14 h、16 h,培養(yǎng)紫蘇發(fā)酵乳。由于各因素條件在實(shí)際發(fā)酵酸奶時(shí)會(huì)相互影響,所以根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,設(shè)計(jì)正交試驗(yàn),通過正交試驗(yàn)確定紫蘇發(fā)酵乳體外抗氧化活性的最佳工藝組合。

    1.2.4 抗氧化活性測(cè)定

    (1)羥基自由基清除率的測(cè)定。

    稱取0.1668 g七水硫酸亞鐵顆粒,用蒸餾水定容至100 mL,得到濃度為6 mmol/L的硫酸亞鐵溶液;量取30%的過氧化氫0.06 mL加水配制成100 mL的6 mmol/L的雙氧水溶液;稱取0.0829 g水楊酸用無水乙醇溶解,定容至100 mL,得到6 mmol/L的水楊酸溶液。

    參考彭惠惠[10]等人的方法,在1.5 mL離心管中依次加入6 mmol/L硫酸亞鐵溶液300μL、紫蘇發(fā)酵乳樣品300μL、6 mmol/L過氧化氫溶液300μL,搖勻,靜置10 min后再加入6 mmol/L水楊酸溶液300μL,搖勻,靜置30 min,然后在510 nm波長下測(cè)其吸光度。做平行試驗(yàn)重復(fù)測(cè)定3次。

    式中:A0為不加發(fā)酵乳樣品液的本底吸光度;AS為加入發(fā)酵乳樣品液反應(yīng)后的吸光度;Ax為不加水楊酸溶液的吸光度。

    (2)DPPH自由基清除率的測(cè)定[11]。

    準(zhǔn)確稱取0.8 mg DPPH,用無水乙醇定容于10 mL容量瓶中,得到濃度為0.2 mmol/L的DPPH溶液。利用DPPH溶液在517 nm下具有最大的紫外吸收峰,測(cè)定加入紫蘇發(fā)酵乳樣品后A517 nm吸收的下降表示其清除DPPH自由基的能力。

    取400μL的發(fā)酵乳樣品于1.5 mL離心管中,再加入2×10-4mol/L的DPPH無水乙醇溶液400μL,混勻,室溫避光反應(yīng)30 min,然后測(cè)定波長517 nm處的吸光度Ai,同時(shí)測(cè)定400μL發(fā)酵乳樣品液+400μL無水乙醇混合后的吸光度Ai和400μL DPPH無水乙醇溶液+400μL無水乙醇的吸光度A0。做平行試驗(yàn)重復(fù)測(cè)定3次。

    1.3 數(shù)據(jù)分析與處理

    圖表中數(shù)據(jù)為三次平行試驗(yàn)檢測(cè)數(shù)據(jù)的平均值,誤差為標(biāo)準(zhǔn)偏差。所得數(shù)據(jù)用Microsoft Excel軟件進(jìn)行計(jì)算、制圖整理,用SPSS17.0軟件進(jìn)行方差分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 紫蘇粕發(fā)酵乳單因素試驗(yàn)結(jié)果與分析

    2.1.1 開菲爾菌接種量對(duì)紫蘇粕發(fā)酵乳體外抗氧化性的影響

    圖1 接種量對(duì)紫蘇粕發(fā)酵乳體外抗氧化性的影響

    由圖1可得,未接種開菲爾菌的紫蘇發(fā)酵乳與開菲爾菌接種量為4%的紫蘇發(fā)酵乳的羥基自由基清除率相差不大,DPPH自由基清除率也相差不大。接種后,隨著接種量的增加,發(fā)酵乳的·OH清除率和DPPH自由基清除率均急劇提高再降低。當(dāng)開菲爾菌接種量為10%時(shí),·OH清除率最高,為(95.31±25.96)%;當(dāng)開菲爾菌接種量為8%時(shí),紫蘇發(fā)酵乳的DPPH自由基清除率最高,為(89.47±5.16)%。推測(cè)可能是因?yàn)樽咸K發(fā)酵乳中接入的開菲爾菌對(duì)其抗氧化性有協(xié)同提高作用。試驗(yàn)選取開菲爾菌接種量6%、8%和10%作為正交試驗(yàn)中該因素的3個(gè)水平。

    2.1.2 加糖量對(duì)紫蘇粕發(fā)酵乳體外抗氧化性的影響

    圖2 加糖量對(duì)紫蘇粕發(fā)酵乳體外抗氧化性的影響

    蔗糖具有還原性可被氧化,具有一定的抗氧化能力,所以選取該因素進(jìn)行單因素試驗(yàn)。由圖2可得,試驗(yàn)制備的發(fā)酵乳用開菲爾作為發(fā)酵劑,在發(fā)酵過程中產(chǎn)生大量乳酸而導(dǎo)致產(chǎn)品口感過于酸,課題組經(jīng)過反復(fù)試驗(yàn),確定了加糖量的適宜范圍為10%左右,為進(jìn)一步研究加糖量對(duì)發(fā)酵乳體外抗氧化性的影響,單因素?cái)U(kuò)大了加糖量的范圍至16%。隨著加糖量的增多,紫蘇發(fā)酵乳的·OH清除率急劇增大又減小,當(dāng)加糖量為12%時(shí),·OH清除率最高:(95.52±2.53)%,加糖量從12%增至14%時(shí),·OH清除率迅速降低,加糖量增至16%時(shí),與加糖量為14%時(shí)相比略有提高,但相差不大;隨著加糖量的增多,紫蘇發(fā)酵乳的DPPH自由基清除率迅速增大又漸趨平緩,加糖量為14%時(shí),DPPH自由基清除率最高,為(71.79±3.16)%。所以猜測(cè),加糖量較多時(shí)可以提高紫蘇發(fā)酵乳的抗氧化性。試驗(yàn)選取加糖量12%、14%和16%作為正交試驗(yàn)中該因素的3個(gè)水平。

    2.1.3 酶解液含量對(duì)紫蘇粕發(fā)酵乳體外抗氧化性的影響

    圖3 酶解液含量對(duì)紫蘇粕發(fā)酵乳體外抗氧化性的影響

    由圖3可得,隨著發(fā)酵乳中紫蘇酶解液含量的增加,紫蘇發(fā)酵乳的·OH清除率急劇增大又迅速減小,當(dāng)紫蘇酶解液含量為25%時(shí),·OH清除率最高,為(90.94±0.26)%;酶解液的含量從15%升到20%時(shí),紫蘇發(fā)酵乳的DPPH自由基清除率迅速提高了將近35%,之后隨著酶解液含量的增加,DPPH清除率逐漸提高再降低,當(dāng)紫蘇酶解液含量為30%時(shí),DPPH清除率最高,為(80.20±0.27)%。所以推測(cè)紫蘇酶解液的加入可以提升紫蘇發(fā)酵乳的抗氧化性。試驗(yàn)選取酶解液含量25%、30%和35%作為正交試驗(yàn)中該因素的3個(gè)水平。

    2.1.4 培養(yǎng)時(shí)間對(duì)紫蘇粕發(fā)酵乳體外抗氧化性的影響

    由圖4可得,隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長,紫蘇發(fā)酵乳的·OH清除率迅速升高又急劇降低,當(dāng)培養(yǎng)時(shí)間為12 h時(shí),·OH清除率最高,為(45.75±3.57)%;培養(yǎng)時(shí)間從8 h延長至10 h,紫蘇發(fā)酵乳的DPPH自由基清除率急劇增加,之后隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長,DPPH自由基清除率緩緩降低,所以,當(dāng)培養(yǎng)時(shí)間為10 h時(shí),DPPH自由基清除率最高,為(73.87±0.59)%。在發(fā)酵過程中,開菲爾菌也會(huì)吸收營養(yǎng)、生長擴(kuò)大,所以推測(cè)隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長,大量營養(yǎng)物質(zhì)被開菲爾菌代謝,影響了紫蘇發(fā)酵乳的抗氧化活性。試驗(yàn)選取培養(yǎng)時(shí)間10 h、12 h和14 h作為正交試驗(yàn)中該因素的3個(gè)水平。

    圖4 培養(yǎng)時(shí)間對(duì)紫蘇粕發(fā)酵乳體外抗氧化性的影響

    2.2 正交試驗(yàn)結(jié)果及分析

    由于各因素對(duì)紫蘇發(fā)酵乳體外抗氧化活性的影響并不是單一線性的,實(shí)際上是受到開菲爾菌接種量、加糖量、紫蘇酶解液含量和培養(yǎng)時(shí)間4個(gè)因素交叉影響,為了考察這4個(gè)因素對(duì)紫蘇發(fā)酵乳抗氧化活性的交互影響,設(shè)計(jì)了正交試驗(yàn)(L9(34))進(jìn)行實(shí)驗(yàn),以紫蘇發(fā)酵乳的羥基自由基清除率和DPPH自由基清除率為試驗(yàn)指標(biāo),正交試驗(yàn)因素和正交試驗(yàn)結(jié)果及極差分析見表1、表2,·OH清除率和DPPH自由基清除率的方差分析見表3、表4。

    由表2可得,在正交試驗(yàn)的各因素中,酶解液含量、培養(yǎng)時(shí)間、開菲爾菌接種量、加糖量對(duì)紫蘇發(fā)酵乳的抗氧化活性影響依次增大。通過比較指標(biāo)總和與各因素的關(guān)系可看出影響紫蘇發(fā)酵乳抗氧化活性的最佳的工藝條件組合是A3B1C2D1,即開菲爾菌接種量10%,加糖量12%,紫蘇酶解液含量30%,培養(yǎng)時(shí)間10 h。

    對(duì)正交試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行方差分析(P<0.05),由表3可得,在正交試驗(yàn)的各因素中,加糖量對(duì)紫蘇發(fā)酵乳的羥基自由基清除率有顯著影響(P<0.05)。由表4可得,在正交試驗(yàn)的各因素中,開菲爾菌接種量、加糖量對(duì)紫蘇發(fā)酵乳的DPPH自由基清除率有顯著影響(P<0.05)。

    表1 正交試驗(yàn)因素及水平

    2.3 驗(yàn)證試驗(yàn)及結(jié)果

    將正交試驗(yàn)所得的最佳工藝條件組合進(jìn)行驗(yàn)證,在開菲爾菌接種量10%,加糖量12%,紫蘇酶解液含量30%,培養(yǎng)時(shí)間10 h的工藝條件下制備紫蘇發(fā)酵乳,測(cè)定其·OH清除率、DPPH自由基清除率,做三組平行試驗(yàn)進(jìn)行驗(yàn)證,所得·OH清除率平均值、DPPH自由基清除率平均值分別為(97.64±0.63)%和(97.90±0.69)%。所以,開菲爾菌接種量10%,加糖量12%,酶解液含量30%,培養(yǎng)時(shí)間10 h即為比較穩(wěn)定的較優(yōu)生產(chǎn)條件。

    3 結(jié)論

    以提油之后的紫蘇籽粕為原料,以開菲爾菌發(fā)酵紫蘇酶解液,以羥基自由基(·OH)清除率、DPPH自由基清除率為考察指標(biāo),采用單因素法和正交試驗(yàn)法,對(duì)紫蘇發(fā)酵乳的體外抗氧化活性工藝進(jìn)行優(yōu)化,研究了開菲爾菌接種量、加糖量、紫蘇酶解液含量、培養(yǎng)時(shí)間對(duì)紫蘇發(fā)酵乳的羥基自由基清除率、DPPH自由基清除率的影響,結(jié)果表明:加糖量對(duì)紫蘇發(fā)酵乳的羥基自由基清除率有顯著影響(P<0.05),開菲爾菌接種量、加糖量對(duì)紫蘇發(fā)酵乳的DPPH清除率有顯著影響(P<0.05)。所以,紫蘇發(fā)酵乳的抗氧化活性的最佳生產(chǎn)工藝條件為:開菲爾菌接種量10%,加糖量12%,紫蘇酶解液含量30%,培養(yǎng)時(shí)間10h,在此條件下所得紫蘇發(fā)酵乳的抗氧化活性較高。

    表2 L9(34)的正交試驗(yàn)結(jié)果及極差分析

    表3 正交試驗(yàn)羥基清除率方差分析

    表4 正交試驗(yàn)DPPH清除率方差分析

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