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    豬肺炎支原體纖毛黏附因子P97和F7-CTB對O型口蹄疫滅活疫苗的免疫增強(qiáng)作用

    2019-07-22 01:32:45郭蕓蕓張雪寒劉茂軍
    江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2019年11期
    關(guān)鍵詞:口蹄疫

    郭蕓蕓 張雪寒 劉茂軍

    摘要:旨在研究豬肺炎支原體(Mycoplasma hyopneumoniae,簡稱Mhp)纖毛黏附因子P97以及F7鞭毛蛋白(flagellin,簡稱F)-霍亂毒素B亞基(cholera toxin B subunit,簡稱CTB)2種重組蛋白對口蹄疫(foot-and-mouth disease,簡稱FMD)滅活疫苗的免疫增強(qiáng)作用。通過體外表達(dá)獲得pCold-F7-CTB、pET32a-P97-R1 2種重組蛋白,用間接酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(enzyme-linked immunosorbent assay,簡稱ELISA)方法檢測pCold-F7-CTB蛋白的生物學(xué)活性,將重組蛋白分別與口蹄疫病毒(foot-and-mouth disease virus,簡稱FMDV)滅活抗原、口蹄疫滅活疫苗混合制備,皮下或腹腔接種Balb/c小鼠,共免疫2次,間隔3周。分別于免疫前、免疫后21、35、49 d采血,49 d后無菌摘取脾臟。采用阻斷ELISA的方法檢測小鼠血清口蹄疫O型病毒免疫球蛋白(IgG)抗體滴度,用流式細(xì)胞術(shù)檢測脾淋巴細(xì)胞亞型比例,以評估免疫效力。十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,簡稱SDS-PAGE)和蛋白質(zhì)印跡法(Western Blot)分析結(jié)果表明,2種重組蛋白成功表達(dá)。用GMl(神經(jīng)節(jié)苷脂)-ELISA方法驗(yàn)證pCold-F7-CTB的生物學(xué)活性,發(fā)現(xiàn)融合蛋白F7-CTB保留了與GMl的結(jié)合能力。小鼠免疫試驗(yàn)結(jié)果表明,經(jīng)皮下注射接種后,單獨(dú)口蹄疫病毒滅活抗原組沒有產(chǎn)生明顯的抗體水平,而F7-CTB免疫增強(qiáng)劑組比單獨(dú)口蹄疫病毒滅活抗原組的IgG滴度更高。在試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),當(dāng)重組蛋白與口蹄疫滅活疫苗聯(lián)合使用時,血清中的IgG滴度明顯增高,CD3+CD8+T淋巴細(xì)胞比值上升;P97和F7-CTB混合使用對口蹄疫滅活疫苗的免疫增強(qiáng)效果最佳。可以初步得出,免疫增強(qiáng)劑P97和F7-CTB具有協(xié)同作用,皮下注射可顯著提高FMD的特異性IgG水平,CD3+CD8+T淋巴細(xì)胞比值升高,顯示其具有良好的應(yīng)用前景。

    關(guān)鍵詞:口蹄疫;P97;F7-CTB;免疫增強(qiáng)劑

    中圖分類號: S855.3? 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A? 文章編號:1002-1302(2019)11-0204-06

    口蹄疫(foot and mouth disease,簡稱FMD)是由口蹄疫病毒(foot and mouth disease virus,簡稱FMDV)引起的偶蹄動物的一種急性、熱性、高度接觸性傳染病,被世界動物衛(wèi)生組織(OIE)列為必須報告的傳染病之一[1]。疫苗接種是預(yù)防和控制口蹄疫最可靠和有效的手段[2]。目前滅活口蹄疫疫苗的使用仍最為廣泛[3-4]?,F(xiàn)有的口蹄疫疫苗存在免疫后抗體產(chǎn)生慢、抗體水平低和持續(xù)期短的缺點(diǎn)[5],因此,本研究以增強(qiáng)免疫效力為目的,嘗試研制一種新型免疫增強(qiáng)劑。

    結(jié)合豬肺炎支原體(Mycoplasma hyopneumoniae,簡稱Mhp)的免疫學(xué)特點(diǎn),R1區(qū)作為Mhp纖毛黏附因子p97黏附纖毛的主要決定區(qū),主要引起黏膜免疫和細(xì)胞免疫[6]。同時也是少數(shù)被證明具備免疫保護(hù)能力的抗原之一[7-8]。鞭毛蛋白作為 TLR-5受體激動劑,能誘導(dǎo)強(qiáng)烈、廣泛的免疫反應(yīng)[9]。

    鞭毛蛋白(flagellin,簡稱F)佐劑的效果在流感病毒[10-11]、結(jié)核分枝桿菌[12]和鼠疫菌[13]的研究中已經(jīng)被多次確認(rèn),鞭毛蛋白是較好的載體及佐劑。Albert等在研制亞單位疫苗時,將結(jié)腸彎曲菌的鞭毛蛋白的FlaA片段與麥芽糖結(jié)合蛋白(maltose-binding protein,簡稱MBP)進(jìn)行融合表達(dá),得到了MBP-F1aA重組蛋白,通過口服途徑免疫,結(jié)果顯示,對照組小鼠腸道的細(xì)菌完全定植,MBP-F1aA免疫組有71.4%的小鼠有細(xì)菌定植,顯示該重組蛋白在一定程度上抵御了結(jié)腸彎曲菌的感染[14]。Delaney等用flagellin-L1R(FR)重組蛋白(將牛痘病毒L1R抗原序列連到細(xì)菌鞭毛蛋白N端)免疫小鼠,結(jié)果能產(chǎn)生與天然L1R相互作用的抗體,F(xiàn)R重組蛋白更能促進(jìn)抗原特異免疫球蛋白(IgG)的產(chǎn)生,加強(qiáng)免疫后可產(chǎn)生有效的保護(hù)性免疫應(yīng)答,對小鼠能提供100%的保護(hù)[15]。大腸桿菌霍亂毒素(CT)具有黏膜免疫佐劑活性,是細(xì)菌類毒素,研究發(fā)現(xiàn),CT的B亞單位單獨(dú)作用,表現(xiàn)為無毒性,但仍可保持較強(qiáng)的佐劑活性,能刺激機(jī)體產(chǎn)生強(qiáng)烈的黏膜系統(tǒng)免疫應(yīng)答,調(diào)節(jié)Th1、Th2型細(xì)胞反應(yīng)的細(xì)胞因子的表達(dá)[16]。Hou等將霍亂毒素B亞基(cholera toxin B subunit,簡稱CTB)作為黏膜佐劑,與HIV-1DNA(人免疫缺陷病毒-1的DNA)疫苗聯(lián)合后免疫小鼠,可誘導(dǎo)其產(chǎn)生高水平的Thl和Th2型細(xì)胞因子、炎癥細(xì)胞因子和趨化因子,同時提高血清中Env蛋白的IgG抗體水平[17]。Miyata等將CTB與蛋白MSP1-19耦合,可以提高血清和支氣管肺泡灌洗液中的IgG抗體水平[18]。由以上結(jié)果可以看出,CTB無論是作為黏膜免疫佐劑還是抗原遞送載體,都有良好的免疫增強(qiáng)作用。本研究將F7和CTB基因進(jìn)行連接后重組表達(dá),并與P97重組蛋白聯(lián)合或分別單獨(dú)作用,從體液免疫及細(xì)胞免疫角度來評估其免疫應(yīng)答,以期改善傳統(tǒng)疫苗的缺點(diǎn)。

    1 材料與方法

    1.1 菌株和質(zhì)粒

    PCold Ⅰ-F7、pUC57-CTB質(zhì)粒均由由農(nóng)業(yè)部獸用生物制品工程技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室保存;pET32a-P97-R1由江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院獸醫(yī)研究所豬病研究室惠贈;大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞Trans5α和BL21(DE3),購自TransGen公司。

    1.2 主要試劑

    限制性核酸內(nèi)切酶EcoR Ⅰ、Hind Ⅲ、Sal Ⅰ、Xba Ⅰ和T4 DNA連接酶,購自TaKaRa公司;蛋白純化試劑盒,購自GE公司;辣根過氧化物酶(HRP)-小鼠抗組氨酸(histidine,簡稱His)標(biāo)簽、HRP-羊抗鼠-IgG和HRP-羊抗兔-IgG,購自博士德生物工程有限公司;CTB蛋白、兔源抗大腸桿菌不耐熱性腸毒素(Heat-labile enterotoxin B subunit,簡稱LTB)抗體、神經(jīng)節(jié)苷脂1(Ganglioside,簡稱GM1)和胎牛血清,購自Sigma公司;PE-CyTM7 Hamster Anti-Mouse CD3e、PE Rat Anti -Mouse CD4和FITC Rat Anti-Mouse CD8a,購自美國BD公司;單組分3,3′,5,5′-四甲基聯(lián)苯胺(3,3′,5,5′-Tetra-methylbenzidine,簡稱TMB)顯色液Ⅰ、無血清培養(yǎng)基RPM 1640、Triton x-114,購自南京助研生物技術(shù)有限公司;MONTANIDE ISA 206 VG,購自賽彼科(上海)特殊化學(xué)品有限公司;內(nèi)毒素檢測試劑盒,購自Thermo公司;口蹄疫O型液相阻斷酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(enzyme-linked immunosorbent assay,簡稱ELISA)抗體檢測試劑盒,購自中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院蘭州獸醫(yī)研究所。

    1.3 試驗(yàn)動物

    6周齡Balb/c小鼠,購于揚(yáng)州大學(xué)醫(yī)學(xué)院。

    1.4 pCold I-F7-CTB重組質(zhì)粒的構(gòu)建

    將筆者所在實(shí)驗(yàn)室保存的克隆質(zhì)粒pUC57-CTB用限制性內(nèi)切酶Sal Ⅰ、Xba Ⅰ酶切,獲得目的基因CTB,將其插入到表達(dá)載體pCold I-F7相應(yīng)的酶切位點(diǎn)中,構(gòu)建重組質(zhì)粒pCold I-F7-CTB。

    1.5 重組菌的構(gòu)建

    將重組質(zhì)粒pCold-F7-CTB、pET32a-P97-R1轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21(DE3),涂布于LB平板(含100 μg/mL氨芐青霉素)上。過夜培養(yǎng),挑取單菌落,酶切鑒定,獲得重組菌株pCold I-F7-CTB/BL21(DE3)和pET32a-P97-R1/BL21(DE3)。

    1.6 重組蛋白的表達(dá)

    1.6.1 重組菌的誘導(dǎo)表達(dá) 將上述重組菌于37 ℃繼續(xù)快速培養(yǎng)至D600 nm=0.4~0.6,加異丙基硫代半乳糖苷(isopropyl β-D-thiogalactoside,簡稱IPTG)至終濃度為1 mmol/L(同時設(shè)空載體對照組);將pCold I-F7-CTB/BL21菌株于 16 ℃、18~24 h誘導(dǎo)表達(dá),并將pET32a-P97-R1/BL21菌株于37 ℃、5 h誘導(dǎo)表達(dá),收集細(xì)菌。

    1.6.2 十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,簡稱SDS-PAGE)鑒定重組蛋白質(zhì)的表達(dá) 各取3 mL上述誘導(dǎo)培養(yǎng)物,于12 000 r/min離心1 min,收集菌體,用1/10體積的 0.01 mol/L 磷酸緩沖鹽溶液(簡稱PBS,pH值為7.4)重懸菌體,在冰水浴中超聲裂解至菌體全部破碎,取部分超聲裂解菌體作為全菌蛋白質(zhì),將剩余部分離心分離菌體上清液和沉淀。通過SDS-PAGE分別檢測全菌、上清液和沉淀,分析重組蛋白的表達(dá)形式。

    1.7 重組蛋白的純化和蛋白質(zhì)印跡法(Western Blot)分析

    對于2種誘導(dǎo)重組菌pCold I-F7-CTB/BL21(DE3)和pET32a-P97-R1/BL21(DE3),參照GE公司的His TrapTM HP說明書,對上清液進(jìn)行純化。用SDS-PAGE分析純化效果,同時用純化后的蛋白進(jìn)行Western Blot分析,通過RC DC Protein Assay檢測純化蛋白的濃度,并用Triton X-114法去內(nèi)毒素,用顯色法檢測內(nèi)毒素含量,具體操作參照使用說明書。

    1.8 GM1-酶聯(lián)免疫吸附

    用100 μL pH值為9.6的0.05 mol/L碳酸鹽緩沖液(含2 μg神經(jīng)節(jié)苷脂GM1)包被96孔酶聯(lián)板,于4 ℃過夜;用 200 μL/孔 的2%牛血清白蛋白(BSA)于37 ℃封閉2 h;每孔加入12.5 ng pCold-F7-CTB蛋白,同時設(shè)陰、陽性對照,于37 ℃孵育2 h;加入以1 ∶ 1 000體積比稀釋的兔源抗LTB,于37 ℃孵育2 h;加入以1 ∶ 1 000體積比稀釋的HRP-羊抗 兔-IgG,于37 ℃孵育1 h;用3,3′,5,5′-四甲基聯(lián)苯胺(TMB)顯色;加入終止液,測定D450 nm。

    1.9 小鼠免疫接種

    1.9.1 免疫試驗(yàn)1 將6周齡的Balb/c小鼠隨機(jī)分成4組,5只/組,皮下注射配制的液體試劑,每只注射0.1 mL。配制方法:按照5 μg/只的蛋白量與口蹄疫病毒(foot-and-mouth disease virus,簡稱FMDV)滅活抗原混合制備,具體分組和免疫劑量見表1。共免疫2次,間隔3周。分別于免疫前與免疫后21、35、49 d在小鼠眼眶靜脈叢采血,測定抗體水平。

    1.9.2 免疫試驗(yàn)2 將6周齡的Balb/c小鼠隨機(jī)分成8組,5只/組,按照5 μg/只的蛋白量與FMDV滅活抗原混合后,再按1 ∶ 1的比例添加MONTANIDE ISA 206 VG制備口蹄疫滅活疫苗。比較P97、F7-CTB 2種重組蛋白單獨(dú)添加以及混合添加對口蹄疫滅活疫苗的免疫增強(qiáng)作用,同時比較皮下、腹腔2種免疫途徑的差異。具體分組和免疫劑量見表2。共免疫2次,間隔3周。分別于免疫前、免疫后21、35、49 d在小鼠眼眶靜脈叢采血,測定抗體水平。

    1.10 血清中口蹄疫O型病毒抗體IgG的檢測

    用口蹄疫O型液相阻斷ELISA抗體檢測試劑盒進(jìn)行檢測,分別于免疫前與免疫后21、35、49 d采集血液,分離血清,檢測方法參照具體說明書。

    1.11 流式細(xì)胞術(shù)檢測脾淋巴細(xì)胞CD3+、CD4+和CD8+亞型比例于首免 49 d 時,取 1×106/mL 小鼠脾臟淋巴細(xì)胞加入1.5 mL 無菌離心管中,用1 mL 0.01 mol/L PBS,于1 500 r/min離心5 min,棄去上清,用溶有PE-CyTM7 Hamster Anti-Mouse CD3e、PE Rat Anti-Mouse CD4和FITC Rat Anti-Mouse CD8a熒光抗體的300 μL熒光洗液[100 mL,0.01 mol/L PBS,pH值為7.4,用2% N-溴代琥珀酰亞胺(NBS)]重懸細(xì)胞,充分混勻后于4 ℃避光孵育30 min,用 0.01 mol/L PBS洗滌2次,每次1 mL,于1 500 r/min離心 5 min,棄上清,將管底細(xì)胞用500 μL熒光保存液(100 mL,0.01 mol/L PBS,pH值為7.4,2%葡萄糖,0.1% NaN3)重懸,利用流式細(xì)胞儀(BD AccuriTM C6 Plus)檢測10 000個細(xì)胞中CD3+、CD4+和CD8+陽性細(xì)胞數(shù)。

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