劉 靜,李湘利,魏海香,趙 敏,薛麗萍,王雪萍
(濟寧學院生命科學與工程系,濟寧市特色農產品高值化加工工程技術研究中心,山東曲阜 273155)
雞樅菌(Termitomycesalbuminosus)又稱傘把菇、雞腳麟菇,為擔子菌綱口蘑科白蟻菌屬[1],菌柄具有纖維結構、色澤似雞肉,食之有雞肉香味,故名雞樅[2]。雞樅菌主要分布于亞非等熱帶及南太平洋島嶼的亞熱帶地區(qū),我國主產于福建、臺灣和云貴川等地,是一種營養(yǎng)豐富、風味獨特的食用菌[3],其子實體蛋白質含量極高,超過諸多食用菌蛋白質含量,且人體必需氨基酸占總量的15.15%[4]。雞樅菌還有較高的醫(yī)療保健效果,可療痔止血、健脾和胃,抵制癌細胞,降低血糖,抗衰老、增強機體免疫力等[5]。
雞樅菌 購于金鄉(xiāng)縣聯(lián)盛菌業(yè)科技有限公司,采后削根于37 ℃烘干至恒重后粉碎,過40目篩備用;考馬斯亮藍G250 國藥集團化學試劑有限公司;牛血清白蛋白(BR) 上海伯奧生物科技有限公司;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH) Sigma分裝;2,2′-聯(lián)氮基-雙(3-乙基苯丙噻唑啉-6-磺酸)二銨鹽(ABTS) Amresco分裝;焦性沒食子酸、過硫酸鉀 天津市大茂化學試劑廠;Tris(三氨基甲烷) 天津市博迪化工有限公司。
XH-300B型電腦微波超聲波組合合成/萃取儀 北京祥鵠科技發(fā)展有限公司;723PC分光光度計 上海菁華科技儀器有限公司;FA2004N電子天平 上海精密科技儀器有限公司;FCD2000恒溫鼓風干燥箱 上?,槴\實驗設備有限公司;TDL-60B低速臺式離心機 長沙英泰公司;PHS-3C pH計 上海儀電科學儀器股份有限公司;LCJ-10冷凍干燥機 北京四環(huán)科學儀器長;FW135中草藥粉碎機 天津市泰斯特儀器有限公司。
1.2.1 蛋白提取率的測定 采用考馬斯亮藍G250法測定蛋白質含量。分別吸取0.1 mg/mL牛血清白蛋白標準溶液0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mL于試管中,補加蒸餾水至1.0 mL后,加入考馬斯亮藍G250試劑5.0 mL后搖勻靜置3 min,于595 nm測定吸光度,以吸光度為縱坐標,牛血清白蛋白含量(mg/mL)為橫坐標繪制標準曲線,所得回歸方程為y=0.0018x+0.0246,R2=0.9916,線性范圍0~300 μg/mL,計算雞樅菌蛋白的提取總量(m1)。采用凱氏定氮法GB5009.5-2010測定雞樅菌粗蛋白含量(m0),計算雞樅菌蛋白提取率[21]。
式(1)
1.2.2 雞樅菌粗蛋白提取工藝流程 雞樅菌粉→超聲波輔助堿法提取→離心(3000 r/min,15 min)→取上清液→測定蛋白提取率→酸沉(1 mol/L的HCl溶液調至pI 4.0)→離心(4000 r/min,15 min)→取沉淀→水洗(至pH7.0)→減壓干燥(-80 ℃,1.4 MPa,24 h)→粗蛋白粉。
1.2.3 單因素實驗設計
1.2.3.1 超聲功率對雞樅菌蛋白提取率的影響 在超聲時間1.0 h,超聲溫度60 ℃,料液比1∶30 g/mL,用pH8的NaOH溶液提取,考察超聲功率(300、400、500、600、700 W)對雞樅菌蛋白提取率的影響。
1.2.3.2 超聲溫度對雞樅菌蛋白提取率的影響 在超聲時間1.0 h,超聲功率500 W,料液比1∶30 g/mL,用pH8的NaOH溶液提取,考察超聲溫度(40、50、60、70、80 ℃)對雞樅菌蛋白提取率的影響。
1.2.3.3 pH對雞樅菌蛋白提取率的影響 在超聲時間1.0 h,超聲溫度70 ℃,超聲功率500 W,料液比1∶30 g/mL,用0.1 mol/L的NaOH調整提取液pH,考察pH(8、9、10、11、12)對雞樅菌蛋白提取的影響。
1.2.3.4 料液比對雞樅菌蛋白提取率的影響 在超聲時間1.0 h,超聲溫度70 ℃,超聲功率500 W,用pH11的NaOH溶液提取,考察料液比(1∶20、1∶25、1∶30、1∶35、1∶40 g/mL對雞樅菌蛋白提取率的影響。
1.2.3.5 超聲時間對雞樅菌蛋白提取率的影響 在超聲溫度70 ℃,超聲功率500 W,用pH11的NaOH溶液提取,料液比1∶25 g/mL,考察超聲時間(0.5、1.0、1.5、2.0、2.5 h)對雞樅菌蛋白提取率的影響。
1.2.4 正交實驗 根據(jù)單因素實驗結果,以蛋白提取率為指標,選取超聲功率(A)、超聲溫度(B)、pH(C)、超聲時間(D)四個因素設計L9(34)正交實驗,實驗因素與水平見表1。
表1 正交實驗因素與水平表Table 1 Factors and levers of orthogonal experiment
1.2.5 超聲波輔助與常規(guī)提取雞樅菌粗蛋白的比較 參照文獻[21]的方法,在料液比1∶25 g/mL、pH11、溫度70 ℃下提取1.5 h,提取雞樅菌粗蛋白,與正交實驗最優(yōu)實驗結果對比,比較超聲波輔助提取與常規(guī)方法的提取效果。
1.2.6 自由基清除能力的測定
1.2.6.1 ABTS+·自由基清除能力的測定 用2.45 mmol/L過硫酸鉀配制備7 mmol/L ABTS+·儲備液,避光靜置12 h。用10 mmol/L磷酸緩沖液(pH7.4)稀釋ABTS+·儲備液,使其在734 nm吸光值為0.7±0.02;將雞樅菌蛋白稀釋成20、40、60、80、100、120 mg/L,吸取3 mL蛋白稀釋液于試管中,加入12 mL ABTS+·測試液,搖勻后室溫避光反應5 min,以95%乙醇為參比,于734 nm測吸光度(A1);同時測定以95%乙醇代替雞樅菌蛋白提取液的吸光度(A0),以相同濃度梯度VC作對照,計算ABTS+·清除率[22]。
式(2)
1.2.6.2 DPPH·自由基清除能力的測定 將雞樅菌蛋白稀釋成10、20、30、40、50、60 mg/L,吸取雞樅菌蛋白稀釋液6 mL于試管中,加入6 mL 0.01 mmol/L DPPH·溶液,搖勻室溫避光反應30 min,以無水乙醇為參比,于517 nm測定吸光度(A1);同時測定以6 mL無水乙醇代替雞樅菌蛋白提取液的吸光度(A2),以6 mL無水乙醇代替DPPH的吸光度(A3);以相同濃度梯度VC作對照,計算DPPH·清除率[23]。
式(3)
式(4)
式中:ΔA0為鄰苯三酚的自氧化法速率;ΔA為加入酶解液后鄰苯三酚自氧化法速率(單位均為吸光度每分鐘的增加值)。
采用IBM SPSS Statistics 22.0軟件對實驗結果進行統(tǒng)計分析,應用Microsoft Excel 2003的FORECAST函數(shù)計算清除50%自由基所需雞樅菌蛋白濃度(IC50)。
2.1.1 超聲功率對雞樅菌蛋白提取率的影響 由圖1可知,隨超聲功率升高,蛋白提取率呈先升高后降低的變化趨勢;功率500 W時蛋白提取率最大,可達26.970%±0.666%,且與其他組差異顯著(p<0.05)。由于超聲功率的增加,超聲波的機械效應和空穴效應增大,增加了對細胞壁的破碎作用,蛋白提取率增加;但功率過高也會導致泡沫產生,增加衍射衰減,不利于空穴現(xiàn)象的產生[25]。因此,超聲波輔助提取雞樅菌粗蛋白的功率在500 W左右。
圖1 超聲功率對雞樅菌蛋白提取率的影響Fig.1 Effects of ultrasonic power on extraction rate of protein from Termitomyces albuminosus注:圖中不同小寫字母表示各組 數(shù)據(jù)差異顯著(p<0.05),圖2~圖5同。
2.1.2 超聲溫度對雞樅菌蛋白提取率的影響 由圖2可知,隨超聲溫度的升高,蛋白提取率呈先升高后降低的變化趨勢;超聲70 ℃時蛋白提取率最大,可達37.049%±0.631%,且與其他組差異顯著(p<0.05)。因為溫度升高可提高蛋白質溶解度,超聲空化效應增強;當溫度過高時,蛋白質會出現(xiàn)變性現(xiàn)象,空間構象被破壞,蛋白質疏水基團暴露,分子間相互結合而沉淀,溶解度下降[26]。所以,超聲波輔助提取雞樅菌粗蛋白的溫度在70 ℃左右。
圖2 超聲溫度對雞樅菌蛋白提取率的影響Fig.2 Effects of ultrasonic temperature on extraction rate of protein from Termitomyces albuminosus
2.1.3 pH對雞樅菌蛋白提取率的影響 由圖3可知,隨pH升高,蛋白提取率呈先升高后降低的變化趨勢;pH11時蛋白提取率最大,可達52.305%±0.589%,且與其他組差異顯著(p<0.05)。因為適當升高pH,蛋白質溶解度增大,但堿性太強時,蛋白質可能會出現(xiàn)變性和水解[21],增加了美拉德反應速度,加之蛋白質可能出現(xiàn)異味,發(fā)生顏色變化,外觀質量下降[27],故超聲波輔助提取雞樅菌粗蛋白的pH在11左右。
圖3 pH對雞樅菌蛋白提取率的影響Fig.3 Effects of pH on extraction rate of protein from Termitomyces albuminosus
2.1.4 料液比對雞樅菌蛋白提取率的影響 由圖4可知,隨料液比增大,蛋白提取率呈先升高后降低的變化趨勢;料液比為1∶25 g/mL時蛋白提取率最大,可達52.271%±0.613%,且與其他組差異顯著(p<0.05)。因為隨料液比增大,體系黏度降低,提取率增加;但料液比過大時,物料過于分散,不利于蛋白質后期沉淀[28]。為此,超聲輔助提取雞樅菌粗蛋白的料液比在1∶25 g/mL左右。
圖4 料液比對雞樅菌蛋白提取率的影響Fig.4 Effects of liquid ratio on extraction rate of protein from Termitomyces albuminosus
2.1.5 超聲時間對雞樅菌蛋白提取率的影響 由圖5可知,隨超聲時間的增加,蛋白提取率呈先升高后降低的變化趨勢;超聲時間為1.0 h時提取率最大,可達52.352%±0.720%,且與其他組差異顯著(p<0.05),而后逐漸降低。因為適宜的超聲時間可使細胞破裂促進蛋白質的提取,但時間過長會引起蛋白質的變性甚至降解,故蛋白質提取率呈下降趨勢[29]。因此,超聲輔助提取雞樅菌粗蛋白的提取時間在1.0 h左右。
圖5 超聲時間對雞樅菌蛋白提取率的影響Fig.5 Effects of time on extraction rate of protein from Termitomyces albuminosus
為優(yōu)化超聲波輔助提取效果,在單因素實驗基礎上,固定料液比1∶25 g/mL,以超聲功率(A)、超聲溫度(B)、pH(C)、超聲時間(D)4個因素進行L9(34)正交實驗優(yōu)化雞樅菌粗蛋白提取參數(shù),實驗結果見表2,方差分析見表3。
表2 超聲波輔助提取雞樅菌粗蛋白正交實驗設計及結果Table 2 Orthogonal array design and results of protein extraction of Termitomyces albuminosus with ultrasonic assisted
表3 超聲波輔助提取雞樅菌粗蛋白正交實驗優(yōu)化工藝方差分析Table 3 Orthogonal test analysis of variance on extraction of protein from Termitomyces albuminosus with ultrasonic assisted
由表2可知,各實驗因素對雞樅菌蛋白提取率的影響程度為B>A>C>D,即超聲溫度>超聲功率>pH>超聲時間。超聲波輔助提取雞樅菌粗蛋白的最優(yōu)化條件為A1B3C3D3,即超聲功率為400 W,超聲溫度為70 ℃,pH為11,超聲時間為1.5 h。
由表3可知,超聲功率、超聲溫度、pH、超聲時間均對粗蛋白提取有極顯著影響(p<0.01)。在正交實驗所得最適提取條件超聲功率400 W,超聲溫度70 ℃,pH11,超聲時間1.5 h的條件下,進行超聲波輔助提取雞樅菌粗蛋白的驗證實驗,所得雞樅菌蛋白質含量為86.525%±1.315%,蛋白提取率為67.322%±1.028%。無超聲處理的常規(guī)法,在相同條件下提取雞樅菌蛋白含量為74.067%±1.238%,蛋白提取率為42.238%±0.876%;400 W超聲波輔助雞樅菌蛋白提取率比常規(guī)法提高了59.387%,蛋白質含量提高了16.820%,這說明超聲波促進了雞樅菌粗蛋白的溶解和擴散,使蛋白提取率顯著提升(p<0.05)。
2.3.1 對ABTS+·的清除能力分析 由圖6可知,雞樅菌粗蛋白對ABTS+·有一定的清除能力,隨粗蛋白濃度增加,對ABTS+·的清除能力逐漸增加,粗蛋白濃度為120 mg/L時,ABTS+·清除率最大可達92.485%±0.515%(p<0.05),粗蛋白和VC清除ABTS+·的IC50分別為46.322、10.431 mg/L,但粗蛋白的清除效果低于同濃度VC的清除效果(p<0.05)。
圖6 雞樅菌蛋白對ABTS+·的清除能力Fig.6 ABTS+· radical scavenging activity of protein from Termitomyces albuminsous注:圖中不同小寫字母表示同一質量濃度不同清除率間 差異顯著(p<0.05),圖7、圖8同。
2.3.2 對DPPH·的清除能力分析 由圖7可知,雞樅菌粗蛋白對DPPH·有一定的清除能力,且隨粗蛋白濃度增加,對DPPH·的清除能力逐漸增加,粗蛋白濃度為60 mg/L時,DPPH·最大清除率可達47.165%±3.185%,粗蛋白和VC清除DPPH·的IC50分別為61.176、3.890 mg/L,粗蛋白清除效果顯著低于同濃度VC的清除效果(p<0.05)。
圖7 雞樅菌蛋白對DPPH·自由基清除能力Fig.7 DPPH· radical scavenging activity of protein from Termitomyces albuminsous
圖8 雞樅菌蛋白的對自由基的清除能力 radical scavenging activity of protein from Termitomyces albuminsous