曾志魯,范慧群,黃克愁,羅舜菁,葉江平,劉成梅,羅舜芬
(1.南昌大學(xué)食品科學(xué)與技術(shù)國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江西南昌 330047; 2.贛南師范大學(xué)圖書(shū)館,江西贛州 341000)
1992年,英國(guó)學(xué)者Englyst依據(jù)淀粉消化速度將淀粉分為快消化淀粉(RDS)、慢消化淀粉(SDS)和抗性淀粉(RS)[1];其中,將RS定義為在體外模擬消化條件下(pH5.2、37 ℃),在120 min內(nèi)不能被混合酶系(胰α-淀粉酶、葡萄糖苷酶等)消化的淀粉片斷。由于不能被小腸消化吸收,RS可到達(dá)大腸作為人體腸道菌群的碳源,因此,RS對(duì)于人體腸道菌群健康具有重要的作用;此外,RS還可降低餐后胰島素分泌,提高機(jī)體對(duì)胰島素的敏感性[2-4]。
RS作為一種新型的功能性碳水化合物,引起了國(guó)內(nèi)外學(xué)者的廣泛興趣。重結(jié)晶淀粉是目前制備RS的主流方式,被歸類為RS3[5]。然而,普通淀粉重結(jié)晶形成的晶體熱穩(wěn)定性較差,導(dǎo)致RS產(chǎn)量低、熱穩(wěn)定性差。大量研究證明,直鏈淀粉的重結(jié)晶能力顯著高于支鏈淀粉[6],且直鏈淀粉結(jié)晶的熱穩(wěn)定性顯著高于支鏈淀粉。因此,提高淀粉中直鏈淀粉含量可提高淀粉重結(jié)晶能力從而提高RS含量。近年來(lái),多采用脫支酶對(duì)淀粉脫支后進(jìn)行重結(jié)晶處理,從而增加RS含量[7]。例如,Demirkesenbicak等[8]采用普魯蘭酶對(duì)鷹嘴豆淀粉脫支之后再進(jìn)行回生處理,與未脫支淀粉相比,其RS含量提高了41.3%。
近年來(lái),脂質(zhì)等客體分子與淀粉分子絡(luò)合形成的復(fù)合物是另一種熱門(mén)的RS類型[5]。然而脂質(zhì)的添加會(huì)產(chǎn)生大量額外的能量。β-環(huán)糊精(β-CD)是由7個(gè)D-吡喃葡萄糖通過(guò)α-1,4糖苷鍵聚合而成的環(huán)狀低聚糖。研究發(fā)現(xiàn),β-CD可與淀粉發(fā)生相互作用形成淀粉-β-CD非包合物[9],從而降低淀粉的消化率[10]。同時(shí),在β-CD對(duì)大米淀粉回生的研究中,添加β-CD后大米淀粉的晶體熱穩(wěn)定性顯著提高[11]。據(jù)報(bào)道,脫支處理可增加淀粉分子和客體分子之間的復(fù)合物形成,如淀粉-月桂酸和淀粉-多酚[12-13]。基于上述研究結(jié)果,本文推斷脫支處理和β-環(huán)糊精可能對(duì)降低重結(jié)晶淀粉的消化率具有協(xié)同作用。因此,本研究以大米淀粉為原料,比較了重結(jié)晶大米淀粉(RRS)、β-環(huán)糊精重結(jié)晶大米淀粉(β-CD-RRS)、重結(jié)晶脫支大米淀粉(DB-RRS)、β-環(huán)糊精重結(jié)晶脫支大米淀粉(DB-β-CD-RRS)的消化性和結(jié)構(gòu)的差異,以期為提高抗性淀粉含量提供新思路。
大米淀粉 Sigma-Aldrich公司;β-環(huán)糊精 Aladdin Chemistry公司;普魯蘭酶(100 U/g) 諾維信公司;豬胰α-淀粉酶(16 U/mg)、淀粉葡萄糖苷酶(300 U/mL) 美國(guó)Sigma公司;GOPOD試劑盒 愛(ài)爾蘭Megazyme公司;冰醋酸、醋酸鈉 分析純,Aladdin Chemistry公司;乙醇 分析純,上海振興化工有限公司。
HH-4數(shù)顯恒溫水浴鍋 金壇市城西曉陽(yáng)電子有限公司;電子分析天平 奧豪斯國(guó)際貿(mào)易有限公司;Labconco FreeZone真空冷凍干燥機(jī) 美國(guó)LABCONCO公司;PHS-3C精密pH計(jì) 上海雷磁儀器廠;T6紫外可見(jiàn)分光光度計(jì) 北京普析通用儀器有限公司;X-衍射儀 英國(guó)Bede公司Di系統(tǒng);差示掃描量熱儀 日本日立公司;Quanta-200掃描電鏡 美國(guó)FEI公司。
1.2.1 抗性淀粉樣品的制備
1.2.1.1 重結(jié)晶大米淀粉的制備 稱取一定質(zhì)量的大米淀粉分散在水中得到濃度為10%(w/v)的淀粉懸浮液,將懸浮液在沸水中加熱30 min使淀粉完全糊化,緩慢冷卻至25 ℃并保持2 h,冷凍干燥得到重結(jié)晶的大米淀粉,得到的樣品命名為RRS。
1.2.1.2 添加β-CD重結(jié)晶大米淀粉的制備 將大米淀粉與β-CD(添加量為大米淀粉質(zhì)量的4.0%)混合,混合物分散于水中得到濃度為10%(w/v)的懸浮液,將懸浮液在沸水中加熱30 min使淀粉完全糊化,緩慢冷卻至25 ℃并保持2 h,冷凍干燥得到樣品,命名為β-CD-RRS。
1.2.1.3 脫支重結(jié)晶大米淀粉的制備 稱取一定質(zhì)量的大米淀粉分散在pH5.2,0.02 mol/L乙酸鈉緩沖溶液中得到濃度為10%(w/v)的淀粉懸浮液,將懸浮液在沸水中加熱30 min使淀粉完全糊化,將淀粉冷卻至55 ℃,向溶液中加入普魯蘭酶(40 U/g,基于淀粉的干重),反應(yīng)24 h后,沸水浴30 min使普魯蘭酶失活,緩慢冷卻至25 ℃并保持2 h,冷凍干燥得到樣品,命名為DB-RRS。
1.2.1.4β-環(huán)糊精重結(jié)晶脫支大米淀粉的制備 稱取一定質(zhì)量的大米淀粉分散在pH5.2,0.02 mol/L乙酸鈉緩沖溶液中得到濃度為10%(w/v)的淀粉懸浮液,將懸浮液在沸水中加熱30 min使淀粉完全糊化,將淀粉冷卻至55 ℃,向溶液中加入普魯蘭酶(40 U/g,基于淀粉的干重),反應(yīng)24 h后,沸水浴加入β-CD(添加量為大米淀粉質(zhì)量的4.0%),持續(xù)30 min(同時(shí)滅酶),然后將混合物緩慢冷卻至25 ℃并保持2 h。最后,冷凍干燥得到樣品,命名為DB-β-CD-RRS。
1.2.2 體外消化性測(cè)定 參考Miao等[14]的研究,采用體外模擬消化法測(cè)定淀粉的消化性質(zhì)。將α-淀粉酶(22.5 mg,10 U/mg)溶解在7.5 mL乙酸鈉緩沖液(0.02 mol/L,pH5.5)中,加入0.75 mL淀粉葡萄糖苷酶(300 U/mL),渦旋混勻。將每個(gè)樣品(200 mg,干基)加入14 mL乙酸鈉緩沖液(0.02 mol/L,pH5.5)中(未蒸煮/沸水浴蒸煮20 min),然后在37 ℃下平衡10 min,然后再加入1 mLα-淀粉酶和淀粉葡萄糖苷酶的混酶。在消化期間以特定間隔取出溶液(0.5 mL)至無(wú)水乙醇(4.0 mL)混合,以使酶失活并以4000×g離心10 min以獲得上清液。用GOPOD在510 nm處測(cè)量吸光度,并計(jì)算葡萄糖含量,每個(gè)樣品測(cè)定3次取平均值。
通過(guò)測(cè)量G20(水解20 min時(shí)釋放的葡萄糖)、G120(水解120 min時(shí)釋放的葡萄糖)、FG(游離葡萄糖)和TG(總葡萄糖)獲得不同碳水化合物營(yíng)養(yǎng)組分(快速消化淀粉,RDS;緩慢消化的淀粉,SDS;抗性淀粉,RS)的值。具體計(jì)算公式如下:
RDS(%)=(G20-FG)×0.9×100
式(1)
SDS(%)=(G120-G20)×0.9×100
式(2)
RS(%)=(TG-FG)×0.9×100-RDS(%)-SDS(%)
式(3)
式中,G20為淀粉酶水解20 min時(shí)產(chǎn)生的葡萄糖含量(mg);FG為淀粉酶水解處理前淀粉中游離葡萄糖含量(mg);G120為淀粉酶水解120 min時(shí)產(chǎn)生的葡萄糖含量(mg);TS為樣品中總淀粉含量(mg)。
1.2.3β-環(huán)糊精、脫支對(duì)重結(jié)晶大米淀粉長(zhǎng)程和短程結(jié)構(gòu)的影響 通過(guò)X-射線衍射儀器獲得淀粉樣品(未蒸煮)的長(zhǎng)程結(jié)構(gòu),掃描的衍射區(qū)域角度變化范圍為5~40 °,電壓30 kV,電流30 mA,掃描的速度2 °/min。通過(guò)衍射圖譜觀察結(jié)晶區(qū)與非結(jié)晶區(qū)的變化。利用Origin軟件分析并計(jì)算重組米淀粉無(wú)定形區(qū)域和結(jié)晶區(qū)域的面積。根據(jù)方程計(jì)算淀粉顆粒的相對(duì)結(jié)晶度[15]:
式(4)
式中,RC,Ac和Aa分別是相對(duì)結(jié)晶度、結(jié)晶區(qū)域面積和無(wú)定形區(qū)域面積。
通過(guò)傅立葉變換紅外光譜法(ATR-FTIR)分析淀粉的短程結(jié)構(gòu)。制備好樣品之后,放入紅外光譜測(cè)定儀(Nicolet 5700)中測(cè)量,參數(shù)設(shè)定如下:掃描整合頻譜32倍,掃描分辨率是4 cm-1,波段范圍4000~650 cm-1。用Omnic軟件對(duì)紅外光譜圖進(jìn)行分析,記錄譜圖中1047和1022 cm-1位置上的峰高,淀粉結(jié)晶區(qū)和無(wú)定形區(qū)的比值以1047與1022 cm-1的峰高比值代表。
1.2.4 差示掃描量熱法分析(DSC) 準(zhǔn)確稱取3 mg樣品(未蒸煮)置于鋁坩堝中,加入6 μL去離子水,密封后,靜置24 h。以空鋁坩堝為參比,將樣品坩堝置于差示掃描量熱儀的樣品池進(jìn)行分析。分析條件如下:溫度范圍20~140 ℃,升溫速率5 ℃/min。計(jì)算起始溫度(To)、峰值溫度(Tp)、終止溫度(Tc)和結(jié)晶熔化焓(ΔH)。
1.2.5 掃描電鏡分析 通過(guò)電鏡掃描觀察并拍攝樣品顆粒(未蒸煮)樣貌。處理后的樣品用掃描電子顯微鏡在加速電壓為5.00 kV,距離為13.1 mm,在5000放大倍數(shù)下進(jìn)行形貌觀察。
實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SPSS 16.0分析處理,采用Origin 8.0繪圖,所有實(shí)驗(yàn)組均一式三份平行測(cè)定。
圖1為未蒸煮時(shí)不同淀粉樣品的消化性。RRS的RDS、SDS和RS含量分別為75.51%、8.04%和16.45%。β-CD-RRS的RDS、SDS和RS含量分別為73.70%、7.27%和19.03%。由此可見(jiàn),添加β-CD后樣品的RDS含量由75.51%降至73.70%,但差異不顯著。DB-RRS的RDS、SDS和RS含量分別為41.15%、15.02%和43.83%。與RRS樣品相比,DB-RRS的RS含量由16.45%增加到43.83%,且差異顯著(p<0.05),這是由于脫支可增加直鏈淀粉含量,促進(jìn)淀粉重結(jié)晶[16]。DB-β-CD-RRS的RDS、SDS和RS含量分別為35.44%、12.22%、52.34%。添加β-CD后,DB-RRS的RS含量由43.83%升高至52.34%(p<0.05),這表明β-CD亦可降低脫支后重結(jié)晶淀粉的消化性。通過(guò)比較RRS、β-CD-RRS、DB-RRS和DB-β-CD-RRS的RS含量,發(fā)現(xiàn)與RRS相比,β-CD-RRS的RS含量增加了2.58%,DB-RRS增加了27.38%,DB-β-CD-RRS增加了35.89%,DB-β-CD-RRS的增量(35.89%)大于前兩組樣品增量之和(29.96%),這說(shuō)明脫支和β-CD可協(xié)同降低淀粉的消化性。
圖1 不同淀粉的RDS、SDS和RS含量(未蒸煮)Fig.1 RDS,SDS,and RS contents of starches(uncooked)注:圖中小寫(xiě)字母表示同種消化淀粉不同組間 數(shù)據(jù)差異顯著(p<0.05),圖2同。
圖2為蒸煮后不同淀粉樣品的消化性。蒸煮后,RRS和β-CD-RRS的RS含量分別為1.54%和5.73%,兩者差異顯著(p<0.05)??梢?jiàn)β-CD-RRS的RS熱穩(wěn)定性高于RRS,這可能是由于β-CD增加了淀粉體系的粘度從而增加抗性淀粉的熱穩(wěn)定性[17]。此外,DB-β-CD-RRS的RS為20.35%,耐熱RS保留率為38.9%,高于DB-RRS(15.49%)的保留率35.34%(p<0.05),這可能是由于直鏈淀粉-β-CD復(fù)合物的形成增加了抗性淀粉的穩(wěn)定性[18]。上述結(jié)果表明,β-CD增加了重結(jié)晶淀粉中抗性淀粉的熱穩(wěn)定性。
圖2 不同淀粉的RDS、SDS和RS含量(蒸煮)Fig.2 RDS,SDS,and RS contents of starches(cooked)
圖3展示了各淀粉的X-衍射圖(圖3a)和相對(duì)結(jié)晶度(圖3c)。X-射線衍射法(XRD)測(cè)量的是長(zhǎng)程序列,可以測(cè)量樣品的晶體組成及晶型。從圖3(a)可以看出,RRS和β-CD-RRS沒(méi)有明顯的衍射峰,表明RRS和β-CD-RRS沒(méi)有形成結(jié)晶,這可能是由于重結(jié)晶時(shí)間過(guò)短且溫度略高而引起的[19]。DB-RRS在2θ為14.3 °、17.0 °、19.6 °、22.0 °和24.1 °處有明顯的衍射峰,表明該樣品具有B型和V型結(jié)晶結(jié)構(gòu),其結(jié)晶度為23.6%。據(jù)報(bào)道,B型和V型結(jié)晶是抗性淀粉的典型晶體結(jié)構(gòu)[20]。與DB-RRS相比,DB-β-CD-RRS具有更強(qiáng)的衍射峰,且在5.2 °處出現(xiàn)了一個(gè)新的衍射峰,這表明脫支促進(jìn)了淀粉-β-CD復(fù)合物的形成[18]。綜上所述,脫支不僅可加速淀粉的重結(jié)晶,還促進(jìn)淀粉與β-CD形成復(fù)合物。因此,脫支和β-CD具有協(xié)同提高抗性淀粉含量的作用。
圖3 不同淀粉的長(zhǎng)程結(jié)構(gòu)(a)、短程結(jié)構(gòu)(b)和結(jié)構(gòu)參數(shù)(c)Fig.3 Long-range order(a),short-range order(b) and structural parameters(c)of starches注:圖中不同字母表示同一指標(biāo)間 各組數(shù)據(jù)差異顯著(p<0.05)。
圖3(b)為淀粉樣品的紅外光譜圖,主要測(cè)量分子中短程序列,它反映的是分子內(nèi)的作用現(xiàn)象。紅外光譜圖中1047和1022 cm-1處吸光度的值表示淀粉中結(jié)晶區(qū)和無(wú)定形結(jié)構(gòu)的變化,1047與1022 cm-1吸光度的比值表示淀粉中結(jié)晶區(qū)與無(wú)定形區(qū)的比例,它可以定量的反映顆粒表面淀粉鏈的有序化程度和結(jié)晶度。
從圖3(c)中可以得出,DB-β-CD-RRS、DB-RRS、β-CD-RRS、RRS的1047 cm-1/1022 cm-1比值分別為3.05、2.69、1.28、1.25。DB-β-CD-RRS 的1047 cm-1/1022 cm-1比值最大為3.05,其顯著高于DB-RRS(p<0.05),且均高于β-CD-RRS和RRS。β-CD-RRS和RRS沒(méi)有顯著性差異(p<0.05)。該結(jié)果說(shuō)明DB-β-CD-RRS和DB-RRS顯示出較高的結(jié)晶度,其與XRD分析結(jié)果一致。
實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),在RRS和β-CD-RRS的DSC曲線中沒(méi)有吸熱峰,表明兩者中沒(méi)有晶體的形成,這與X-衍射分析結(jié)果一致。如表1所示,DB-RRS具有一個(gè)吸熱峰,其熔融溫度在84.4~106.0 ℃范圍,這主要是淀粉脫支后重結(jié)晶晶體解體峰[21-22]。由此可見(jiàn),DB-RRS結(jié)晶的熱穩(wěn)定較高,這也說(shuō)明DB-RRS在蒸煮后仍具有較高含量的RS。除淀粉重結(jié)晶的吸熱峰外,DB-β-CD-RRS在115.9~125.0 ℃范圍具有吸熱峰,推測(cè)這是由于β-CD-淀粉復(fù)合物導(dǎo)致的[18]。上述結(jié)果表明,DB-β-CD-RRS中抗性淀粉熱穩(wěn)定性高于DB-RRS,與蒸煮實(shí)驗(yàn)結(jié)果一致。
表1 淀粉的糊化溫度和熱焓值 Table 1 Gelatinization temperatures and enthalpy of starch
如圖4所示,RRS呈片狀結(jié)構(gòu),具有該結(jié)構(gòu)的淀粉表面積較大,因此與淀粉酶的接觸幾率較大,易被酶解,從而含有較低的抗性淀粉。添加β-CD沒(méi)有顯著改變重結(jié)晶大米淀粉的微觀形貌,β-CD-RRS仍呈片狀結(jié)構(gòu)。然而,DB-RRS呈緊實(shí)的球形顆粒結(jié)構(gòu),為淀粉脫支后重結(jié)晶形成的聚集體。與上述片狀結(jié)構(gòu)相比,顆粒聚集體的表面積更小,與淀粉酶接觸的幾率更小。因而,DB-RRS對(duì)酶的抗性遠(yuǎn)高于RRS和β-CD-RRS。DB-β-CD-RRS具有與DB-RRS相似的結(jié)構(gòu),且DB-β-CD-RRS的顆粒大于DB-RRS,結(jié)構(gòu)更緊密,這可能是由于淀粉-β-CD復(fù)合物的形成,該結(jié)果證明脫支處理和β-環(huán)糊精對(duì)于提高重結(jié)晶淀粉的抗性具有協(xié)同作用。
圖4 RRS、β-CD-RRS、DB-RRS和DB-β-CD-RRS的SEM照片F(xiàn)ig.4 Morphology of RRS,β-CD-RRS,DB-RRS and DB-β-CD-RRS注:a:RRS;b:β-CD-RRS;c:DB-RRS;d:DB-RRS。
脫支處理可加速大米淀粉的重結(jié)晶,使糊化的大米淀粉在較短的時(shí)間內(nèi)重結(jié)晶形成B+V型晶體,從而提高重結(jié)晶淀粉的抗性;脫支處理結(jié)合β-環(huán)糊精可促進(jìn)淀粉-β-環(huán)糊精復(fù)合物的形成,從而進(jìn)一步增強(qiáng)重結(jié)晶大米淀粉的晶體含量、提高重結(jié)晶淀粉的抗性。此外,DSC分析表明,脫支處理結(jié)合β-環(huán)糊精可使重結(jié)晶大米淀粉的晶體熱穩(wěn)定性高于單純脫支后的重結(jié)晶大米淀粉。綜上所述,脫支處理和β-環(huán)糊精可有效協(xié)同增加重結(jié)晶淀粉的抗性與抗性淀粉的熱穩(wěn)定性。