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    二輪鹽漬工業(yè)泡菜微生物群落結構解析

    2019-06-25 09:47:28汪冬冬陳功李恒唐垚萬鵬張其圣
    中國調味品 2019年6期
    關鍵詞:榨菜鹽漬豇豆

    汪冬冬,陳功,2,李恒,2,唐垚,萬鵬,張其圣,2*

    (1.四川東坡中國泡菜產業(yè)技術研究院,四川 眉山 620000;2.四川省食品發(fā)酵工業(yè)研究設計院, 成都 611130;3.四川省川南釀造有限公司,四川 眉山 620000)

    利用食鹽對新鮮蔬菜進行漬制加工而成的蔬菜制品,稱之為鹽漬菜。泡菜是鹽漬菜中的一種,在我國尤以四川泡菜最具代表性,其品種繁多,風味獨特,得利于適宜的氣候條件和豐富的蔬菜資源[1,2]。泡菜發(fā)酵是微生物群落的種類和數(shù)量不斷演替變化的過程,是多種微生物相互作用的復雜過程,其以活性乳酸菌群主導發(fā)酵。

    四川泡菜在工業(yè)化生產過程中,由于加工的需要,蔬菜需要進行發(fā)酵和后期成熟的過程。在工業(yè)生產泡菜中尤其是二輪發(fā)酵工藝最有代表性。該工藝將新鮮蔬菜采用低鹽快速發(fā)酵,當產品酸度達到一定程度以后,快速翻池,進入第二輪發(fā)酵與后熟儲存的過程。產品在第一輪發(fā)酵過程中由于鹽度低(一般鹽度低于5%)、發(fā)酵速度快,可以快速消除蔬菜本身的生味,進入成熟期。根據(jù)加工的需要,第一輪發(fā)酵后的蔬菜制品可以直接進入后續(xù)工段加工成為泡菜,也可以在進行第二次高鹽度儲存發(fā)酵(一般大于8%),實現(xiàn)周年加工的目的。經過第二輪發(fā)酵的產品,由于發(fā)酵時間長、風味好,往往更容易受到消費者的喜愛。

    微生物的發(fā)酵作用可能是導致第一輪發(fā)酵與第二輪發(fā)酵蔬菜制品品質差異的主要原因。針對第一輪低鹽發(fā)酵過程的產品已經有大量的報道,乳桿菌屬主導了整個發(fā)酵過程。如田偉等[3]利用16S rRNA分析傳統(tǒng)四川發(fā)酵泡菜中的細菌多樣性,其中Lactobacillus和Pediococcus兩個屬,所占比例分別為88.4%和10.1%。李正國采用傳統(tǒng)分離培養(yǎng)和DGGE法檢測榨菜中乳桿菌屬是優(yōu)勢菌群。翁佩芳等[4]發(fā)現(xiàn)榨菜腌制初期優(yōu)勢菌群為腸膜明串珠菌, 隨后轉變?yōu)橹参锶闂U菌和短乳桿菌占優(yōu)勢,腌制后期主要為植物乳桿菌等。然而針對第二輪高鹽儲存過程中,認識有較大差異,如在細菌方面,一些人認為該發(fā)酵過程中以乳桿菌為主導發(fā)酵[5];另外一些人則認為泡菜是以乳桿菌主導發(fā)酵,但也發(fā)現(xiàn)了大量的芽孢桿菌[6];一些學者發(fā)現(xiàn)高鹽鹽漬發(fā)酵的蔬菜制品也有報道以芽孢桿菌屬(Bacillus)為主導[7]。Liang H采用高通量測序的方法研究發(fā)現(xiàn)Lactobacillus主導榨菜發(fā)酵中段,以Lactobacillus和Pediococcus為主[8]。在真菌方面,羅青春等研究了規(guī)模泡菜中,蘿卜、豇豆、青菜和榨菜的主要優(yōu)勢酵母菌分別為Debaryomyces;Debaryomyces和Starmerella;Debaryomyces;Starmerella,Debaryomyces和Candida[9]。尹禮國采用DGGE發(fā)現(xiàn)不同鹽漬青菜樣品的優(yōu)勢真菌與假絲酵母屬、德巴氏酵母屬、接合酵母屬的菌株相似[10]。張先琴發(fā)現(xiàn)季也蒙假絲酵母在泡菜發(fā)酵真菌中占主導[11];Liang H采用高通量測序的方法研究發(fā)現(xiàn)Debaryomyces是榨菜的主導真菌。

    從目前的研究來看,對傳統(tǒng)泡菜中微生物菌群結構研究較多,而二輪高鹽發(fā)酵泡菜少有報道,且大多數(shù)有關泡菜中微生物的研究多集中在乳酸菌方面。本研究采用可培養(yǎng)方法,探討二輪高鹽發(fā)酵泡菜中微生物群落結構,為進一步對微生物進行深入研究,尤其對高鹽蔬菜制品特有的風味品質,構建微生物與品質之間的關聯(lián)具有重要的意義,以期為后續(xù)優(yōu)化泡菜生產工藝,實現(xiàn)人工控制泡菜發(fā)酵過程奠定理論基礎。

    1 材料與方法

    1.1 材料和試劑

    泡菜原料為發(fā)酵1年以上的鹽漬豇豆(J)、鹽漬青芥菜(Q)、鹽漬蘿卜(L),取自四川眉山某泡菜廠鹽漬池;PCA培養(yǎng)基、PDA培養(yǎng)基:北京奧博星生物技術有限公司;Bacterial DNA Isolation Kit、2×PCR Mix(ForegeneTaq DNA聚合酶、dNTPs、Tris-HCl、KCl、MgCl2):成都福際生物技術公司;Biomiga EZgene TM Fungal gDNA Miniprep Kit:美國Biomiga公司;瓊脂糖:北京索萊寶科技有限公司;無水乙醇:成都市科龍化工有限公司;PCR引物(見表1):成都擎科梓熙生物技術有限公司。

    表1 PCR引物表Table 1 PCR primer list

    1.2 儀器與設備

    DHP-9080B恒溫培養(yǎng)箱、DYCP-31DN瓊脂糖水平電泳儀、HH-4恒溫水浴鍋 成都智誠科靈儀器儀表有限責任公司;TGL-20BR臺式冷凍離心機、T960梯度PCR熱循環(huán)儀、IY04S-3E型凝膠成像分析系統(tǒng)、PHS-3C型精密pH計 成都一科儀器設備有限公司;BL SMART型拍打式均質機 意大利ASTORI公司。

    1.3 試驗方法

    1.3.1 pH、總酸與鹽度的測定

    依據(jù)GB 10648—1989《水果和蔬菜產品pH值的測定方法》測定泡菜的pH;按照國標GB/T 12456—2008《食品中總酸的測定》中酸堿滴定法測定樣品中的總酸含量,結果以乳酸計;依據(jù)GB/T 12457—2008《食品中氯化鈉的測定》中滴定法測定泡菜的食鹽濃度。

    1.3.2 微生物計數(shù)

    將25 g泡菜加入到含有225 mL無菌生理鹽水的均質袋中,用拍擊式均質器拍打2 min,勻漿后進行1∶10梯度稀釋,制成樣品菌懸液。取適當稀釋度的菌懸液分別接入不同培養(yǎng)基中涂布培養(yǎng)后計數(shù),平行重復3次,取其平均值。其中PCA培養(yǎng)基于37 ℃培養(yǎng)48 h,PDA培養(yǎng)基于28 ℃培養(yǎng)48 h,以未接菌株的培養(yǎng)基作為空白對照。觀察不同培養(yǎng)基中典型菌落的菌落形態(tài)、個體形態(tài)和染色特征,劃線法分離純化各菌株。

    1.3.3 菌相分析

    1.3.3.1 細菌16S rDNA序列測定

    菌株DNA的提取參照細菌DNA提取試劑盒(Bacterial DNA Isolation Kit)說明書方法進行。PCR體系(50 μL):2×PCR Mix 25 μL,模板DNA 1.5 μL,引物27F(10 μmol/L)和1492R(10 μmol/L)各2 μL,加雙重蒸餾水補充至50 μL。反應程序參照Haruta等[12]的方法進行。

    1.3.3.2 真菌26S rDNA序列測定

    菌株DNA的提取參照試劑盒方法(Biomiga EZgene TM Fungal gDNA Miniprep Kit)進行。PCR反應體系(50 μL)組成:2×PCR Mix 25 μL,模板DNA 1.5 μL,引物NL1(10 μmol/L)和NL4(10 μmol/L)各2 μL,加雙重蒸餾水補齊50 μL。反應程序參照Tofalo等[13]的方法進行。

    1.3.3.3 序列測定

    PCR擴增產物用2%瓊脂糖凝膠電泳檢測,細菌目標條帶為1500 bp左右,真菌目標條帶為600 bp左右。將符合16S rDNA和26S rDNA片段大小的PCR擴增產物送至成都擎科梓熙生物技術有限公司進行測序,測序結果利用BLAST軟件在GenBank數(shù)據(jù)庫中進行比對。

    1.3.4 數(shù)據(jù)分析

    本研究實驗數(shù)據(jù)通過Excel 2007軟件進行統(tǒng)計分析,數(shù)據(jù)導入Origin 9.1中作圖進行比較,菌相構成采用PermutMatrix進行heatmap和聚類分析,同時采用Sorensen similarity index評價不同泡菜樣品細菌和真菌的相似程度,并通過biodap進行統(tǒng)計分析。

    2 結果與分析

    2.1 泡菜一般性質

    本研究中的4種不同原料泡菜樣品全部為發(fā)酵1年以上,其pH、總酸和鹽度見表2。

    表2 4種不同原料泡菜樣品理化指標測定結果Table 2 Determination resuts of physicochemical indexes of four pickle samples with different raw materials

    由表2可知,4種不同原料泡菜pH處于3.59~4.06之間,一般認為pH<4表示泡菜發(fā)酵完成[14];總酸含量都大小0.5 g/100 g,一般認為酸度在0.5%~0.8%左右,泡菜質量最好;鹽度都大小12 g/100 g,屬于高鹽發(fā)酵,這與高鹽有利于鹽漬菜長時間儲存的工藝有關。表明該階段泡菜環(huán)境已經形成一定的緩沖體系,較穩(wěn)定。

    4種不同原料泡菜的細菌和真菌菌落總數(shù)情況見圖1,菌落總數(shù)都小于105CFU/mL,此時,微生物作用對泡菜影響較小,且蘿卜、豇豆、榨菜中細菌都低于真菌總數(shù)。在鹽漬泡菜發(fā)酵后期,在高鹽條件下,微生物受低pH和高酸度的影響,大部分死亡或被抑制,存留少部分耐鹽且耐酸的微生物。

    圖1 4種不同原料泡菜菌落數(shù)Fig.1 Colony number of four pickles with different raw materials

    2.2 細菌群落構成

    4種不同原料泡菜樣品中共分離出細菌93株,鹽漬豇豆、鹽漬蘿卜、鹽漬青菜、鹽漬榨菜分別鑒定出28,21,19,25株。經鑒定,93株菌分為6個屬,分別為芽孢桿菌屬(Bacillus)、短芽孢桿菌屬(Brevibacillus)、類芽孢桿菌屬(Paenibacillus)、虛構芽孢桿菌屬(Fictibacillus)、葡萄球菌屬(Staphylococcus)、乳酸桿菌屬(Lactobacillus)。4種不同原料泡菜中芽孢桿菌占主導,分別占到78.1%、100.0%、78.9%、62.5%。這與報道中的泡菜發(fā)酵后期乳桿菌占主導不一致,這可能與鹽漬泡菜后期長時間貯藏有關。經過二輪加鹽長時間貯存,在高鹽、低pH、高酸條件下,泡菜中大部分微生物生長受到抑制和死亡,存留的乳酸菌都耐鹽耐酸。工業(yè)化的泡菜都為自然發(fā)酵,粗獷式生產,芽孢桿菌多數(shù)來源于原料表面或環(huán)境,其對外界有害因子抵抗力強,生命力強,在乳酸菌減少的情況下逐漸占據(jù)優(yōu)勢。

    從屬水平上分析,可以把鹽漬豇豆和鹽漬青菜分為1類,鹽漬蘿卜和鹽漬榨菜各分為1類,具體分析見圖2A。細菌分為6個屬,包含20個種,鹽漬豇豆中占6種,占主導的為高地芽孢桿菌(Bacillusaltitudinis,46.4%)和枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis,17.9%)。鹽漬蘿卜中占10種,占主導的為壁芽孢桿菌(Bacillusmuralis,23.8%)、高地芽孢桿菌(B.altitudinis,23.8%)和巨大芽孢桿菌(Bacillusmegaterium,14.3%)。鹽漬青菜中占10種,占主導的為高地芽孢桿菌(B.altitudinis,26.3%)、巨大芽孢桿菌(B.megaterium,21.1%)和甲基營養(yǎng)型芽孢桿菌(Bacillusmethylotrophicus,10.5%)。鹽漬榨菜中占8種,占主導的為消化乳桿菌(Lactobacillusalimentarius,29.2%)、高地芽孢桿菌(B.altitudinis,29.2%)和巨大芽孢桿菌(B.megaterium,20.1%),4種不同原料泡菜樣品細菌群落結構詳見圖2B。

    細菌通過相似度分析,除了鹽漬榨菜和青菜、鹽漬榨菜和蘿卜相似性較差外,其余泡菜間相似性都大于0.7,差異小,說明泡菜發(fā)酵到后期,經過環(huán)境對菌群的“自凈化”,原料種類對細菌影響較小,見表3。

    圖2 四個不同原料泡菜細菌heatmap圖Fig.2 Heatmap diagram of bacteria in four pickles with different raw materials

    相似性系數(shù)JLQZJ10.7810.8870.823L10.7890.625Q10.719Z1

    泡菜發(fā)酵到后期,由于酸度和低pH的原因,微生物數(shù)量較少,此階段發(fā)酵微弱,處于發(fā)酵貯藏階段。泡菜在貯藏過程中,由于受到環(huán)境或者人為因素的影響,泡菜的品質會逐漸降低,出現(xiàn)軟化、“生花”等腐敗現(xiàn)象,這主要與腐敗微生物有關。本實驗鑒定細菌多數(shù)來源于蔬菜的表面和環(huán)境,具有耐酸耐鹽能力,這些菌與鹽漬發(fā)酵泡菜品質降低相關。其中,蔡炯等[15]研究了腐敗泡菜中甲級營養(yǎng)型芽孢桿菌、枯草芽孢桿菌、地衣芽孢桿菌等是腐敗泡菜中主要的微生物。王猛等[16]發(fā)現(xiàn)腐敗泡菜中出現(xiàn)甲級營養(yǎng)型芽孢桿菌、枯草芽孢桿菌等。

    2.3 真菌群落構成

    4種不同原料泡菜樣品中共分離出真菌71株,其中鹽漬豇豆、鹽漬蘿卜、鹽漬青菜、鹽漬榨菜分別鑒定出26,20,17,8株。經鑒定,71株真菌分為7個屬,分別為Millerozyma、畢赤酵母屬(Pichia)、布勒擲孢酵母屬(Bullera)、德巴利氏酵母屬(Debaryomyces)、接合酵母屬(Zygosaccharomyces)、威克漢姆酵母屬(Wickerhamomyces)、假絲酵母屬(Candida)。鹽漬豇豆中假絲酵母屬為優(yōu)勢菌,占到76.9%;鹽漬蘿卜中德巴利氏酵母屬和接合酵母屬占主導,分別占到55.0%和20.0%;鹽漬青菜中假絲酵母屬和畢赤酵母屬占主導,分別占到70.6%和23.5%;鹽漬榨菜中假絲酵母屬和德巴利氏酵母屬占主導,分別占到75.0%和25.0%。

    圖3 四個不同原料泡菜真菌heatmap圖Fig.3 Heatmap map of four pickles fungi with different raw materials

    從屬水平上分析,可以把鹽漬豇豆和鹽漬榨菜分為1類,鹽漬蘿卜和鹽漬青菜各分為1類,具體分析見圖3A。

    真菌7個屬的菌株與以下8個種比較相近,其中鹽漬豇豆占5種,占主導的為蜂生假絲酵母(Candidaapicola),占到76.9%;鹽漬蘿卜中占4種,占主導的為漢遜德巴利酵母(Debaryomyceshansenii)和二孢結合酵母(Zygosaccharomycesbisporus),分別占到55.0%、20.0%;鹽漬青菜中占4種,占主導的為埃切假絲酵母(Candidaetchellsii)和膜醭畢赤酵母(Pichiamembranifaciens),分別占到55.8%、23.5%;鹽漬榨菜中占2種,煉乳假絲酵母(Candidalactiscondensi)和漢遜德巴利酵母(D.hansenii)占主導,分別占到75.0%、25.0%,該結果與羅青春等人的研究結果相一致。4種不同原料泡菜樣品細菌群落結構見圖3B。

    真菌通過相似度分析,豇豆與榨菜較相似,蘿卜與青菜相似性較差,說明不同原料種類泡菜后期真菌群落結構不同,該結果和聚類分析相一致,見表4。

    表4 四個不同原料泡菜樣品真菌相似性Table 4 Fungi similarity of four pickle samples with different raw materials

    有機酸形成酸性環(huán)境,有利于發(fā)酵蔬菜的貯藏,其對腐敗微生物具有抑制作用[17]。泡菜在發(fā)酵后期,乳酸菌生長受到抑制,數(shù)量降低,且乳酸被一些酵母消耗[18-23]。酵母菌在泡菜發(fā)酵過程中能產生乙醇,一定量的條件下可增加泡菜的風味,其與有機酸等結合生成酯類等香氣。酵母菌在厭氧的條件下能產生芳樟醇、苯乙醇等萜類物質,還產生乙酸乙酯等酯類香氣[24]。

    其中德巴利氏酵母是泡菜中常見的一種酵母,利用大量糖進行繁殖產生乙醇、3-甲基-1-丁醇等物質[25];球擬酵母可產生烷基苯酚類香味物質,漢遜氏酵母發(fā)酵力強,能產生乙酸乙酯[26],這可能是二輪鹽漬泡菜比一次鹽漬泡菜香氣更足的原因。同時也發(fā)現(xiàn),泡菜存在的假絲酵母、畢赤酵母是泡菜中典型的腐敗酵母,大量研究報道這些微生物與泡菜產生浮膜、腐敗等有關[27-29]。

    3 結論

    通過可培養(yǎng)方法結合16S rDNA和26S rDNA序列鑒定技術,對四川工業(yè)化二輪鹽漬泡菜中細菌和真菌群落結構進行分析。結果表明:長時間儲存的工業(yè)化鹽漬泡菜pH低、酸度和鹽度高,微生物數(shù)量都小于105CFU/mL,發(fā)酵程度微弱。4種不同原料泡菜中細菌分離鑒定出93株菌,總共6個屬20個種,4種不同原料泡菜芽孢桿菌屬占主導,豇豆、蘿卜、青菜和榨菜的主要優(yōu)勢細菌為B.altitudinis和B.subtilis;B.muralis,B.altitudinis和B.megaterium;B.altitudinis,B.megaterium和B.methylotrophicus;L.alimentarius,B.altitudinis和B.megaterium。真菌共分離鑒定出71株菌,共分為7個屬8個種,豇豆、蘿卜、青菜和榨菜的主要優(yōu)勢真菌為Candida;Debaryomyces和Zygosaccharomyces;Candida和Pichia;Candida和Debaryomyces。其中Bacillus,Candida,Pichia等是降低泡菜品質的腐敗微生物,可能與長時間鹽漬發(fā)酵泡菜品質逐漸降低有關,同時二輪鹽漬發(fā)酵泡菜中存在球擬酵母和漢遜氏酵母等增香酵母,這與二輪鹽漬泡菜比一次鹽漬泡菜香有關。不同原料泡菜在后熟階段細菌差異較小,真菌差異較大,此結果揭示了四川工業(yè)化二輪鹽漬泡菜長時間儲存后微生物群落結構,為企業(yè)生產和研發(fā)耐鹽耐酸的直投式菌劑提供了參考價值。

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