梁 瑩,李劍波,邵欣寧,林 柳,雷 鳴△
(1廣州市第八人民醫(yī)院腎內(nèi)科,廣東 廣州 510060;2中山大學(xué)附屬第一醫(yī)院腎內(nèi)科,廣東 廣州 510080)
侵襲和轉(zhuǎn)移是影響腎癌患者整體預(yù)后的重要因素。盡管目前腎癌包括手術(shù)、放化療在內(nèi)的治療方式和效果長(zhǎng)足進(jìn)展,但腎癌患者的總體預(yù)后并不能令人滿意。超過(guò)30%的腎癌患者會(huì)發(fā)生轉(zhuǎn)移[1]。侵襲轉(zhuǎn)移也是導(dǎo)致腎癌進(jìn)展、復(fù)發(fā)和致死的主要原因,嚴(yán)重影響患者的療效和生存質(zhì)量。因此,深入研究腎癌轉(zhuǎn)移的發(fā)生機(jī)制,尋找可以有效干預(yù)腎癌轉(zhuǎn)移的分子靶點(diǎn),是提高腎癌患者療效和改善其預(yù)后的有效途徑[2-3]。學(xué)術(shù)界普遍認(rèn)為,上皮-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)過(guò)程在腎癌等惡性腫瘤的侵襲轉(zhuǎn)移中具有重要作用,因此探尋其中與腎癌轉(zhuǎn)移相關(guān)的分子,有助于豐富對(duì)于腎癌轉(zhuǎn)移機(jī)制的認(rèn)識(shí),開(kāi)發(fā)針對(duì)腎癌EMT的有效治療靶點(diǎn),對(duì)實(shí)現(xiàn)抑制腎癌的侵襲轉(zhuǎn)移具有科學(xué)意義[4]。近年來(lái)研究表明,微小RNA(microRNA, miR)-145與多種惡性腫瘤的發(fā)生發(fā)展有密切關(guān)系,可能通過(guò)多種分子生物途徑發(fā)揮抑癌作用有望成為腎癌的基因治療靶點(diǎn)[5]。然而,在對(duì)腎癌進(jìn)行miR-145靶向基因治療后,對(duì)腎癌細(xì)胞上皮-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化和侵襲轉(zhuǎn)移的影響及其機(jī)制尚不明確[6]。本研究對(duì)miR-145的靶基因進(jìn)行生物信息學(xué)預(yù)測(cè)后提示,與多種惡性腫瘤生物學(xué)行為相關(guān)的解整聯(lián)蛋白-金屬蛋白酶28(a disintegrin and metalloproteinase 28,ADAM28)可能是其在細(xì)胞中的作用靶蛋白[7]。本項(xiàng)工作采用miR-145模擬物(miR-145 mimics)轉(zhuǎn)染人腎癌細(xì)胞系A(chǔ)-498細(xì)胞,觀察其對(duì)腎癌細(xì)胞上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化過(guò)程的影響,進(jìn)而通過(guò)研究其對(duì)EMT相關(guān)功能蛋白及ADAM28蛋白表達(dá)水平的影響,進(jìn)一步明確其分子生物學(xué)機(jī)制。
miR-145 mimics及其陰性對(duì)照(mimic negative control, MNC)、miR-145 及內(nèi)參照RNU6的PCR引物、雙螢光素酶檢驗(yàn)試劑盒、野生型的WT-ADAM28 psiCHECKTM-2載體及3’UTR定點(diǎn)突變后的MT-ADAM28 psiCHECKTM-2載體和3’UTR定點(diǎn)突變的ADAM28過(guò)表達(dá)質(zhì)粒載體購(gòu)自廣州愛(ài)科生物技術(shù)有限公司。DMEM高糖培養(yǎng)液和胎牛血清購(gòu)自GIBCO;轉(zhuǎn)染試劑脂質(zhì)體2000購(gòu)自Invitrogen; Transwell小室購(gòu)自NUNC; real-time PCR和逆轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)試劑盒購(gòu)自TaKaRa。兔抗人ADAM28、兔抗人波形蛋白(vimentin)、兔抗人E-鈣黏蛋白(cadherin)和兔抗人β-肌動(dòng)蛋白(actin)抗體購(gòu)自Abcam。腎癌細(xì)胞株A-498購(gòu)自美國(guó)模式培養(yǎng)物集存庫(kù)(ATCC? Number: HTB-44TM)。
2.1miRNA轉(zhuǎn)染和RT-qPCR檢測(cè) 以含10%胎牛血清的DMEM高糖培養(yǎng)液常規(guī)培養(yǎng)A-498腎癌細(xì)胞株。按照轉(zhuǎn)染試劑脂質(zhì)體2000試劑說(shuō)明書(shū),在細(xì)胞融合度約60%時(shí)以miRNA mimics終濃度為65 nmol/L轉(zhuǎn)染miR-145 mimics和MNC,分別作為M145和MNC組轉(zhuǎn)染48 h;以未轉(zhuǎn)染A-498細(xì)胞作為空白對(duì)照(mock control, MC)組。TRIzol法提取各組細(xì)胞總RNA,逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA。以U6 snRNA為內(nèi)參照,進(jìn)行RT-qPCR檢測(cè)。miR-145的正向引物序列為 5’-ACACTCCAGCTCCATGGGGGTTTTCCCAGGA-3’,反向引物序列為5’-CTCAACTGAGTCGGTGGGCAGTTGAGAGGGATTC-3’;U6的正向引物序列為5’-CTCGCTTCGGCAGCACA-3’,反向引物序列為5’-AACGCTTCACGAATTTGCGT-3’。PCR條件為: 92 ℃ 35 s; 92 ℃ 5 s, 57 ℃ 38 s, 52個(gè)循環(huán)。循環(huán)延伸末端收集熒光信號(hào),所得數(shù)據(jù)用2-ΔΔCt法進(jìn)行分析計(jì)算。
2.2Transwell法檢測(cè)細(xì)胞侵襲能力 將Matrigel稀釋后,每個(gè)Transwell小室加入45 μL,37 ℃凝固2 h。分組轉(zhuǎn)染后,各組細(xì)胞分別取對(duì)數(shù)期0.8×105個(gè)細(xì)胞160 μL無(wú)血清培養(yǎng)液重懸后加入Transwell小室上室。Transwell下室加入500 μL含10%胎牛血清的DMEM高糖培養(yǎng)液。細(xì)胞培養(yǎng)箱37 ℃常規(guī)培養(yǎng)48 h,清除上室底膜未穿膜上室細(xì)胞,甲醇固定穿膜上室細(xì)胞20 min,PBS沖洗。1%結(jié)晶紫染色30 min,PBS沖洗。顯微鏡下觀察上室底膜,計(jì)數(shù)穿過(guò)小孔細(xì)胞[8]。
2.3miR-145靶基因預(yù)測(cè) 運(yùn)用生物信息學(xué)方法明確miRBase數(shù)據(jù)庫(kù)中搜索hsa-miR-145基因的序列, 進(jìn)而分析miR-145序列的特征并預(yù)測(cè)其靶基因。
2.4Western blot法檢測(cè)細(xì)胞蛋白表達(dá)的變化 腎癌細(xì)胞分組轉(zhuǎn)染后48 h,按照既往報(bào)道方法收集細(xì)胞,提取總蛋白,進(jìn)行Western blot檢測(cè),分析ADAM28、波形蛋白、E-鈣黏蛋白和內(nèi)參照β-actin蛋白的表達(dá)[8]。
2.5ADAM28過(guò)表達(dá)對(duì)miR-145抑制EMT的拮抗作用 采用ADAM28過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染M145組細(xì)胞系,并通過(guò)Western blot檢測(cè)ADAM28過(guò)表達(dá)后M145組A-498細(xì)胞中ADAM28和EMT相關(guān)蛋白的表達(dá)情況。
2.6雙螢光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)檢測(cè)miR-145與ADAM28的關(guān)系 采用野生型的ADAM28 psiCHECKTM-2載體及定點(diǎn)突變后的ADAM28 psiCHECKTM-2載體,分別和miR-145 mimics一起通過(guò)脂質(zhì)體共轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染48 h后檢測(cè)螢光素酶相對(duì)活性。
采用SPSS 13.0軟件進(jìn)行分析。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示。多組間比較用單因素方差分析(one-way ANOVA),兩組之間比較采用LSD-t檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
轉(zhuǎn)染A-498細(xì)胞48 h后,RT-qPCR檢測(cè)各組細(xì)胞中miR-145的表達(dá)水平。結(jié)果顯示,與MC組相比,M145組miR-145的表達(dá)水平顯著上調(diào)(P<0.05),而MNC組的miR-145表達(dá)水平與MC組差異沒(méi)有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見(jiàn)圖1。
Figure 1.RT-qPCR was used to detect the expression of miR-145 in renal carcinoma A-498 cells. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsMC group.
圖1 RT-qPCR檢測(cè)各組A-498腎癌細(xì)胞中miR-145的表達(dá)水平
Transwell實(shí)驗(yàn)中,經(jīng)過(guò)48 h培養(yǎng),觀察受到染色的穿膜細(xì)胞數(shù)量。結(jié)果顯示,M145組侵襲細(xì)胞數(shù)量顯著低于MC組(P<0.05),而MNC組的細(xì)胞數(shù)量與MC組之間的差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見(jiàn)圖2。
Figure 2.The invasion ability of A-498 cells in each group was detected by Transwell assay. The scale bar=50 μm. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsMC group.
圖2 Transwell實(shí)驗(yàn)比較各組A-498細(xì)胞侵襲能力
Western blot實(shí)驗(yàn)顯示,與MC組相比,M145組vimentin蛋白表達(dá)量顯著降低(P<0.05),E-cadherin蛋白表達(dá)量顯著升高(P<0.05),而MNC組與對(duì)照組之間的蛋白表達(dá)無(wú)顯著差異(P>0.05),見(jiàn)圖3。
Figure 3.Western blot assay was used to detect the expression level of EMT-related proteins in A-498 cells of each group. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsMC group.
圖3 Western blot實(shí)驗(yàn)檢測(cè)各組A-498細(xì)胞EMT相關(guān)蛋白表達(dá)水平
miRBase生物信息學(xué)預(yù)測(cè)結(jié)果表明,miR-145與ADAM28的3’-UTR部分互補(bǔ),ADAM28可能是miR-145的靶基因,見(jiàn)圖4。
Figure 4.Bioinformatic prediction results of miR-145 target genes from bioinformatics prediction.
圖4 miR-145靶基因生物信息學(xué)預(yù)測(cè)結(jié)果
Western blot實(shí)驗(yàn)顯示,與MC組相比,M145組ADAM28蛋白表達(dá)量顯著降低(P<0.05),ADAM28蛋白表達(dá)量的Western blot結(jié)果與miR-145的表達(dá)水平表現(xiàn)出負(fù)相關(guān)關(guān)系。而MNC組與MC組之間的ADAM28蛋白表達(dá)無(wú)顯著差異(P>0.05),見(jiàn)圖5。
Figure 5.Western blot assay was used to detect the expression level of ADAM28 protein in A-498 cells of each group. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsMC group.
圖5 Western blot實(shí)驗(yàn)檢測(cè)各組A-498細(xì)胞ADAM28蛋白表達(dá)水平
Western blot實(shí)驗(yàn)檢測(cè)到,相比單純miR-145 mimic轉(zhuǎn)染組細(xì)胞,采用ADAM28過(guò)表達(dá)質(zhì)粒聯(lián)合轉(zhuǎn)染后的M145組細(xì)胞ADAM28表達(dá)量升高(P<0.05),同時(shí),細(xì)胞中vimentin蛋白表達(dá)量顯著升高(P<0.05),E-cadherin蛋白表達(dá)量顯著降低(P<0.05),見(jiàn)圖6。
Figure 6. The effect of miR-145 on the expression of EMT-rela-ted proteins in A-498 cells with or without ADAM28 over-expression. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsM145 group.
圖6 ADAM28過(guò)表達(dá)拮抗miR-145對(duì)A-498細(xì)胞EMT相關(guān)功能蛋白表達(dá)的影響
雙螢光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)結(jié)果顯示miR-145能顯著抑制野生型WT-ADAM28 psiCHECKTM-2載體的發(fā)光強(qiáng)度(P<0.05),而無(wú)法抑制3’UTR定點(diǎn)突變型MT-ADAM28 psiCHECKTM-2載體的發(fā)光強(qiáng)度(P>0.05),見(jiàn)圖7,說(shuō)明ADAM28為miR-145的下游靶基因。
Figure 7.The relative luciferase activity of ADAM28. Mean±SD.n=3.*P<0.05vsMC group.
圖7 ADAM28的螢光素酶活性比較
miR-145的基因定位于染色體5q32,與miR-143組成一個(gè)轉(zhuǎn)錄單位,生成同一個(gè)前體,經(jīng)過(guò)內(nèi)切酶剪切后形成[9]。miR-145在人體內(nèi)子宮、卵巢、睪丸、前列腺、脾臟和心臟等組織器官中高表達(dá),而在宮頸癌、乳腺癌、前列腺癌、肺癌、肝癌、膀胱癌、卵巢癌和腦垂體瘤等低表達(dá)[10]。所以,miR-145有可能在腎癌發(fā)生、發(fā)展中扮演抑癌基因的作用[6]。本研究嘗試采用miR-145 mimics實(shí)現(xiàn)對(duì)人腎癌細(xì)胞A-498中miR-145的過(guò)表達(dá),進(jìn)而檢測(cè)到對(duì)腎癌細(xì)胞侵襲能力的抑制,說(shuō)明miR-145高表達(dá)具有對(duì)人腎癌細(xì)胞A-498侵襲能力的抑制效果。
既往研究表明,miR-145與多種惡性腫瘤的上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化過(guò)程密切相關(guān)。EMT在腫瘤遷移和侵襲的發(fā)生這一多因素多步驟的動(dòng)態(tài)過(guò)程中起重要作用,是腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移的重要分子生物學(xué)機(jī)制[11]。EMT是胚胎發(fā)育及腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移中,上皮細(xì)胞通過(guò)特定程序轉(zhuǎn)化為具有間質(zhì)表型細(xì)胞的生物學(xué)過(guò)程,主要表現(xiàn)為細(xì)胞黏附分子(如上皮標(biāo)志物E-cadherin)表達(dá)減少及間充質(zhì)標(biāo)志物(如vimentin)表達(dá)增多等。為明確miR-145抑制腎癌細(xì)胞遷移能力和侵襲能力是否是通過(guò)對(duì)A-498細(xì)胞的EMT調(diào)控實(shí)現(xiàn)的,本研究對(duì)EMT相關(guān)功能蛋白進(jìn)行了檢測(cè),結(jié)果表明,miR-145過(guò)表達(dá)后,vimentin蛋白表達(dá)量顯著降低,E-cadherin蛋白表達(dá)量顯著升高,提示miR-145實(shí)現(xiàn)了對(duì)EMT過(guò)程的抑制,進(jìn)而進(jìn)行了對(duì)腎癌細(xì)胞遷移能力和侵襲能力的抑制。
MicroRNA的主要作用機(jī)制是與靶蛋白mRNA的3’-UTR形成互補(bǔ)配對(duì),進(jìn)而使其降解,抑制靶蛋白的表達(dá)。對(duì)靶基因正確進(jìn)行準(zhǔn)確的預(yù)測(cè)與鑒定,是研究microRNA生物學(xué)功能的基礎(chǔ)和關(guān)鍵。對(duì)目的microRNA進(jìn)行生物信息學(xué)分析,能夠迅速預(yù)測(cè)出可能的靶基因作用位點(diǎn),但是根據(jù)不同原則尋找靶基因,均可能出現(xiàn)假陽(yáng)性和假陰性的預(yù)測(cè)結(jié)果。所以生物信息學(xué)軟件預(yù)測(cè)靶基因后,可以進(jìn)一步采用生物學(xué)實(shí)驗(yàn)方法進(jìn)行驗(yàn)證,以進(jìn)一步研究其生物學(xué)功能[12]。本研究的生物信息學(xué)預(yù)測(cè)結(jié)果提示,ADAM28為miR-145的潛在靶基因,且其熱穩(wěn)定型和基因保守性較高。然而,單純從miR-145和下游靶基因基因序列上的相互作用預(yù)測(cè)模型的數(shù)據(jù)庫(kù)中并不能確切推斷其具體的生物學(xué)功能,及具體起效的靶蛋白。所以,在預(yù)測(cè)靶蛋白之后,必須對(duì)miR-145和靶基因的調(diào)控機(jī)制進(jìn)行基因表達(dá)層面和功能調(diào)控層面的驗(yàn)證。如果能夠通過(guò)生物學(xué)實(shí)驗(yàn)證實(shí)兩者的直接調(diào)節(jié)關(guān)系,將有助深入了解miR-145在腎癌細(xì)胞的增殖、分化和凋亡以及與腎癌的發(fā)生、發(fā)展機(jī)制。ADAM28是ADAM家族的重要成員之一,由多個(gè)結(jié)構(gòu)域組成,包括前肽、金屬蛋白酶、表皮生長(zhǎng)因子樣結(jié)構(gòu)域、跨膜結(jié)構(gòu)域和細(xì)胞質(zhì)尾結(jié)構(gòu)域等。與其它ADAM相比,ADAM28是通過(guò)在細(xì)胞表面形成成熟的跨膜結(jié)構(gòu)域后,通過(guò)特異性自催化過(guò)程激活的[13]。報(bào)道顯示,ADAM28參與包括肺癌、乳腺癌、膀胱癌和白血病在內(nèi)的很多惡性腫瘤的生長(zhǎng)和轉(zhuǎn)移,在惡性腫瘤細(xì)胞中,對(duì)其進(jìn)行靶向治療可能具有重要臨床意義[7,13]。本研究觀察到,對(duì)miR-145作用于腎癌細(xì)胞后,抑制ADAM28蛋白表達(dá)的效果顯著,細(xì)胞中的ADAM28蛋白表達(dá)水平顯著降低,這個(gè)結(jié)果促使我們對(duì)ADAM28是否是miR-145的靶蛋白進(jìn)行進(jìn)一步的深入探索。
我們構(gòu)建了3’-UTR突變的ADAM28過(guò)表達(dá)質(zhì)粒,使其轉(zhuǎn)染高表達(dá)miR-145的A-498細(xì)胞。伴隨ADAM28表達(dá)量的升高,細(xì)胞中vimentin蛋白表達(dá)量顯著升高,E-cadherin蛋白表達(dá)量顯著降低,說(shuō)明3’-UTR突變后引起的ADAM28過(guò)表達(dá)可以實(shí)現(xiàn)對(duì)miR-145抑制EMT的拮抗作用。我們進(jìn)而通過(guò)雙螢光素酶檢驗(yàn)結(jié)果對(duì)兩者的直接相關(guān)關(guān)系進(jìn)行探索,觀察到miR-145只能抑制野生型WT-ADAM28 psiCHECKTM-2載體的發(fā)光強(qiáng)度,而無(wú)法抑制3’UTR定點(diǎn)突變后的MT-ADAM28-psiCHECKTM-2載體的發(fā)光強(qiáng)度,說(shuō)明ADAM28為miR-145直接的下游靶基因。
綜上所述,miR-145可能通過(guò)降低下游靶基因ADAM28水平影響EMT相關(guān)蛋白表達(dá),進(jìn)而抑制人腎癌細(xì)胞A-498的EMT功能,有可能成為腎癌基因治療的良好靶點(diǎn)。