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    基于D-SERS法表征兩性霉素B對(duì)白色念珠菌抑制作用的研究

    2019-05-16 05:54:16范加騰許激揚(yáng)
    藥學(xué)實(shí)踐雜志 2019年2期
    關(guān)鍵詞:檢測(cè)

    范加騰,陸 峰,許激揚(yáng)

    (中國(guó)藥科大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,江蘇 南京,210000)

    近20年來(lái),全球真菌感染率急速上升,尤其是深部真菌感染的死亡率高達(dá)40%[1-2],其中,念珠菌是最主要的條件性致病真菌之一。

    目前,能夠治療真菌感染的藥物主要有:唑類抗真菌藥物,此類藥物為抑菌劑,僅能抑制白色念珠菌的生長(zhǎng),而不能起到殺菌效果[3-5]。烯丙胺類抗真菌藥物,主要治療淺部真菌感染。棘白菌素類藥物對(duì)白色念珠菌具有殺滅作用[6]。而多烯類抗真菌藥物,以其殺菌效果強(qiáng)、治療范圍廣、耐藥菌較少為廣大醫(yī)務(wù)人員所青睞,本研究以多烯類抗真菌藥物兩性霉素B作為研究對(duì)象[7],來(lái)表征該藥物對(duì)白色念珠菌的抑制作用。

    傳統(tǒng)的用于表征藥物與菌株相互作用的方法非常費(fèi)時(shí),需要培養(yǎng)菌株以檢測(cè)菌株生長(zhǎng)或生長(zhǎng)行為[8-9]。因此,亟需更加快速、簡(jiǎn)便的方法。

    動(dòng)態(tài)表面增強(qiáng)拉曼光譜法(D-SERS),即在納米溶膠從濕態(tài)到干態(tài)的轉(zhuǎn)變過(guò)程中進(jìn)行檢測(cè)[10-15]。隨著D-SERS的調(diào)控條件的優(yōu)化以及其本身強(qiáng)大的優(yōu)勢(shì),其應(yīng)用范圍也越來(lái)越廣泛,我們研究小組曾將其成功地應(yīng)用于相關(guān)的藥品快檢[16]和對(duì)植物性膳食補(bǔ)充劑中摻雜藥物的高靈敏現(xiàn)場(chǎng)檢測(cè)[17]中。因此,筆者決定采用動(dòng)態(tài)增強(qiáng)拉曼光譜法分析藥物與菌株的相互作用,以期建立更加快速、簡(jiǎn)便的方法來(lái)表征兩性霉素B對(duì)白色念珠菌的抑制作用,為后續(xù)對(duì)微生物菌株的鑒別和分析藥物的作用效果和機(jī)制奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 藥品和試劑

    硝酸銀(AgNO3)、二水合檸檬酸三鈉(Na3C6H5O7·2H2O)、丙酮(C2H6O)、乙醇、雙氧水(30% H2O2)、濃硫酸(H2SO4)、硝酸(HNO3)、氫氧化鈉(NaOH)、碳酸氫鈉(NaHCO3)等均為分析純,購(gòu)自國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。臨床敏感白色念珠菌311由上海長(zhǎng)海醫(yī)院皮膚科提供。實(shí)驗(yàn)用水為三蒸水和去離子水。酵母浸膏、葡萄糖(C6H12O6)、蛋白胨、瓊脂、RPMI 1640(Gibco BRL)、嗎啡啉丙磺酸(MOPS)(Sigma)購(gòu)自于探索平臺(tái)。對(duì)照品兩性霉素B(AMB)、米卡芬凈(MCF)購(gòu)自于大連美倫生物科技有限公司。

    YPD培養(yǎng)液:酵母浸膏10 g,葡萄糖20 g,蛋白胨20 g,加900 ml三蒸水溶解定容至1 000 ml。高溫高壓滅菌(121 ℃,15 min),放于干燥處備用。

    沙氏培養(yǎng)基:葡萄糖40 g,蛋白胨10 g,瓊脂20 g,加入三蒸水溶解并定容至1 000 ml。121 ℃,15 min高壓蒸汽滅菌。

    RPMI 1640培養(yǎng)液:RPMI 1640(Gibco BRL)10 g、NaHCO32.0 g、嗎啡啉丙磺酸(MOPS)(Sigma)34.5 g(0.165 mol/L),加三蒸水900 ml溶解,用1 mol/L NaOH調(diào)pH至7.0(25 ℃)。三蒸水定容至1 000 ml,0.22 μm微孔濾膜過(guò)濾除菌,分裝后于4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    Piranha溶液:30% H2O2與濃硫酸按體積比3∶7稱量,將30% H2O2溶液緩慢加入濃硫酸中,于75 mm培養(yǎng)皿中靜置,冷卻后備用。

    1.2 儀器

    K-sens拉曼光譜系統(tǒng)(上海復(fù)享公司);TU-1901型雙光束紫外可見分光光度計(jì)(北京普析通用儀器有限責(zé)任公司);TG16-WS型高速離心機(jī)(上海盧湘離心機(jī)有限公司);KQ-250DB型數(shù)控超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司);Zeiss EVO MA-10掃描電鏡顯微鏡(德國(guó)Carl-Zeiss);Eppendorf 5417R高速冷凍離心機(jī),(德國(guó)Eppendorf);Zerasizer Nano ZSE納米粒度儀(英國(guó)馬爾文);JEM-2100F 200 kV場(chǎng)發(fā)射透射電子顯微鏡(日本JEOL);Vortex-Genie2多功能旋渦混合器(美國(guó)Scientific Industries);不銹鋼立式電熱壓力蒸汽滅菌鍋(上海三申);MJX型智能霉菌培養(yǎng)箱(寧波江南儀器廠);Multiskan MK3酶標(biāo)分析儀(美國(guó)Thermo fisher);TS-1型脫色搖床(江蘇海門市麒麟醫(yī)用儀器廠)。

    1.3 增強(qiáng)試劑的制備與表征

    本實(shí)驗(yàn)采用經(jīng)典的Lee法制備納米銀膠[18]。將36 mg的AgNO3溶于200 ml 去離子水中,加熱攪拌至微沸,加入4 ml質(zhì)量分?jǐn)?shù)1%復(fù)溶檸檬酸三鈉水溶液,溶液顏色由無(wú)色透明逐漸變成淡黃色,再變?yōu)榈疑⒙詭ЬG色,保持微沸30 min停止反應(yīng),水浴冷卻。即得到粒徑約為75 nm的納米銀球,避光保存。取用銀膠溶液時(shí),由于納米銀的制備過(guò)程中有微量表面離子干擾,故將配好的納米銀溶液進(jìn)行表面離子清洗。具體方法為將銀膠溶液以6 500 r/min離心,6 min后除去上清液,以相同體積的去離子水復(fù)溶,振蕩搖勻后備用。同時(shí),通過(guò)紫外以及掃描電鏡圖對(duì)銀膠進(jìn)行表征。

    1.4 細(xì)胞培養(yǎng)與MIC80的測(cè)定

    取-80 ℃冰箱中凍存的臨床白色念珠菌,接種于1 ml YPD培養(yǎng)液中,于30 °C,200 r/min振蕩培養(yǎng)16 h,使白色念珠菌處于指數(shù)生長(zhǎng)后期,活化2次。劃板并培養(yǎng)于沙氏培養(yǎng)基上,2 d后長(zhǎng)至正常菌株大小。待光譜測(cè)定前,將白色念珠菌接種于1 ml YPD培養(yǎng)液中,于上述條件下傳代培養(yǎng)16 h。

    白色念珠菌的MIC80測(cè)定方法為:將傳代好的白色念珠菌用新鮮RPMI 1640培養(yǎng)液稀釋至105CFU,分別加入96孔板,加入相應(yīng)體積AMB藥物標(biāo)準(zhǔn)品溶液,按照倍比稀釋法,使AMB濃度分別為16、8、4、2、1、0.5、0.25、0.125、0.062 5、0 μg/ml ,置于30°C培養(yǎng)箱,培養(yǎng)24 h后用酶標(biāo)儀測(cè)定每孔光密度值,并計(jì)算相應(yīng)的MIC80值。

    1.5 光譜檢測(cè)

    為除去硅片表面有機(jī)物,需要對(duì)硅片進(jìn)行清洗。首先將硅片放入新配制并放置冷卻的Piranha溶液中浸泡。待取用時(shí),將硅片取出并用大量去離子水進(jìn)行沖洗,之后分別用丙酮、乙醇、去離子水超聲清洗各1 h,干燥后備用。

    考慮菌液中YPD溶液對(duì)結(jié)果的干擾,故用去離子水對(duì)傳代16 h的菌液清洗。具體方法為將菌液以5 000 r/min進(jìn)行離心4 min,除去上清液,加入等體積去離子水。重復(fù)3次確保YPD培養(yǎng)液去除徹底。

    將用二甲基亞砜(DMSO)溶解后的兩性霉素B加入到清洗干凈的菌液中,配成藥物濃度為0、0.125、0.25、0.5、1、2、4、8、16 μg/ml的溶液(且DMSO濃度低于2%),渦旋混勻后放入搖床中,作用時(shí)間5、60、120、240 min,將溶液進(jìn)行離心(5 000 r/min,4 min),去除上清夜,再加入等體積的去離子水,重復(fù)清洗3次。

    將清洗后的菌液和納米銀膠混合并渦旋振蕩混勻。取3 μl的混合溶液滴于硅片表面,無(wú)需干燥,直接置于拉曼光譜儀下檢測(cè)。光譜檢測(cè)參數(shù):激光功率100 mW,積分時(shí)間5 s,顯微系統(tǒng)放大倍數(shù)100。

    1.6 數(shù)據(jù)的預(yù)處理

    使用Matlab 13.0軟件對(duì)光譜數(shù)據(jù)進(jìn)行預(yù)處理,取光譜波段在550~1 800 cm-1用于光譜分析 (550 cm-1之前有硅片520 cm-1的干擾,而1 800 cm-1后幾乎沒(méi)有光譜特征),后面依次對(duì)光譜進(jìn)行基線校正(airPLS法),平滑(Sgolay法)以及規(guī)范化(Min-Max Normalization)。

    2 結(jié)果

    2.1 MIC80的測(cè)定

    常用的微量稀釋法作為一種金標(biāo)準(zhǔn)方法,準(zhǔn)確性好,測(cè)得AMB對(duì)白色念珠菌的最小抑菌濃度為1 μg/ml。

    2.2 納米銀球的表征

    在SERS基底中,最常見的是采用納米銀來(lái)增強(qiáng)拉曼信號(hào),而Lee法也成為了最經(jīng)典的制備方法。在生命科學(xué)領(lǐng)域,有不少將納米銀球用于細(xì)胞檢測(cè)的例子,尤其在微生物的檢測(cè)方面。因此,本研究制備納米銀來(lái)進(jìn)行微生物的拉曼信號(hào)的增強(qiáng)。圖1為納米銀球的紫外表征和掃描電鏡圖。圖1中可以觀察到納米銀近似球狀,因此在紫外圖中表現(xiàn)出的是一個(gè)單峰。納米粒子的分散程度通??捎米贤馕辗宓陌敕鍖拋?lái)反映。約為50 nm的半峰寬體現(xiàn)出納米粒子具有良好的分散性,納米銀球排列均勻。

    2.3 AMB與白色念珠菌作用的光譜圖

    將兩性霉素B溶液加入到清洗干凈的菌液中,配成藥物濃度為0、0.125、0.25、0.5、1、2、4、8、16 μg/ml的溶液,渦旋混勻后放入搖床中孵育5、60、120、240 min,之后將混合液清洗3遍后滴于硅片表面進(jìn)行檢測(cè)。采集到的光譜圖進(jìn)行基線校正,平滑,歸一化后,選取光譜波段550~1800 cm-1,得到結(jié)果如圖2。從圖中可以看出拉曼位移在656 cm-1和729 cm-1處的峰強(qiáng)度最強(qiáng)且變化最為明顯。當(dāng)藥物濃度比較低甚至為0 μg/ml的時(shí)候,656 cm-1處的峰強(qiáng)要高于729 cm-1處的峰強(qiáng)度,隨著藥物濃度逐漸升高,656 cm-1處的峰強(qiáng)逐漸降低,729 cm-1處的峰強(qiáng)逐漸升高。

    因此,筆者將考察該兩處拉曼位移峰的峰強(qiáng)比和藥物濃度之間的關(guān)系(峰比值法),來(lái)觀察不同濃度的AMB對(duì)白色念珠菌拉曼光譜的影響(圖3)。從圖中可以清楚的看出隨著AMB濃度的升高,峰強(qiáng)比迅速下降,當(dāng)達(dá)到一定濃度后峰強(qiáng)比逐漸趨于平穩(wěn),即AMB濃度在0~2 μg/ml范圍內(nèi),峰強(qiáng)比與AMB濃度呈負(fù)相關(guān),而且當(dāng)藥物濃度為0.5 μg/ml時(shí)即可接近于高濃度的藥物作用時(shí)所表現(xiàn)出來(lái)的峰強(qiáng)比,低于AMB對(duì)白色念珠菌的最小抑菌濃度(MIC80)1 μg/ml,這在藥物量的使用上要優(yōu)于傳統(tǒng)的方法。從藥物的作用時(shí)間上分析,AMB與白色念珠菌作用5 min即可與作用60、120、240 min所測(cè)的譜圖效果一致,因此,AMB對(duì)白色念珠菌的抑制作用可以在其相互作用只有5 min的時(shí)間內(nèi),用所檢測(cè)的拉曼位移656 cm-1與729 cm-1處的峰強(qiáng)比來(lái)進(jìn)行表征,與傳統(tǒng)的方法相比,大大節(jié)省了實(shí)驗(yàn)時(shí)間。

    圖1 75 nm納米銀球的紫外吸收譜(A)和掃描電鏡圖(B)

    2.4 MCF與白色念珠菌作用的光譜圖

    同時(shí),筆者考察了同樣是殺菌劑的棘白菌素類抗生素米卡芬凈鈉(MCF)對(duì)白色念珠菌的抑制作用,將MCF用去離子水溶解,配成藥物濃度為0、0.0312 5、0.062 5、0.125、0.25、0.5、1、2、4 μg/ml的菌液,其他條件和分析方法與上述一致,結(jié)果見圖4和圖5。

    結(jié)果表明,MCF與白色念珠菌作用的時(shí)間為5 min、60 min和120 min時(shí),峰強(qiáng)比與MCF的濃度并沒(méi)有明顯的相關(guān)性,作用時(shí)間為120 min時(shí),只有高濃度的MCF下才會(huì)表現(xiàn)出MCF的濃度與峰強(qiáng)比趨于負(fù)相關(guān);當(dāng)作用時(shí)間高達(dá)240 min時(shí),MCF的濃度與峰強(qiáng)比趨于負(fù)相關(guān),且只在較高濃度2、4 μg/ml時(shí)峰值才趨于平穩(wěn),遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于MCF對(duì)白色念珠菌的MIC80(0.25 μg/ml)。

    圖2 AMB與白色念珠菌不同相互作用時(shí)間的拉曼光譜圖 A.孵育5 min;B.孵育60 min;C.孵育120 min;D.孵育240 min(AMB的濃度由a至i依次為16、8、4、2、1、0.5、0.25、0.125、0 μg/ml)

    圖3 不同作用時(shí)間對(duì)峰比值與AMB濃度的關(guān)系 A.5 min;B.60 min;C.120 min;D.240 min

    圖4 MCF與白色念珠菌不同相互作用時(shí)間的拉曼光譜圖 A.5 min;B.60 min;C.120 min;D.240 min(MCF的濃度由a至i依次為4、2、1、0.5、0.25、0.125、0.0625、0.03125、0 μg/ml)

    3 討論

    液體在硅片表面從濕到干變化的過(guò)程中,由于毛細(xì)現(xiàn)象,粒子的間距逐漸變小,團(tuán)聚增加的同時(shí)“熱點(diǎn)”也會(huì)相應(yīng)地增多,因此待測(cè)分析物的SERS信號(hào)大大增強(qiáng)(主要增強(qiáng)為電磁增強(qiáng))。白色念珠菌656 cm-1和729 cm-1的特征峰歸屬于嘌呤代謝物[19-21],因而產(chǎn)生較大拉曼散射截面的嘌呤代謝物能夠顯示在SERS光譜中。

    當(dāng)不同濃度AMB與白色念珠菌相互作用后,AMB濃度在0~2 μg/ml范圍內(nèi),拉曼位移656 cm-1與729 cm-1處的峰強(qiáng)比與AMB濃度成負(fù)相關(guān),當(dāng)AMB濃度在低于其最小抑菌濃度0.5 μg/ml時(shí)即可接近于高濃度的藥物作用時(shí)所表現(xiàn)出來(lái)的峰強(qiáng)比,且AMB與白色念珠菌作用時(shí)間僅為5 min時(shí)即可達(dá)到上述的規(guī)律及優(yōu)點(diǎn),因此,AMB對(duì)白色念珠菌的抑制作用可以在其相互作用只有5 min的時(shí)間內(nèi),用所檢測(cè)的拉曼位移656 cm-1與729 cm-1處的峰強(qiáng)比來(lái)進(jìn)行表征。

    關(guān)于2種殺菌藥物測(cè)定結(jié)果的差異,我們的解釋如下:由于MCF類藥物的作用機(jī)制是在細(xì)胞中非競(jìng)爭(zhēng)性抑制白色念珠菌細(xì)胞壁的重要組成成分β-1,3-葡聚糖合成,破壞細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)的完整性導(dǎo)致細(xì)胞死亡,因此其原因是可能由于此類藥物進(jìn)入細(xì)胞后非競(jìng)爭(zhēng)性抑制β-1,3-葡聚糖合成酶的作用,而不像AMB一樣造成膜孔致使細(xì)胞內(nèi)容物外流,其造成的損害過(guò)程較為緩慢的,但因此類藥物抑制了細(xì)胞壁的合成,隨著時(shí)間增長(zhǎng),藥物濃度升高,細(xì)胞壁的破壞較為嚴(yán)重,影響細(xì)胞膜的通透性,導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)容物外流,具有較大散射截面的嘌呤代謝物才能夠被檢測(cè)到,在光譜圖中顯示出來(lái)。

    4 結(jié)論

    本研究表明D-SERS法可用于描述AMB對(duì)白色念珠菌的殺菌作用,為表征AMB對(duì)白色念珠菌的抑制作用提供了一種更簡(jiǎn)單、快速的檢測(cè)方法。

    同時(shí),隨著科技的發(fā)展,方法的穩(wěn)定性得以提高后,還可進(jìn)一步應(yīng)用于其他藥物與菌株,其快速檢測(cè)能為臨床病原菌的早期診斷提供基礎(chǔ)。

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