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    甲酸鹽和葡萄糖對(duì)兩種土壤N2O排放的刺激作用

    2019-01-23 01:52:32馬舒坦顏曉元
    關(guān)鍵詞:菜地甲酸硝化

    馬舒坦,顏曉元

    (1.中國(guó)科學(xué)院南京土壤研究所,土壤與農(nóng)業(yè)可持續(xù)發(fā)展國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,南京 210008;2.中國(guó)科學(xué)院大學(xué),北京 100049)

    N2O是一種重要的溫室氣體,大氣中的N2O濃度已由工業(yè)革命前的~270 ppbv增加到~320 ppbv,其增加量主要來(lái)自于人類(lèi)的農(nóng)業(yè)和工業(yè)生產(chǎn)活動(dòng),其中農(nóng)田土壤中氮肥施用產(chǎn)生的N2O約占人為源的40%~60%[1]。進(jìn)入到大氣中的N2O非常穩(wěn)定,其存留時(shí)間可以長(zhǎng)達(dá)120 a,其主要去向在大氣平流層光解而消耗臭氧,這也使得N2O成為了臭氧層的主要破壞者[2-3]。全面深入地理解N2O產(chǎn)生過(guò)程是我們準(zhǔn)確估算其產(chǎn)生量和制定減排措施的基礎(chǔ)。

    微生物的反硝化過(guò)程是N2O的最重要來(lái)源,反硝化過(guò)程產(chǎn)生的N2O約占全球農(nóng)業(yè)的60%[4]。微生物反硝化是指在缺氧或厭氧條件下異養(yǎng)微生物將硝酸鹽或者亞硝酸鹽逐步還原為N2O和N2的過(guò)程。這是一個(gè)異養(yǎng)過(guò)程,有機(jī)碳源分解中產(chǎn)生電子被接受而發(fā)生還原反應(yīng)。但以往的研究中主要關(guān)注的影響因素包括土壤含水量、土壤通氣性、土壤溫度、土壤pH和氮肥的種類(lèi)等[5-9]。對(duì)于有機(jī)碳的研究,研究人員通常在土壤中添加大量的有機(jī)物料[10-12],往往忽視了在實(shí)際野外條件下植物根系分泌物的影響。根系分泌物一些特點(diǎn)也增加了研究的困難:例如種類(lèi)繁多,包括各種氨基酸、有機(jī)酸、糖類(lèi)等各種小分子物質(zhì),以及脂肪、蛋白質(zhì)等結(jié)構(gòu)復(fù)雜的大分子物質(zhì)[13-14];此外土壤中單一種類(lèi)的有機(jī)碳含量非常少(<1 μmol C·g-1)[15]。盡管如此,有研究表明,根系分泌物可以顯著地影響到土壤中N2O的排放。Henry等向土壤中添加了不同組分的有機(jī)小分子(150 μg C·g-1),土壤產(chǎn)N2O潛勢(shì)是對(duì)照組的8~11倍,而土壤中的微生物的豐度和群落結(jié)構(gòu)并沒(méi)有發(fā)生明顯的變化[16]。也有學(xué)者發(fā)現(xiàn),有機(jī)碳源的種類(lèi)也會(huì)影響土壤N2O的還原過(guò)程[17-18]。最近,Guyonnet等發(fā)現(xiàn)土壤N2O的產(chǎn)生量與根際土壤中丁酸和琥珀酸的相對(duì)含量呈正相關(guān)而與木糖的含量呈負(fù)相關(guān)[19]。

    以上的研究都說(shuō)明,根系分泌物可以顯著地影響土壤N2O的排放。然而這些研究中,單一有機(jī)碳源的添加量都比較大(>5 μmol C·g-1)[16-18]。實(shí)際上這些小分子物質(zhì)在根系土壤中的含量是非常低的,某一種有機(jī)小分子通常不到 1 μmol C·g-1[15,20],實(shí)驗(yàn)中高量的添加外源有機(jī)物不能反映土壤中真實(shí)情況。另外,土壤中添加的有機(jī)碳源形態(tài)主要是含碳原子數(shù)2~6的有機(jī)酸,葡萄糖和其他含氮氨基酸,這些小分子多數(shù)都是可以參加到微生物體內(nèi)廣泛存在的三羧酸循環(huán)(TCA循環(huán)),并具有相似的電子傳遞體系[21]。因此選擇這一類(lèi)小分子缺乏一定的代表性。針對(duì)這兩個(gè)問(wèn)題,本實(shí)驗(yàn)選擇低劑量(≤1 μmol C·g-1)添加有機(jī)碳源進(jìn)行室內(nèi)培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)來(lái)探究有機(jī)小分子對(duì)土壤N2O的影響。有機(jī)碳選擇了葡萄糖和甲酸鹽。葡萄糖代表以往實(shí)驗(yàn)中的一般碳源,可以被大多數(shù)微生物利用;甲酸鹽是一種特殊的碳源,只能被特定的微生物利用,并且可以直接參加某些真菌反硝化的過(guò)程[22-23]。

    1 材料與方法

    1.1 土壤采集保存與理化性質(zhì)測(cè)定

    土樣采自江蘇常熟市辛莊鎮(zhèn)(N31°32′,E120°41′),根據(jù)S點(diǎn)法布點(diǎn),采集0~15 cm深度土壤。采樣后的鮮土過(guò)2 mm篩,置于4℃條件下保存?zhèn)溆?。其中水稻土采自常熟生態(tài)系統(tǒng)國(guó)家野外科學(xué)觀測(cè)研究站的育秧土壤,施肥量為每年300 kg N·hm-2;菜地土壤采自當(dāng)?shù)氐拇笈锸卟说兀┓柿考s每年1044 kg N·hm-2,大棚蔬菜地由水稻田改制而來(lái),種植年限已有6年。我們的取樣時(shí)間是2017年2月17號(hào)。采樣的時(shí)候稻田處于休閑期,設(shè)施菜地處于作物生長(zhǎng)期。菜地種植的是上海青,并且即將收獲上市。

    培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)之前測(cè)定土壤理化性質(zhì)。土壤NH+4和NO-3含量測(cè)定使用全自動(dòng)化學(xué)分析儀(AMS,荷蘭),測(cè)樣時(shí),鮮土用2 mol·L-1KCl浸提,土壤和浸提液的比率是1∶5。土壤全C和全N的測(cè)定使用Vario碳氮元素分析儀(Elementar,德國(guó)),測(cè)定樣品之前,鮮土需風(fēng)干后再過(guò)100目篩。土壤粒徑的測(cè)定使用激光粒度儀(LS 13320,美國(guó)),測(cè)定樣品之前,鮮土需風(fēng)干后再過(guò)2 mm篩。土壤pH是在土壤和蒸餾水混合液中測(cè)定,土水比為1∶2.5,測(cè)定儀器是pH計(jì)(Sartorius,美國(guó))。主要的理化性質(zhì)見(jiàn)表1。

    表1 菜地和稻田土壤的理化性質(zhì)Table 1 The chemical properties of soils from the vegetable field and paddy soils

    1.2 土壤培養(yǎng)與氣體N2O含量測(cè)定

    土壤預(yù)培養(yǎng):從4℃冰箱中取出適量土樣置于250 mL燒杯中,用封口膜(parafilm)密封,在25℃培養(yǎng)箱中預(yù)先培養(yǎng)3 d。

    土壤培養(yǎng):稱(chēng)取干質(zhì)量為5 g的鮮土于120 mL的血清瓶中,另保存4~5 g鮮土于-80℃的冰箱中用于DNA提取。以溶液形式向土壤中添加不同濃度的無(wú)機(jī)氮源和有機(jī)碳源,并調(diào)節(jié)含水量至75%WHC(最大可持水量)。實(shí)驗(yàn)分為兩個(gè)施氮水平(以KNO3-N計(jì))50、250 mg·kg-1。每個(gè)施氮水平下,根據(jù)外加有機(jī)碳的含量和種類(lèi)不同分為5個(gè)處理:(1)不外加碳源,(2)添加0.5 μmol甲酸鈉-C·g-1干土,(3)添加1 μmol甲酸鈉-C·g-1干土,(4)0.5 μmol葡萄糖-C·g-1干土,(5)1 μmol葡萄糖-C·g-1干土。完成溶液添加后,用鉗口鋁蓋密封血清瓶。真空泵抽真空5 min后,放入新鮮空氣,置于25℃培養(yǎng)箱,每個(gè)實(shí)驗(yàn)處理有3個(gè)重復(fù)。每24 h用注射器采集氣樣,并置換血清瓶?jī)?nèi)空氣,損失的水分通過(guò)稱(chēng)重法補(bǔ)齊。培養(yǎng)時(shí)間為4 d。

    氣體樣品的測(cè)定在采樣后24 h內(nèi)完成。使用儀器為Agilent 7890A氣相色譜儀。高純氮?dú)庾鳛檩d氣,流速25 mL·min-1,使用不銹鋼分離柱(內(nèi)徑為2 mm,長(zhǎng)度3 m),由Porapak Q材料(80~100目)填充分離柱,分離柱工作溫度為55℃。檢測(cè)器是電子俘獲檢測(cè)器(ECD),檢測(cè)器工作溫度為330℃。

    氣體排放速率計(jì)算公式如下:

    式中:F是單位質(zhì)量干土的N2O排放速率,μg N·kg-1·h-1;dc/dt為24 h內(nèi)N2O的濃度平均變化率,μL·L-1·h-1;M為N2O-N的摩爾質(zhì)量,28 g·mol-1;Vm是標(biāo)準(zhǔn)狀態(tài)下氣體的摩爾體積,22.4 L·mol-1;V是血清瓶的有效空間體積,L;T是培養(yǎng)時(shí)的溫度,25℃;m為血清瓶中的實(shí)際干土質(zhì)量,5 g。

    1.3 微生物豐度和群落結(jié)構(gòu)

    稱(chēng)取0.5 g菜地和稻田鮮土,使用Fast DNA SPIN試劑盒(MP Biomedical,美國(guó)),根據(jù)說(shuō)明書(shū)步驟提取土壤DNA。每種土壤有3個(gè)重復(fù)。提取完成后,DNA樣品分裝成3份,置于-80℃冰箱中保存,用于熒光定量PCR和高通量測(cè)序。

    真菌(18S rRNA genes)、細(xì)菌(16S rRNA genes)以及反硝化細(xì)菌(nirS,nirK)的豐度由熒光定量PCR測(cè)定,所用儀器為Applied Biosystems QuantStudio 3 Real-Time PCR系統(tǒng)。真菌和細(xì)菌的引物序列和PCR反應(yīng)條件參照Wang等[24];nirS,nirK的引物序列和PCR的反應(yīng)條件參照Rousk等[25]。具體的反應(yīng)體系(20 μL)如下:10 μL SYBR GreenⅠ熒光染料(Takara,日本),1 μL上下游引物(5 μmol·L-1),0.08 μL ROX參比染料,2 μL DNA樣品。加樣前,DNA樣品稀釋了20倍,以消除腐植酸等雜質(zhì)的影響。

    高通量測(cè)序用于分析細(xì)菌和真菌的群落結(jié)構(gòu),測(cè)序平臺(tái)是北京諾禾致源公司的IlluminaHiSeq2500。細(xì)菌和真菌的測(cè)序區(qū)域分別是16S V4和18S ITS 1,所選的擴(kuò)增引物分別為帶有識(shí)別碼的515F-806R和1373F-2043R[26-27]。PCR擴(kuò)增中高保真反應(yīng)體系選用紐英倫生物公司(New England Biolabs)的PhusionRHigh-Fidelity PCR Master Mix。PCR所獲的擴(kuò)增子經(jīng)過(guò)切膠純化后上機(jī)測(cè)序。

    1.4 數(shù)據(jù)分析

    對(duì)高通量測(cè)序獲得的優(yōu)質(zhì)序列利用Uparse軟件(V7.0.1001,http://drive5.com/uparse/)進(jìn)行聚類(lèi)分析,相似度為97%的序列劃歸到一個(gè)可操作分類(lèi)單元中(OTUs)。使用QIIME(V1.7.0,http://qiime.org/scripts/assign_taxonomy.html)計(jì)算得到的Coverage指數(shù)(http://www.mothur.org/wiki/Coverage)表明測(cè)序深度滿(mǎn)足后續(xù)分析。利用RDP分類(lèi)器(V2.2,http://source?forge.net/projects/rdp-classifier/)與GreenGene數(shù)據(jù)庫(kù)(http://greengenes.lbl.gov/cgi-bin/nph-index.cgi)比對(duì)獲得每個(gè)細(xì)菌OTU的分類(lèi)學(xué)信息。利用QIIME軟件(V1.7.0)中的Blast算法與Unite數(shù)據(jù)庫(kù)(https://unite.ut.ee/)比對(duì)獲得每個(gè)真菌OTU的分類(lèi)學(xué)信息。反硝化細(xì)菌和反硝化真菌的種類(lèi)參考已發(fā)表文獻(xiàn)[28-29]。

    使用SPSS 16.0對(duì)實(shí)驗(yàn)處理間進(jìn)行方差分析和多重比較。Origin 2015用于實(shí)驗(yàn)作圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 土壤N2O排放速率

    外源有機(jī)質(zhì)的添加可以顯著地刺激土壤中N2O的排放(圖1)。其他劑量的有機(jī)碳和無(wú)機(jī)氮添加下土壤中的N2O的排放趨勢(shì)與此類(lèi)似,N2O的排放速率在24 h很快達(dá)到平穩(wěn)。從最大N2O排放速率來(lái)看,甲酸鹽的刺激效應(yīng)遠(yuǎn)大于葡萄糖,這種差異在菜地土壤中更加明顯。在添加甲酸鹽處理中,菜地最大N2O排放速率(2.16 μg N·kg-1·h-1)幾乎是稻田(1.36 μg N·kg-1·h-1)的1.6倍。然而當(dāng)添加的有機(jī)碳源變?yōu)槠咸烟呛?,菜地的最大排放速率?.06 μg N·kg-1·h-1)卻遠(yuǎn)遠(yuǎn)小于稻田(0.33 μg N·kg-1·h-1)。當(dāng)外源有機(jī)碳消耗完畢,N2O排放趨于平穩(wěn),菜地釋放N2O速率(0.02~0.03 μg N·kg-1·h-1)也顯著小于稻田(0.04 μg N·kg-1·h-1)。

    2.2 土壤N2O累計(jì)排放量

    圖1 添加甲酸鹽(A)和葡萄糖(B)土壤N2O平均排放速率Figure 1 The average N2O emission rate from soils following the addition of formate(A)or glucose(B)

    圖2 添加不同濃度甲酸鹽和葡萄糖后土壤N2O累計(jì)排放量Figure 2 The cumulative emissions of N2O from soils amended with different dosage of formate or glucose

    由圖2A和2B可以看出土壤N2O的累計(jì)排放量隨著甲酸鹽濃度的提高而增加;相比于稻田土壤,菜地土壤的N2O增長(zhǎng)幅度更快,當(dāng)甲酸鹽濃度達(dá)到1 μmol C·g-1時(shí),菜地土壤的N2O累計(jì)排放量超過(guò)了稻田土壤。而葡萄糖對(duì)N2O排放的激發(fā)程度遠(yuǎn)遠(yuǎn)小于甲酸鹽(圖2C和2D),在葡萄糖的添加下,菜地土壤的N2O累計(jì)排放量也顯著低于稻田土壤。

    由圖2A與圖2B對(duì)比可以發(fā)現(xiàn),施氮量由50 mg NO3-N·kg-1增加到250 mg NO3-N·kg-1,土壤中N2O的累計(jì)排放量并沒(méi)有明顯增加,甚至在甲酸鹽濃度為1 μmol C·g-1時(shí),施氮量的增加導(dǎo)致了土壤中N2O的排放量減少,其中菜地土壤由54.86 μg N·kg-1減少至44.66 μg N·kg-1,稻田土壤由 42.4 μg N·kg-1降為33.61μg N·kg-1。當(dāng)添加的葡萄糖濃度為1 μmol C·g-1時(shí),施氮的增加也沒(méi)有顯著增加土壤N2O的排放(圖2C和圖2D)。

    2.3 土壤微生物數(shù)量

    表2是熒光定量PCR的結(jié)果,可以看出,菜地土壤的微生物拷貝數(shù)都顯著低于稻田土壤(P<0.01)。稻田土壤中總的細(xì)菌拷貝數(shù)(16S rRNA)是菜地土壤的4.8倍,其中反硝化細(xì)菌nirK和nirS基因是菜地土壤的6.6倍和8.2倍。相對(duì)于細(xì)菌的拷貝數(shù),真菌(18S rRNA)在兩種土壤中數(shù)量差異相對(duì)較少,稻田土壤的真菌拷貝數(shù)是菜地土壤的3倍左右。

    表2 土壤細(xì)菌(16S rRNA)、真菌(18S rRNA)和反硝化細(xì)菌(nirK&nirS)拷貝數(shù)Table 2 The copies of bacteria(16S rRNA genes),fungi(18S rRNA genes)and denitrifying bacteria(nirK&nirS genes)in soils

    2.4 土壤反硝化細(xì)菌屬和反硝化真菌屬

    目前在環(huán)境中發(fā)現(xiàn)的反硝化細(xì)菌有50多屬,高通量的測(cè)序結(jié)果顯示,本研究中的土壤含有其中的20屬(表3)。總體來(lái)說(shuō),菜地土壤中的反硝化細(xì)菌屬的相對(duì)豐度顯著高于稻田土壤(P<0.01)。土壤中的反硝化細(xì)菌屬的相對(duì)豐度基本都在1%以下。若以相對(duì)豐度占0.5%的菌屬為優(yōu)勢(shì)屬,菜地土壤中的優(yōu)勢(shì)屬是芽孢桿菌屬(Bacillus,1.031%)和鏈霉菌屬(Streptomyces,0.896%),稻田土壤中的優(yōu)勢(shì)屬是短根瘤菌屬(Bradyrhizobium,0.803%)和鏈霉菌屬(Strepto?myces,0.568%)。

    表3 土壤典型反硝化細(xì)菌屬相對(duì)豐度Table 3 The relative abundance ratios of denitrifying bacteria genus in soils

    目前在環(huán)境中發(fā)現(xiàn)的反硝化真菌有60屬,在本研究中的土壤我們發(fā)現(xiàn)了29屬(表4)。總體來(lái)說(shuō),菜地土壤的反硝化真菌相對(duì)豐度顯著高于稻田土壤(P<0.01),尤其是菜地土壤中畫(huà)線殼屬(Monographella,35.4%)和鐮刀屬(Fusarium,9.5%),分別是稻田土壤的81倍和13倍,這兩種真菌也是常見(jiàn)的植物致病菌。若以相對(duì)豐度占0.5%的菌屬為優(yōu)勢(shì)屬,稻田土壤中只有芽枝霉屬(Cladosporium)的相對(duì)豐度(1.316%)大于菜地土壤。

    3 討論

    3.1 有機(jī)碳對(duì)土壤N2O排放的刺激作用

    微生物體內(nèi)的反硝化過(guò)程實(shí)際上是包括有機(jī)質(zhì)的氧化過(guò)程和NO-3的還原過(guò)程,即有機(jī)質(zhì)的氧化過(guò)程產(chǎn)生的電子被NO-3等無(wú)機(jī)氮接受。不同反硝化微生物會(huì)有不同的電子傳遞體系[29],即使同一種反硝化微生物也會(huì)因?yàn)橛袡C(jī)碳源的不同,電子會(huì)沿著不同的路徑傳遞[22]。因此有機(jī)碳的添加可以顯著地刺激土壤N2O的排放,刺激程度也會(huì)因?yàn)橛袡C(jī)碳的種類(lèi)不同而不同(圖1,圖2)。

    表4 土壤典型反硝化真菌屬相對(duì)豐度Table 4 The relative abundance ratios of denitrifying fungi genus in soils

    本研究中我們向土壤中添加了少量的葡萄糖和甲酸鹽。與葡萄糖相比,甲酸鹽對(duì)N2O的刺激作用是葡萄糖的1.7~3.38倍,這一現(xiàn)象主要與碳源的種類(lèi)和土壤微生物群落有關(guān)。葡萄糖作為一種廣譜碳源可以被多種微生物利用。除了土壤中少量的反硝化微生物利用葡萄糖外,其他異養(yǎng)微生物也會(huì)與反硝化微生物競(jìng)爭(zhēng)有限的碳源。而甲酸鹽只能被特定的微生物利用,其中包括某些反硝化真菌。通過(guò)高通量測(cè)序發(fā)現(xiàn),本研究中的兩種土壤中都存在反硝化真菌(表3)。

    在自然界中,植物根系分泌物是土壤有機(jī)質(zhì)的重要來(lái)源,有研究報(bào)道植物光合作用產(chǎn)物的20%都可以進(jìn)入根系分泌物中[33]。因此野外條件下土壤微生物有著持續(xù)的有機(jī)質(zhì)供應(yīng),而室內(nèi)研究一般都忽略了根系分泌物的作用,或者在研究中加入了過(guò)量單一的有機(jī)碳如葡萄糖[10-11,34]。本研究中,我們添加的外源有機(jī)碳含量接近野外條件土壤根系分泌物。雖然有機(jī)質(zhì)的添加量是微量的,但卻顯著地刺激土壤中的N2O排放,并且其排放的強(qiáng)度受有機(jī)碳源的種類(lèi)和微生物群落結(jié)構(gòu)的影響。這些結(jié)果說(shuō)明,在土壤培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)中,我們應(yīng)當(dāng)考慮根系分泌物對(duì)N2O排放的影響,例如,氮肥的使用是否會(huì)通過(guò)刺激植株生長(zhǎng)進(jìn)而間接地影響土壤中N2O的排放。另外,外源有機(jī)質(zhì)的添加對(duì)N2O排放的影響也是不能忽視的。例如,Xia等[35]通過(guò)數(shù)據(jù)整合分析表明,有機(jī)肥等量替代化肥后,N2O排放既可能增加也可能減少,因而有機(jī)肥施用沒(méi)有顯著的減排潛力,我們認(rèn)為這可能與土壤中有機(jī)肥的成分以及土壤微生物的群落結(jié)構(gòu)有關(guān)。對(duì)這些問(wèn)題的探究有助于制定N2O減排策略。未來(lái)需要結(jié)合盆栽以及田間實(shí)驗(yàn)來(lái)開(kāi)展相關(guān)研究。

    3.2 土壤中反硝化微生物群落大小及其對(duì)N2O排放的貢獻(xiàn)

    利用底物誘導(dǎo)法研究土壤微生物量的結(jié)果表明土壤中真菌和細(xì)菌的生物量相當(dāng)[36]。然而在真菌和細(xì)菌各自的微生物群落中,反硝化微生物的相對(duì)含量卻不一樣。本研究中通過(guò)熒光定量PCR發(fā)現(xiàn),反硝化細(xì)菌拷貝數(shù)只占到細(xì)菌總數(shù)的1.48%~2.05%(表2),而高通量測(cè)序也表明反硝化細(xì)菌在細(xì)菌群落中的相對(duì)豐度是2.3%~3.3%(表3)。在真菌群落中,反硝化真菌的相對(duì)豐度是6.6%~53.8%(表4);也有研究結(jié)果表明產(chǎn)N2O的真菌達(dá)到可培養(yǎng)真菌的33%~45%[37-38]。這些結(jié)果表明環(huán)境中反硝化真菌的生物量可能高于反硝化細(xì)菌,在酸性土壤中尤其如此,因?yàn)檎婢兄鼜?qiáng)的耐酸能力[25],例如本研究中的設(shè)施菜地土壤。另外在設(shè)施菜地中,往往由于連作障礙會(huì)導(dǎo)致有害真菌的增加[39];本研究中,菜地土壤中畫(huà)線殼屬(Monographella)和鐮刀屬(Fusarium)的相對(duì)豐度顯著高于稻田土壤,這兩種真菌也是常見(jiàn)的植物致病菌(表4)。

    微生物的純培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)表明反硝化細(xì)菌產(chǎn)N2O能力約是反硝化真菌的10~100 000倍,而土壤培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)表明,反硝化真菌對(duì)N2O貢獻(xiàn)率與反硝化細(xì)菌相當(dāng)甚至超過(guò)了后者[29]。對(duì)于這一矛盾的結(jié)果,Mothapo等認(rèn)為雖然土壤培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)中使用的抑制劑法可能會(huì)高估真菌的貢獻(xiàn)率,但土壤真菌反硝化還是不能忽視的,因?yàn)榧兣囵B(yǎng)實(shí)驗(yàn)的條件不能真實(shí)反映土壤的環(huán)境,而且可供培養(yǎng)的微生物只占到總微生物量很少的一部分[29]。本研究中我們發(fā)現(xiàn)了土壤中反硝化真菌的廣泛存在,其生物量在某些條件下可能大于反硝化細(xì)菌;另外,環(huán)境中不同的有機(jī)碳源可能高效地促進(jìn)反硝化真菌的活動(dòng)。鑒于此,未來(lái)的研究中我們還需要完善一些新的N2O溯源方法[40],用來(lái)研究土壤中反硝化真菌對(duì)土壤N2O的貢獻(xiàn)及其影響因素。

    4 結(jié)論

    (1)有機(jī)小分子物質(zhì)的微量添加(≤1μmol C·g-1)可以顯著刺激土壤N2O排放,不同種類(lèi)的有機(jī)碳刺激結(jié)果也不一樣;與葡萄糖相比,甲酸鹽對(duì)N2O的刺激作用是葡萄糖的1.7~3.38倍。

    (2)菜地土壤的反硝化細(xì)菌數(shù)量只有稻田土壤的12%~15%,但在甲酸鹽的刺激下,菜地土壤最大的N2O的排放速率可以達(dá)到稻田土壤的1.6倍。菜地土壤中存在的大量反硝化真菌,其高效耦合甲酸鹽氧化和NO-

    3還原過(guò)程很可能是菜地土壤排放大量N2O的主要原因。

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