低溫脅迫下不同無核葡萄品種抗寒性的分析

李桂榮，連艷會(huì)，程珊珊，辛董董，牛生洋，扈惠靈

(河南科技學(xué)院園藝園林學(xué)院，河南新鄉(xiāng) 453003)

【研究意義】葡萄(Vitis vinifera L.)屬于葡萄 科，為落葉藤本植物，是世界最古老的植物之一。隨著人們生活水平的提高，葡萄越來越受廣大人民喜愛，在全球，葡萄生產(chǎn)和葡萄栽培面積越來越廣。然而，我國北方地區(qū)氣候差異大，低溫是限制我國北方葡萄分布與生長的重要因素，對葡萄越冬栽培生產(chǎn)造成一定的損失，最終，葡萄產(chǎn)量下降，品質(zhì)不佳。為了能夠滿足不同區(qū)域適宜栽培的葡萄品種，提高葡萄品質(zhì)，近年來，在葡萄抗寒性方面做了大量的研究?！厩叭搜芯窟M(jìn)展】盧精林等［1］認(rèn)為抗寒性的砧木品種電導(dǎo)率，POD，CAT，SOD，可溶糖含量和丙二醛，與抗寒性關(guān)系密切，可作為抗寒性的鑒定指標(biāo)。鐘海霞等［2］研究不同葡萄品種根系抗寒力的強(qiáng)弱比較，認(rèn)為電導(dǎo)率，可溶性糖，可溶性蛋白，游離脯氨酸和丙二醛等生理指標(biāo)可以作為抗寒性鑒定指標(biāo)?！颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】本試驗(yàn)以山葡萄，貝達(dá)和北醇為對照，3個(gè)無核葡萄品種(粉紅無核、優(yōu)無核、京早晶)為試材，測定相對電導(dǎo)率、超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化物酶(POD)、過氧化氫酶(CAT)、可溶性蛋白、可溶性糖、丙二醛(MDA)和游離脯氨酸的含量，分析不同葡萄品種抗寒力大小，并通過灰色關(guān)聯(lián)，研究不同抗寒指標(biāo)與抗寒性的關(guān)系。【擬解決的關(guān)鍵問題】為北方冬季低溫地區(qū)葡萄引種、雜交育種、種質(zhì)篩選以及抗寒新品種栽培提供科學(xué)理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 供試材料

通過不同品種的生物學(xué)性狀比較，于中國農(nóng)科院鄭州果樹研究所種質(zhì)資源圃中選出6種葡萄品種材料進(jìn)行試驗(yàn)研究，分別為:山葡萄、貝達(dá)、北醇、京早晶、優(yōu)無核和粉紅無核。以一年生休眠枝條為試驗(yàn)材料，粗0.5～1 cm，長20～50 cm長勢較好的健壯、無病蟲害的枝條進(jìn)行標(biāo)記沙藏，材料處理前取出并放在4℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

1.2 試驗(yàn)設(shè)計(jì)

將材料先用自來水沖洗3次，再用去離子水沖洗3次，放在濾紙上吸干水分，材料按不同品種均勻分成7份，用保鮮膜包好，并用吊牌進(jìn)行標(biāo)記，分別在7個(gè)溫度(4、－5、－10、－15、－20、－25、－30℃)下進(jìn)行低溫處理，以4℃/h的速度降到處理溫度并保持24 h，再以4℃/h的速度解凍，每0.5 h回升1個(gè)梯度，最終置于4℃冰箱中備用，測定其相關(guān)生理指標(biāo)。

1.3 測定方法

采用電導(dǎo)率儀(DDSJ-308A)進(jìn)行電導(dǎo)率的測定［3］，氮藍(lán)四唑法(NBT)進(jìn)行超氧化物歧化酶(SOD)活性的測定［4］，愈創(chuàng)木酚法進(jìn)行過氧化物酶(POD)活性的測定［4］，紫外吸收法進(jìn)行過氧化氫酶(CAT)測定活性測定［4］，考馬斯亮藍(lán)法進(jìn)行可溶性蛋白含量的測定［5］，蒽酮法進(jìn)行可溶性糖含量測定［5］，硫代巴比妥酸法(TBA)進(jìn)行丙二醛(MDA)含量測定［6］，茚三酮比色法進(jìn)行游離脯氨酸含量的測定［6］。

1.4 數(shù)據(jù)分析

用Microsoft Office Excel 2010軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析和DPS軟件(15.10)進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 低溫脅迫下葡萄枝條電導(dǎo)率的測定

從圖1可以看出，各材料總體趨勢逐漸升高，呈現(xiàn)一定的變化規(guī)律，－15～－25℃下，粉紅無核、優(yōu)無核和京早晶出現(xiàn)躍升，山葡萄、貝達(dá)和北醇變化趨勢不明顯，當(dāng)溫度達(dá)到－25℃時(shí)，粉紅無核上升至61.29%，優(yōu)無核由上升至71.31%，京早晶上升至72.21%，山葡萄上升至 40.55%，貝達(dá)上升至42.36%，北醇上升至44.07%。京早晶、優(yōu)無核和粉紅無核在初遇低溫時(shí)電解質(zhì)滲出率稍有上升，有可能是枝條內(nèi)部細(xì)胞的自我保護(hù)作用，隨著處理溫度的降低，在－25℃時(shí)電導(dǎo)率急劇上升，說明枝條內(nèi)部細(xì)胞已經(jīng)受到明顯的傷害，膜透性喪失功能。山葡萄、貝達(dá)和北醇變化趨勢仍不明顯。由試驗(yàn)結(jié)果看出，隨處理溫度的降低，原生質(zhì)膜透性逐漸增大，當(dāng)電解質(zhì)滲出率達(dá)到100%時(shí)，質(zhì)膜完全破壞［7］。

2.2 logistic方程擬合葡萄低溫半致死溫度

由表1可以看出，方程的相關(guān)回歸系數(shù)在0.7544～0.8617，經(jīng)檢驗(yàn)表明，Logistic方程擬合度R2顯著，半致死溫度在－10.39～ －37.83℃。其中山葡萄、貝達(dá)和北醇抗寒性較強(qiáng)，山葡萄的半致死溫度為－37.83℃，貝達(dá)的半致死溫度為－36.01℃，北醇的半致死溫度為－31.88℃，可知山葡萄抗寒性最強(qiáng)，細(xì)胞傷害率最低，抵御低于外界低溫能力強(qiáng)，其次是貝達(dá)和北醇。而優(yōu)無核和粉紅無核抗寒性較低，優(yōu)無核半致死溫度為－14.13℃，粉紅無核半致死溫度為－14.89℃，可知粉紅無核和優(yōu)無核的細(xì)胞傷害率較大，抵御外界低溫能力較低?？购宰钊醯臑榫┰缇?，半致死溫度為－10.39℃，細(xì)胞傷害率最大，抵御外界能力最低。所得半致死溫度與電解質(zhì)滲出率結(jié)論一致。由Logistic方程計(jì)算出的半致死溫度可以看出抗寒性大小:山葡萄＞貝達(dá)＞北醇＞粉紅無核＞優(yōu)無核＞京早晶。

圖1 低溫脅迫下葡萄枝條的電解質(zhì)滲出率Fig.1 Electrolyte leakage of grape branch under low temperature

表1 低溫脅迫下不同葡萄枝條半致死溫度Table 1 Half lethal temperature of grape branch under low temperature

2.3 低溫脅迫下葡萄枝條酶活性的分析

由表2可知，3種無核葡萄品種(京早晶、優(yōu)無核、粉紅無核)酶活性隨溫度的下降，整體為先上升后下降。其中，京早晶SOD酶活性在－20℃時(shí)有明顯的升高，其酶活性從4℃(52.38±4.60)U/g上升到 －20℃的(112.07±3.73)U/g，－20 ℃后，繼續(xù)上升，在 －25℃時(shí)達(dá)到最大值(137.52±5.01)U/g，之后隨著處理溫度的降低其酶活性開始下降，－25℃時(shí)與其他溫度相比差異顯著，P＜0.05且P＜0.01，這說明在－25℃時(shí)酶抵御低溫的能力達(dá)到最大，之后酶活性喪失;POD酶活性和CAT酶活性在－20℃下，POD酶活性達(dá)到最大值(11.33±0.13)U/g·min，由(3.26 ±0.17)U/g·min 上升到(11.33 ±0.13)U/g·min，CAT 酶活性達(dá)到最大值(34.13 ±3.95)U/g·min，由(10.39 ±1.94)U/g·min 上升到(34.13 ±3.95)U/g·min，之后隨著處理溫度的降低其酶活性開始下降，－20℃時(shí)與其他溫度相比差異顯著，P ＜0.05且 P ＜0.01。

優(yōu)無核SOD酶活性在－20℃時(shí)有明顯的升高，其酶活性從4℃(55.76±3.60)U/g上升到－20℃(170.98±3.46)U/g，－20 ℃后，繼續(xù)上升，在 －25 ℃時(shí)達(dá)到最大值(195.08±2.93)U/g，之后隨著處理溫度的降低其酶活性開始下降，－25℃時(shí)與其他溫度相比差異顯著，P＜0.05且 P＜0.01，這說明在－25℃時(shí)酶抵御低溫的能力達(dá)到最大，之后酶活性喪失;POD酶活性和CAT酶活性在－20℃下，POD 酶活性達(dá)到最大值(12.43±0.13)U/g·min，由(4.27±0.03)U/g·min 上升到(12.43 ±0.13)U/g·min，CAT 酶活性達(dá)到最大值(37.14 ±3.72)U/g·min，由(14.53 ±2.89)U/g·min 上升到(37.14±3.72)U/g·min，之后隨著處理溫度的降低其酶活性開始下降，－20℃時(shí)與其他溫度相比差異顯著，P ＜0.05 且 P ＜0.01。

粉紅無核的SOD酶活性在－20℃時(shí)有明顯的升高，其酶活性從4℃(21.41±2.02)U/g上升到－20 ℃的(195.76±3.56)U/g，－20 ℃后，繼續(xù)上升，在－25 ℃時(shí)達(dá)到最大值(219.84±5.91)U/g，之后隨著處理溫度的降低其酶活性開始下降，－25℃時(shí)與其他溫度相比差異顯著，P＜0.05且 P＜0.01，這說明在－25℃時(shí)酶抵御低溫的能力達(dá)到最大，之后酶活性喪失;POD酶活性和CAT酶活性在－20℃下，POD酶活性達(dá)到最大值(13.14±0.14)U/g·min，由(5.14 ±0.20)U/g·min 上升到(13.14 ±0.14)U/g·min，CAT酶活性達(dá)到最大值(38.04±2.33)U/g·min，由(8.15 ±1.16)U/g·min 上升到(38.04 ±2.33)U/g·min，之后隨著處理溫度的降低其酶活性開始下降，－20℃時(shí)與其他溫度相比差異顯著，P ＜0.05且P ＜0.01。

3種對照葡萄品種(山葡萄、貝達(dá)、北醇)酶活性隨溫度的降低總體趨勢為先上升后下降。其中，山葡萄的SOD酶活性在－20℃時(shí)有明顯的升高，其酶活性從4℃(120.32±1.6)U/g上升到－20℃的(268.77±3.33)U/g，－20 ℃后，繼續(xù)上升，在 －25℃時(shí)達(dá)到最大值(310.05±1.96)U/g，之后隨著處理溫度的降低其酶活性開始下降，－25℃時(shí)與其他溫度相比差異顯著，P＜0.05且 P＜0.01，這說明在－25℃時(shí)酶抵御低溫的能力達(dá)到最大，之后酶活性喪失;POD酶活性和CAT酶活性在－20℃下，POD酶活性達(dá)到最大值(16.13 ±0.15)U/g·min，由(7.83 ±0.37)U/g·min上升到(16.13 ±0.15)U/g·min，CAT 酶活性達(dá)到最大值(55.32 ±3.53)U/g·min，由(25.93 ±1.93)U/g·min 上升到(55.32±3.53)U/g·min，之后隨著處理溫度的降低其酶活性開始下降，－20℃時(shí)與其他溫度相比差異顯著，P ＜0.05 且 P ＜0.01。

貝達(dá)的SOD酶活性在－20℃時(shí)有明顯的升高，其酶活性從4℃(115.77±2.6)U/g上升到 －20℃的(164.83 ±3.8)U/g，－20 ℃后，繼續(xù)上升，在－25 ℃時(shí)達(dá)到最大值(270.32 ±3.7)U/g，之后隨著處理溫度的降低其酶活性開始下降，－25℃時(shí)與其他溫度相比差異顯著，P＜0.05且 P＜0.01，這說明在－25℃時(shí)酶抵御低溫的能力達(dá)到最大，之后酶活性喪失;POD酶活性和CAT酶活性在－20℃下，POD 酶活性達(dá)到最大值(14.56±0.11)U/g·min，由(6.38±0.11)U/g·min 上升到(14.56 ±0.11)U/g·min，CAT 酶活性達(dá)到最大值(47.35 ±3.1)U/g·min，由(26.14 ±3.6)U/g·min 上升到(47.35 ±3.1)U/g·min，之后隨著處理溫度的降低其酶活性開始下降，－20℃時(shí)與其他溫度相比差異顯著，P＜0.05 且 P ＜0.01。

北醇的SOD酶活性在－20℃時(shí)有明顯的升高，其酶活性從4℃(114.08±2.01)U/g上升到－20℃的(230.53±10.26)U/g，－20 ℃后，繼續(xù)上升，在 －25 ℃時(shí)達(dá)到最大值(264.19±3.37)U/g，之后隨著處理溫度的降低其酶活性開始下降，－25℃時(shí)與其他溫度相比差異顯著，P＜0.05且P＜0.01，這說明在－25℃時(shí)酶抵御低溫的能力達(dá)到最大，之后酶活性喪失;POD酶活性和CAT酶活性在－20℃下，POD酶活性達(dá)到最大值(13.79±0.05)U/g·min，由(5.98±0.12)U/g·min上升到(13.79±0.05)U/g·min，CAT酶活性達(dá)到最大值(44.39±2.86)U/g·min，由(22.31±1.61)U/g·min上升到(44.39±2.86)U/g·min，之后隨著處理溫度的降低其酶活性開始下降，－20℃時(shí)與其他溫度相比差異顯著，P＜0.05且P＜0.01。

由此可知，不同葡萄品種的酶活性總體趨勢呈S型曲線上升。SOD在－25℃時(shí)達(dá)到最大值，增加幅度最大，在4～－25℃時(shí)細(xì)胞系統(tǒng)產(chǎn)生了自我保護(hù)功能，這種保護(hù)能力逐漸上升，超過－25℃時(shí)，這種保護(hù)能力下降，而POD和CAT在－20℃下達(dá)到最大值，增加幅度最大，超過－20℃時(shí)，細(xì)胞膜造成了嚴(yán)重傷害，膜系統(tǒng)受到破壞。不同酶保護(hù)系統(tǒng)性能的增強(qiáng)，可提高組織的抗寒性［8］?？傻贸龉┰嚻贩N的抗寒性順序?yàn)?山葡萄＞貝達(dá)＞北醇＞粉紅無核＞優(yōu)無核＞京早晶。

表2 低溫脅迫下葡萄枝條的酶活性Table 2 Antioxidant enzyme activities of grape branch under low temperature

續(xù)表2 Continued table 2

2.4 低溫脅迫下葡萄枝條的生理指標(biāo)分析

由表3可知，隨著脅迫溫度的下降，不同葡萄品種可溶性蛋白含量出現(xiàn)先上升后下降的趨勢，在不同溫度下，抗寒性較強(qiáng)的葡萄品種可溶性蛋白含量增幅明顯高于抗寒性弱的葡萄品種。其中，當(dāng)溫度降到－25℃時(shí)，對照品種(山葡萄、貝達(dá)、北醇)可溶性蛋白含量逐漸上升，山葡萄從4℃的(0.25±0.03)mg/g上升到(0.81±0.04)mg/g，達(dá)到－30℃(0.84±0.04)mg/g時(shí)差異顯著，P＜0.05且 P＜0.01，貝達(dá)從4℃的(0.23±0.01)mg/g上升到(0.80±0.03)mg/g，達(dá)到 －30 ℃(0.81±0.03)時(shí)差異顯著，P＜0.05且 P＜0.01，北醇從4℃的(0.23±0.06)mg/g上升到(0.71±0.02)mg/g，達(dá)到－30℃(0.72±0.02)mg/g時(shí)差異顯著，P＜0.05且P＜0.01;無核葡萄品種(粉紅無核、優(yōu)無核、京早晶)－15～－25℃時(shí)可溶性蛋白含量緩慢上升，達(dá)到－30℃時(shí)差異顯著，粉紅無核(0.48±0.052)mg/g、優(yōu)無核(0.45 ±0.01)mg/g、京早晶(0.44±0.02)mg/g，P＜0.05且 P＜0.01。由此可見，總體上山葡萄增幅最大，可溶性蛋白變化明顯，抗寒性最強(qiáng)，其次，京早晶增幅最小，可溶性蛋白含量變化不明顯，抗寒性最弱。

隨著脅迫溫度的下降，不同葡萄品種可溶性糖含量出現(xiàn)逐漸上升的趨勢，可溶性糖含量越高，積累糖分越大，提高細(xì)胞內(nèi)的滲透勢，保護(hù)細(xì)胞膜系統(tǒng)的結(jié)構(gòu)不受破壞，抗寒性越強(qiáng)。其中，當(dāng)溫度降到－25℃時(shí)，對照品種(山葡萄、貝達(dá)、北醇)可溶性糖含量逐漸上升，－30℃時(shí)差異顯著，山葡萄(7.32±0.18)%、貝達(dá)(6.96±0.23)%、北醇(6.68±0.12)%，P＜0.05且 P＜0.01，無核葡萄品種(粉紅無核、優(yōu)無核、京早晶)達(dá)到－30℃時(shí)差異顯著，粉紅無核(4.76±0.20)%、優(yōu)無核(4.84±0.13)%、京早晶(5.78±0.30)%，P＜0.05且P＜0.01。

隨著脅迫溫度的下降，不同葡萄品種MDA含量出現(xiàn)逐漸上升的趨勢。MDA對質(zhì)膜產(chǎn)生毒害作用，主要破壞細(xì)胞內(nèi)的細(xì)胞膜系統(tǒng)，當(dāng)枝條受低溫傷害時(shí)，含量增加，達(dá)到一定程度植株死亡［8］，而山葡萄、貝達(dá)和北醇的MDA含量在低溫脅迫過程中明顯低于其他品種，可知，山葡萄、貝達(dá)和北醇抗寒性優(yōu)于其它品種。其中，當(dāng)溫度降到－30℃時(shí)差異顯著，山葡萄(0.38±0.01)μmol/g、貝達(dá)(0.39±0.02)μmol/g、北醇(0.42 ±0.01)μmol/g，P ＜0.05且 P ＜0.01，粉紅無核(0.76±0.02)μmol/g、優(yōu)無核(0.72±0.01)μmol/g、京早晶(0.68±0.01)μmol/g，P ＜0.05且P ＜0.01。

表3 低溫脅迫下葡萄枝條的生理指標(biāo)Table 3 Physiological indexes of grape branches under low temperature

表4 山葡萄生理生化指標(biāo)與抗寒性的灰色關(guān)聯(lián)分析Table 4 Grey correlation analysis of physiological and biochemical indexes and cold resistance

表5 京早晶生理生化指標(biāo)與抗寒性的灰色關(guān)聯(lián)分析Table 5 Grey correlation analysis of physiological and biochemical indexes and cold resistance

隨著脅迫溫度的下降，不同葡萄品種游離脯氨酸含量出現(xiàn)逐漸上升的趨勢，由于細(xì)胞內(nèi)游離脯氨酸大量積累，此時(shí)，葡萄枝條通過滲透勢的降低來維持細(xì)胞膜內(nèi)結(jié)構(gòu)的完整?？购暂^強(qiáng)的山葡萄和貝達(dá)在－25℃時(shí)，游離脯氨酸的含量達(dá)到最高，分別為(63.28±0.29)和(59.28±0.32)μg/g，P ＜0.05且P＜0.01。而抗寒性較差的優(yōu)無核和京早晶分別在－10和－15℃達(dá)到最高，分別為(39.52±0.01)和(43.31±0.05)μg/g，P＜0.05且P ＜0.01。

2.5 不同抗寒指標(biāo)灰色關(guān)聯(lián)分析

為了研究葡萄枝條不同抗寒指標(biāo)和抗寒性關(guān)聯(lián)程度，做灰色關(guān)聯(lián)分析。按灰色系統(tǒng)理論要求，將不同品種的抗寒指標(biāo)的平均值和不同處理溫度視為一個(gè)整體，即灰色系統(tǒng)，進(jìn)行分析。

對數(shù)據(jù)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化處理之后，由表4可見，和山葡萄的抗寒性關(guān)聯(lián)最大的抗寒指標(biāo)是CAT(0.72)，其次是POD(0.70)和MDA(0.70)，其他指標(biāo)均在0.60以上，并且和山葡萄關(guān)聯(lián)最高的溫度是－25℃(0.71)。由表5可見，和京早晶抗寒性關(guān)聯(lián)最大的抗寒指標(biāo)是POD(0.68)和CAT(0.68)，其次是SOD(0.66)、MDA(0.66)，并且和京早晶關(guān)聯(lián)最高的溫度是－10℃。

綜上可知，和所研究葡萄品種關(guān)聯(lián)度最高的抗寒指標(biāo)是CAT，其次是POD和MDA。

3 討論

抗寒性是不同植物對低溫寒冷環(huán)境下長期適應(yīng)中通過本身的遺傳變異和自然選擇獲得的一種抗寒能力，是果樹的一個(gè)重要性狀。有不少學(xué)者在果樹抗寒性方面做了大量的研究。本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)，在電導(dǎo)率測定中，隨著處理溫度的降低，電導(dǎo)率整體呈逐漸升高的趨勢，這與駱建霞研究的用電導(dǎo)法對8種地被植物抗寒性的測定結(jié)果一致［9］。在酶的測定中，隨著處理溫度的下降，酶活呈現(xiàn)先上升后下降，這與曹建東［10］，魯金星［11］，曲凌慧［12］的研究一致。在可溶性糖含量的測定中，6個(gè)葡萄品種隨著處理溫度的降低，可溶性糖含量總體變化趨勢逐漸上升，這與孟艷瓊［13］和王小媚［14］研究結(jié)論一致。在丙二醛含量的測定中，隨著處理溫度的降低，丙二醛含量逐漸升高，這與段肖翠［15］究的低溫脅迫對阿月渾子抗寒生理指標(biāo)中在不同溫度處理下，丙二醛含量的變化一致。在可溶性蛋白的測定中，其含量隨著處理溫度的降低而升高，抗寒性強(qiáng)的品種上升幅度快，這與牛錦鳳等［16］的研究結(jié)論相一致。在游離脯氨酸的測定中，其含量也隨著處理溫度的降低而呈現(xiàn)出升高趨勢，這與沈洪波［17］的研究結(jié)論一致。綜上所述，相對電導(dǎo)率、SOD酶活性、POD酶活性、CAT酶活性、可溶性糖、可溶性蛋白、丙二醛和游離脯氨酸含量可以作為測定植物抗寒性的指標(biāo)。

本試驗(yàn)是在人工模擬低溫的條件下進(jìn)行的，人工低溫處理和室外自然條件有一定的差異，僅在實(shí)驗(yàn)室條件下進(jìn)行測量具有一定的局限性，在今后的研究中我們將在室外低溫的條件下進(jìn)行抗寒鑒定，從而更加準(zhǔn)確全面地反應(yīng)抗寒性。

4 結(jié)論

由測得的電導(dǎo)率并結(jié)合Logistic方程求得不同葡萄品種半致死溫度分別為:山葡萄－37.83℃，貝達(dá)－36.01℃，北醇 －31.88℃，粉紅無核 －14.89℃，優(yōu)無核－14.12℃，京早晶－10.39℃。除了對照品種。其余品種的致死溫度均在－10～－15℃之間。

通過酶活性的測定，酶活性均呈現(xiàn)先升高后下降的趨勢。通過理化指標(biāo)的測定與分析，隨著處理溫度的下降，各指標(biāo)含量均呈現(xiàn)上升趨勢，并且抗寒性強(qiáng)的品種上升的幅度比抗寒性弱的品種上升的幅度大。其中，對抗寒指標(biāo)進(jìn)行灰色關(guān)聯(lián)分析，得出與所研究葡萄品種關(guān)聯(lián)度最高的抗寒指標(biāo)是CAT，其次是POD和MDA。綜合結(jié)果分析，不同葡萄品種抗寒性強(qiáng)弱依次為:山葡萄＞貝達(dá)＞北醇＞粉紅無核＞優(yōu)無核＞京早晶。