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    卟啉接枝細(xì)菌纖維素的制備及其光敏抗菌性能

    2018-11-28 03:54:00董建成葛孝棟王清清魏取福
    紡織學(xué)報 2018年11期
    關(guān)鍵詞:光敏劑接枝纖維素

    董建成, 葛孝棟, 王清清, 魏取福

    (生態(tài)紡織教育部重點實驗室(江南大學(xué)), 江蘇 無錫 214122)

    光動力抗菌化學(xué)療法(PACT)[1]是基于光動力療法(PDT),通過光敏劑與細(xì)菌結(jié)合,在光照下產(chǎn)生活性氧簇(ROS)來滅活細(xì)菌。相比于傳統(tǒng)抗菌材料,如茶多酚[2]、殼聚糖[3]、重金屬銀[4]等,PACT法生物毒性低,在滅菌過程中不會使微生物產(chǎn)生耐藥性[5],因而在抗菌材料領(lǐng)域具有廣泛的應(yīng)用前景。

    PACT常用的光敏劑有吩噻嗪類、酞菁類、卟啉類光敏劑等。原卟啉(PpIX)是一種卟啉類光敏劑,其前驅(qū)體5-氨基酮戊酸(5-ALA)是美國食品藥品監(jiān)督管理局批準(zhǔn)藥物。游離的PpIX具有高效光敏化能力,但其回收困難,重復(fù)利用性差[6-7]。此外,PpIX價格高昂,合成工藝復(fù)雜,從而對PpIX進行固定化使其具有可重復(fù)利用性變得尤為重要。目前,光敏劑PpIX在多壁碳納米管[8-9]、多孔硅膠[10]、金屬及其氧化物納米顆粒[11-12]、殼聚糖[13-14]等方面的負(fù)載已被廣泛研究,但已有文獻對PpIX在纖維素基材類的負(fù)載,并用于光動力抗菌方面的研究不多。相比于其他材料,纖維素類基材如細(xì)菌纖維素、棉等具有天然可降解性、生物相容性和可再生性。

    本文利用細(xì)菌纖維素(BC)作為PpIX固定載體,首先利用不同濃度的NaIO4氧化細(xì)菌纖維素,然后采用還原胺化反應(yīng)引入乙二胺來鍵接PpIX,最后評價了負(fù)載PpIX后的細(xì)菌纖維素對金黃色葡萄球菌的光敏抗菌效果及可重復(fù)利用性。

    1 實驗部分

    1.1 實驗原料與儀器

    細(xì)菌纖維素(由木醋桿菌發(fā)酵制得),氫氧化鈉、高碘酸鈉、乙二胺、乙二醇、二甲基亞砜(DMSO)、甲醇、乙酸、鹽酸羥胺、百里香酚藍(lán),分析純,國藥集團上?;瘜W(xué)試劑公司;氰基硼氫化鈉(NaCNBH3)、N,N′-羰基二咪唑(CDI)、原卟啉,分析純,上海維塔試劑有限公司;金黃色葡萄球菌(ATCC-6538),上海協(xié)久生物科技有限公司。

    LABCONCO型凍干機(美國LABCONCO有限公司); Nicolet iS 10 型傅里葉變換紅外光譜儀(FT-IR,中國賽默飛世爾科技有限公司);Renishaw RM1000型拉曼光譜儀(英國雷尼紹公司);Rigaku-D/Max-2500 型X射線衍射儀(XRD,日本理學(xué)公司);TA Q200型熱失重儀(TG,美國TA公司);SUL 510型掃描電子顯微鏡(SEM,日本日立株式會社);XQ500 W型氙燈(上海藍(lán)晟電子有限公司);SW-CJ-ID型單人凈化工作臺(蘇州凈化設(shè)備有限公司);GR60DA型高壓滅菌鍋(南京康辰科學(xué)儀器有限公司); BSP-150型生化培養(yǎng)箱(上海博訊實業(yè)有限公司)。

    1.2 細(xì)菌纖維素的預(yù)處理

    將發(fā)酵培養(yǎng)15 d的細(xì)菌纖維素(BC)取出,浸沒在質(zhì)量分?jǐn)?shù)為4%的NaOH溶液中,于80 ℃的水浴鍋中堿煮12 h后取出,然后更換NaOH溶液繼續(xù)堿煮12 h。最后用去離子水反復(fù)沖洗、浸泡堿煮后的細(xì)菌纖維素,用pH試紙測試其表面酸堿性,直至pH試紙不變藍(lán)。

    1.3 氧化細(xì)菌纖維素的制備

    首先將燒杯中的高碘酸鈉(NaIO4)溶液在恒溫?fù)u床中加熱至37 ℃,然后把直徑、厚度相近的細(xì)菌纖維素分3組分別放入NaIO4溶液中,對應(yīng)的NaIO4溶液濃度分別為0.2、0.3、0.4 mol/L。NaIO4溶液與細(xì)菌纖維素的用量為V(NaIO4)∶m(BC)=20∶1。將上述反應(yīng)體系放入到恒溫?fù)u床中,于37 ℃反應(yīng)4 h,然后加入乙二醇(體積為體系體積的1/5)中繼續(xù)反應(yīng)4 h。取出反應(yīng)后的氧化細(xì)菌纖維素(BC-CHO),用去離子水反復(fù)沖洗、浸泡,直至用淀粉-KI試紙在BC-CHO表面測試不變黑。最后將BC-CHO放入-40 ℃冰箱預(yù)冷凍12 h后,用凍干機在5 Pa條件下干燥12 h得到BC-CHO冷凍干燥膜。

    1.4 乙二胺化細(xì)菌纖維素的制備

    稱取3.00 g乙二胺放入燒杯中,加入100 mL DMSO溶解,然后在燒杯中加入乙酸調(diào)節(jié)體系pH值至6.0,將燒杯放入恒溫?fù)u床中,使體系溫度上升至37 ℃,然后在體系中加入300 mg所制備的BC-CHO納米纖維膜,用鋁箔包覆燒杯避光,調(diào)節(jié)搖床速度為100 r/min,反應(yīng)12 h。取出細(xì)菌纖維素膜,用20 mL DMSO清洗3次。

    稱取3.77 g氰基硼氫化鈉放入燒杯中,加入100 mL DMSO溶解,將上述洗滌后的細(xì)菌纖維素膜放入燒杯中,然后放入37 ℃恒溫?fù)u床(搖床速度為100 r/min)中反應(yīng)24 h,得到乙二胺化細(xì)菌纖維素(BC-EDA),將BC-EDA取出后先用20 mL DMSO清洗3 次,再用30 mL去離子水清洗3 次。將洗滌后的BC-EDA放入-40 ℃冰箱預(yù)冷凍12 h,用凍干機在5 Pa條件下干燥12 h得到BC-EDA冷凍干燥膜。

    1.5 原卟啉接枝氨基化細(xì)菌纖維素的制備

    稱取282 mg原卟啉(PpIX)和81 mg N,N′-羰基二咪唑,溶解在75 mL 的DMSO中,然后在40 ℃搖床中活化4 h,搖床速度為120 r/min。在上述體系中加入BC-EDA凍干膜,繼續(xù)反應(yīng)24 h,反應(yīng)結(jié)束后先用DMSO清洗(20 mL,3次),再用去離子水清洗(30 mL,3次)。然后于40 ℃真空干燥5 h,得到原卟啉接枝氨基化細(xì)菌纖維素膜(BC-EDA-PpIX)。BC-EDA-PpIX接枝的化學(xué)反應(yīng)流程如圖1所示。

    圖1 細(xì)菌纖維素-原卟啉(BC-EDA-PpIX)接枝化學(xué)反應(yīng)流程Fig.1 Chemical reaction process of grafting PpIX on bacterial cellulose via ethylenediamine

    1.6 測試與表征

    1.6.1醛基含量測定

    在250 mL錐形瓶中加入50 mL質(zhì)量濃度為20 g/L的鹽酸羥胺/甲醇溶液和8滴百里香酚藍(lán)指示劑,用氫氧化鈉/甲醇標(biāo)準(zhǔn)液滴定至溶液為黃色,不計消耗氫氧化鈉溶液的體積[15]。然后向錐形瓶中加入剪碎的BC-CHO樣品,40 ℃條件下充分反應(yīng)3 h后,用0.03 mol/L的氫氧化鈉/甲醇溶液滴定至黃色,且在30 s內(nèi)保持不褪色。醛基含量計算公式為

    C=0.03V/m

    式中:C為BC-CHO中的醛基含量, mmol/g;V為滴定時消耗的氫氧化鈉/甲醇溶液的體積, mL;m為BC-CHO的質(zhì)量,g。

    1.6.2表面形貌觀察

    采用掃描電子顯微鏡觀察纖維膜的表面形貌和結(jié)構(gòu)。樣品在掃描前需經(jīng)過噴金處理,以便降低其表面放電效應(yīng)。

    1.6.3化學(xué)結(jié)構(gòu)測試

    采用傅里葉變換紅外光譜儀對接枝反應(yīng)前后的BC膜樣品進行測試,利用衰減全反射紅外光譜法(ATR-FT-IR)進行分析。分辨率為4 cm-1,掃描次數(shù)為16,波數(shù)范圍為4 000~800 cm-1。

    1.6.4拉曼光譜測試

    采用拉曼光譜儀對PpIX(粉末)、BC-EDA膜、BC-EDA-PpIX膜進行測試,樣品在514 nm激發(fā)獲得拉曼光譜。

    1.6.5熱穩(wěn)定性測試

    利用熱失重分析儀對材料的熱穩(wěn)定性進行測試。測試范圍為20~600 ℃,升溫速率為10 ℃/min,在N2保護下進行。

    1.6.6晶體結(jié)構(gòu)測試

    采用X射線衍射儀對試樣的晶體結(jié)構(gòu)進行分析。實驗條件為:Cu靶,加速電壓40 kV,電流強度200 mA,掃描速度4(°)/min,掃描范圍5°~40°。

    1.6.7光動力抗菌評價

    參照AATCC 100—2012《抗菌紡織品的評價方法》對BC-EDA-PpIX纖維膜光敏抗菌性能進行評價。

    將干燥的空白纖維膜和BC-EDA-PpIX纖維膜分別作為空白對照樣和實驗樣。在各樣品上剪取若干形狀厚度均一的圓形試樣,平鋪于24孔板內(nèi)。取0.1 mL濃度為1×108~3×108CFU/mL的菌液接種在各試樣上。每個樣品均分為2組,分別置于光照及暗室的環(huán)境下培養(yǎng)30 min,隨后將原菌液及試樣上的菌液在離心管中依次等梯度稀釋106倍,制作出10倍稀釋系列。分別從稀釋系列的各離心管中取10 μL溶液注入含瓊脂培養(yǎng)基的平皿內(nèi),置于37 ℃的恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。最后測其菌落數(shù),計算出抑菌率r,對抗菌效果進行評價。

    式中:N0、Ni分別為平板上原樣生長細(xì)菌的數(shù)和樣品抗菌后所剩余的菌落數(shù)。

    用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為75%的酒精洗滌上述BC-EDA-PpIX纖維膜2次,干燥后再按上述方法進行抗菌評價;然后繼續(xù)用酒精洗滌2次,干燥后進行抗菌評價,測試其抗菌持久性。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 BC-CHO纖維膜的結(jié)構(gòu)與性能分析

    2.1.1醛基含量分析

    通過鹽酸羥胺法測定BC-CHO中醛基的含量。當(dāng)NaIO4濃度分別為0.2、0.3、0.4 mol/L時,測得對應(yīng)的二醛細(xì)菌纖維素醛基含量分別為2.13、3.42、3.76 mmol/g。NaIO4可特異性地氧化纖維素葡萄糖環(huán)上2、3號位上的羥基生成二醛細(xì)菌纖維素BC-CHO。采用高濃度的NaIO4,在氧化過程中細(xì)菌纖維素內(nèi)部氫鍵會被嚴(yán)重破壞,細(xì)菌纖維素尺寸劇烈收縮,力學(xué)性能銳減,影響其應(yīng)用[16-17];因此,選擇NaIO4濃度為0.3 mol/L所制備的BC-CHO進行后續(xù)卟啉接枝反應(yīng),其氧化程度適當(dāng),纖維膜尺寸變化不大。

    2.1.2BC-CHO纖維膜的化學(xué)結(jié)構(gòu)分析

    圖2 不同NaIO4濃度氧化的纖維膜紅外光譜圖Fig.2 FT-IR spectra of fiber membranes oxidized at different NaIO4 concentrations

    2.1.3BC-CHO纖維膜的晶體結(jié)構(gòu)分析

    圖3為BC及不同氧化程度BC-CHO的XRD譜圖。細(xì)菌纖維素是高結(jié)晶度的I型纖維素,其結(jié)晶度可達(dá)60%~70%,圖中衍射角2θ為14.4°、16.7°、22.6°處為I型纖維素的特征衍射峰[15]。BC經(jīng)過NaIO4選擇性氧化后,BC-CHO部分保留了初始BC的I型纖維素特征峰,同時BC-CHO逐步在2θ為12.6°、20.5°、21.7°處出現(xiàn)衍射峰,并伴隨著I型纖維素特征峰的降低,這表明初始BC在被NaIO4氧化過程中發(fā)生部分晶型轉(zhuǎn)變(II型纖維素)。由于NaIO4選擇性氧化造成了纖維素葡萄糖吡喃環(huán)的開環(huán),使得部分鏈節(jié)被破壞,使得原有的結(jié)晶規(guī)整度降低,從而在XRD譜圖中顯示了較多位于主要衍射峰之間的雜散峰,其中18°~20°處的是非晶纖維素的衍射峰[[21]。

    圖3 不同NaIO4濃度氧化的纖維膜X射線衍射譜圖Fig.3 XRD spectra of fiber membranes oxidized by NaIO4at different concentrations

    2.1.4BC-CHO纖維膜的熱穩(wěn)定性分析

    圖4示出BC、BC-CHO纖維膜的TG和DTG曲線。BC的化學(xué)改性會顯著改變纖維膜的熱分解行為,如熱分解溫度降低、殘?zhí)柯侍岣叩萚22]。從圖4可看出,氧化后的細(xì)菌纖維素膜熱分解行為發(fā)生了明顯的變化。在N2氛圍中,BC在280 ℃開始分解,在300~340 ℃時質(zhì)量損失速率增大,纖維素在分解時,先得到左旋葡萄糖,然后進一步分解為CO、CO2等小分子[23]。BC-CHO分3步降解:第1步,100 ℃左右時的質(zhì)量損失為葡萄糖吡喃環(huán)上醛基形成的水合醛和半縮醛受熱脫水造成的;第2步在220~250 ℃脫水;第3步在280~300 ℃降解。所有BC-CHO的熱分解溫度都低于BC,且隨氧化程度的提高逐漸降低。

    圖4 不同NaIO4濃度氧化的纖維膜熱穩(wěn)定性曲線Fig.4 TG(a) and DTG (b) curves of fiber membranes oxidized by different concentrations NaIO4

    2.2 BC-EDA纖維膜的化學(xué)結(jié)構(gòu)分析

    圖5為BC、BC-CHO、BC-EDA纖維膜的紅外光譜圖??梢钥闯觯航又σ叶泛蟮难趸?xì)菌纖維素在1 730、880 cm-1處的醛基特征峰消失;在1 560 cm-1處出現(xiàn)新的吸收峰,為BC-EDA上N—H的彎曲振動峰[24]。醛基特征峰的完全消失和新吸收峰的出現(xiàn),表明BC-CHO上的醛基完全被乙二胺取代。

    圖5 納米纖維膜的紅外光譜圖Fig.5 FT-IR spectra of naofibrous membranes

    2.3 BC-EDA-PpIX纖維膜的性能分析

    2.3.1PpIX接枝前后細(xì)菌纖維素膜的形貌結(jié)構(gòu)

    圖6示出初始細(xì)菌纖維素BC和原卟啉接枝后BC-EDA-PpIX的表面形貌??梢钥闯?,BC在進行化學(xué)改性前,表面纖維集束包覆成連續(xù)相,形成對內(nèi)層纖維的遮掩。經(jīng)過氧化、PpIX接枝后,BC表面集束的連續(xù)相消失,顯露出內(nèi)層纖維,BC-EDA-PpIX內(nèi)層纖維的高比面積更有利于卟啉與底物的接觸,從而有效發(fā)揮負(fù)載卟啉的光敏化能力。

    圖6 BC和BC-EDA-PpIX纖維膜的掃描電鏡照片F(xiàn)ig.6 SEM images of BC and BC-EDA-PpIX fibrous membranes

    2.3.2BC-EDA-PpIX的拉曼光譜

    圖7為PpIX、BC-EDA、BC-EDA-PpIX的拉曼光譜圖。由于PpIX具有對稱結(jié)構(gòu),所以采用拉曼光譜儀來表征PpIX固定化后的化學(xué)結(jié)構(gòu)。

    圖7 PpIX粉末、BC-EDA-PpIX纖維膜、BC-EDA纖維膜的拉曼光譜圖Fig.7 Raman spectra of pure PpIX powder, BC-EDA-PpIX and BC-EDA fibrous membrane

    2.3.3BC-EDA-PpIX纖維膜的抗菌性能

    表1 BC-EDA-PpIX纖維膜對金黃色葡萄球菌的殺菌效果Tab.1 Antibacterial effect of BC-EDA-PpIX fibrous membrane against Staphylococcus aureus

    BC-EDA-PpIX經(jīng)過酒精洗滌后光敏抗菌效果雖有所降低,但經(jīng)過5次洗滌后抑菌率仍達(dá)到56.61%。細(xì)菌纖維素的直徑在納米級別,納米尺寸的結(jié)構(gòu)容易受到外界因素的影響,而PpIX共價結(jié)合在細(xì)菌纖維素膜表面,洗滌過程中可能會使部分光敏劑脫落,造成抗菌效果下降。在今后的研究工作中將會采用大直徑纖維素制品如棉織物、麻織物等作為光敏劑載體進行共價負(fù)載,制備光敏抗菌織物,以實現(xiàn)長效的光敏抗菌效果。

    3 結(jié) 論

    1)通過改變NaIO4濃度制備出不同醛基含量的氧化細(xì)菌纖維素膜(BC-CHO),其醛基含量越高,BC-CHO的熱分解溫度越低,結(jié)晶性越低。適當(dāng)氧化的細(xì)菌纖維素在保持良好形貌結(jié)構(gòu)的同時具有較高的醛基含量。

    2)原卟啉接枝氨基化細(xì)菌纖維素膜(BC-EDA-PpIX)具有良好的光敏抗菌效果,首次光動力抗菌,金黃色葡萄球菌的殺菌率超過98%以上,經(jīng)過5次酒精洗滌后仍具有良好的抑菌效果。

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